Для дезинфекции хирургических инструментов используют. Организация работы в стерилизационной. подготовка и стерилизация режущих, оптических, общехирургических инструментов. стерилизация. Горячие способы стерилизации

Стерилизация хирургических инструментов

хирургический автоклавирование антисептический

Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды - стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов - 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа. Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180 - 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты - 3 части, едкого натра - 15 частей, формалина - 20 частей, дистиллированной воды - 1000 частей; формалина - 20 частей, фенола чистого жидкого - 1,5 части, карбоната натрия - 7,5 части, воды дистиллированной - 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45-50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация - суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами - в отдельной упаковке).

Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6-8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) - 100 г., нашатырного спирта - 50 мл, воды - 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части - контрольные стекла и капельницы - промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно - проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30-40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, так как они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.

Стерилизация анестезиологических принадлежностей - интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок - осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида, водно-спиртовой раствор левомицетина 1:1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5-2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15-30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части - переходные трубки, щипцы, зубные распорки - стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1: 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением.

Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30-40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.

Стерилизация изделий из синтетических материалов: сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов - производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке. Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде - 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150-160° - 1 час. Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.

Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12-24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1: 1000.

Часто применяют модификации способа Кохера.

• 1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.
• 2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№0-4 в течение 15 мин., №5-8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.
• 3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в том числе и в сулеме.

Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.

Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала - кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12-24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№0-1 на 30 сек., №2-5 на 1 мин., №6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6-7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке - 40 г., в 5-литровой банке - 60 г.). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным №0-1 - через 3 суток, №2-4 - через 4 суток, №5-6 - через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.

Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г. чистого йода и 10 г. калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.

Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г. йода и 10 г. калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7-10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г. калия йодида и 10 г. чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8-10 суток после выдерживания его в течение 12-24 час. в эфире, а затем на 4- 6 суток - в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7-10 суток.

Основным способом стерилизации хирургических инструментов является кипячение .

Для кипячения используют простые или электрические стерилизаторы, эмалированную посуду с крышкой.

Источником тепла может служить газовая или электрическая плита. Кипячением стерилизуют металлические, стеклянные, резиновые предметы. Перед кипячением инструменты разбирают, раскрывают, из инъекционных игл извлекают мандрены, а стеклянные и острые части инструментов заворачивают в 1-2 слоя марли. Кипятят в воде или в растворах каустической или двууглекислой соды. Продолжительность стерилизации с момента закипания воды составляет 20 минут, в щелочных растворах — 10-20. По истечении указанного срока сетку с инструментарием извлекают из стериализатора с помощью специальных крючков, а инструменты раскладывают на стерильную ткань или оставляют в стерилизаторе, предварительно слив воду. Шприцы обычно оставляют в воде до полного их охлаждения.

Стеклянные хирургические инструменты (шприцы), приборы (пробирки, мензурки) кипятят отдельно от металлических инструментов без добавления щелочей.

Резиновые предметы (трубки, перчатки, катетеры, дренажи) стерилизуют в автоклаве или в кипящей воде в течение 30 минут. Можно обрабатывать и химическими растворами путем погружения. Перчатки, надетые на руки, рекомендуют обрабатывать спиртовым раствором формалина.

Стерилизацию обжиганием (фламбированием) применяют для обеззараживания крупных инструментов и эмалированной посуды (тазы под инструменты). Инструменты кладут в эмалированную посуду или стерилизатор, обливают их небольшим количеством спирта и обжигают. Металлические инструменты можно фламбировать на огне спиртовки или подожженной ваты, смоченной спиртом. Данный метод стерилизации не очень хорош, так как в отверстиях, замках инструментов могут оставаться сгустки крови, шерсть, бактерии, а сами инструменты, особенно режущие их части, при обжигании сильно портятся.

Стерилизация инструментов химическими средствами относится к холодному способу стерилизации. Инструментарий полностью погружают на 30-60 минут в дезинфицирующие растворы: лизол, карболовая кислота, жидкость Каретникова, формалин, натрий карбонат, этиловый спирт, или на 4-6 часов — в перекись водорода. Антисептические растворы применяют и в случае, когда инструменты портятся от кипячения. Возможна газовая стерилизация, проводимая в специальных камерах и применяемая для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

Стерилизуют хирургические инструменты и сухим воздухом (сухим жаром, в специальных термостатах) в течение 1,5 часа при определенной постоянной температуре.

В медицинской практике используют заводской метод стерилизации — гамма-лучами, ультрафиолетовыми лучами, ультразвуком (по строго определенным методикам).

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter .

С функциональ­ной точки зрения хирургические инструменты подразделяют на обычные ме­таллические, режущие, пластмассовые и резиновые, а также оптические. Ос­новным регламентирующим документом по обработке медицинского инсрументария является: «Отраслевой стандарт. Стерилизации и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы ("I 42-21 - 2-85. Приказ М3 СССР от 10.06.85.). С учётом неблагоприятной эпидситуации по СПИДу ОСТ дополнен приказом ГУЗО и ЦГСЭН № 222/80 от 27.06.00. СанПиН 2.1.3.2630-10 "Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность" СанПиН 3.1.5.2826-10 «Профилактика ВИЧ-инфекции.

Согласно этим документам предполагаются следующие последова­тельные этапы обработки изделий медицинского назначения: дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация.

Дезинфекция проводится для того, чтобы обезопасить медицинский персонал от инфицирования при обработке инструментов после операции. Физические методы дезинфекции (кипячение, паровой и воздушный) в усло­виях стационара практически не применяют из-за громоздкости, недостаточ­ной эффективности или из-за быстрого износа инструментов. В качестве хи­мических методов применяют следующие средства: а) 3% раствор хлорамина - 60 мин; б) 6% раствор перекиси водорода - 60 мин; в) 6% раствор переки­си водорода + 0,5% раствор моющего средства - 60 мин; г) 4% раствор фор­малина (по формальдегиду) - 60 мин; д) 4% раствор перекиси водорода - 90 мин; е) препарат «Сайдекс» - 15 мин. Все инструменты заливают одним из этих растворов до полного их погружения. После дезинфекции их промыва­ют проточной водой.

Предстерилизационная очистка проводится для удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. При предстерилизационной очистке выполняют последовательно следующие действия: а)замачивание на 15 мин в моющем растворе, в состав которого входят перекись водорода 3% - 156 мл, моющее средство - 5 г и вода до объ­ёма - 1 л; б) индивидуальное мытьё каждого изделия в моющем комплексе в течение 30 сек; в) промывание проточной водой после использования мою­щих средств - не менее 3 мин; г) ополаскивание дистиллированной водой для смывания солей; д) высушивание инструментария до полного исчезно­вения влаги.

Собственно стерилизация. Применявшееся ранее кипячение сохраняет своё значение только для дезинфекции или стерилизации инструментов ин­дивидуального пользования. Бели предыдущие этапы проводят при стерили­зации любых инструментов независимо от их вида, то при непосредственной стерилизации дифференцированно используют различные методы в зависи­мости от вида стерилизуемого инструмента.

Обычные металлические инструменты стерилизуются в сухожаровом шкафу или в паровом стерилизаторе (автоклаве).

Стерилизация инструментов в сухожаровом шкафу производится горя­чим воздухом в течение 1 часа при температуре 180 С без их упаковки (от­крытый способ). Для контроля качества стерилизации в сухожаровом шкафу применяют следующие тест-индикаторы: гидрохинон (индикатор приобрета­ет чёрный цвет) и тиомочевину (жёлтый цвет индикатора превращается в оранжевый).

Стерилизация в паровом стерилизаторе происходит в результате воз­действия водяного пара. Он представляет собой две металлические камеры, вложенные одна в другую и герметично закрытые фронтальной крышкой. Пар из парообразователя попадает в наружную камеру, из неё во внутрен­нюю и затем в конденсатор. Если перекрывают выводной вентиль го внут­ренней камеры, то давление пара во внутренней камере начинает расти (мак­симально - до 2 атм.). Параллельно повышается температура пара до 132°С при 2 атм. Обычные металлические хирургические инструменты стерилизу­ют под давлением 2 атм. в течение 20 мин. Современные паровые стерили­заторы должны быть проходного типа, то есть иметь две фронтальные крыш­ки на противоположных сторонах аппарата, причём располагаться эти крыш­ки должны в разных помещениях для полной изоляции стерильного и несте­рильного материала. Кроме того, паровые стерилизаторы должны быть ос­нащены генераторами, создающими пульсирующий вакуум для удаления из стерилизатора воздуха, который является теплоизолятором и препятствует эффективной стерилизации. Стерилизуемые в паровом стерилизаторе инструменты помещают в биксы Шимельбуша или биксы со специальным бактериальным фильтром, а также в специальные пакеты для стерилизации. Стерильные инструменты из закрытого бикса Шимельбуша могут быть использованы в течение 3 суток, из закрытого бикса, оснащённого фильтром, - в течение 20 суток. После открытия биксов или пакетов содержимое их должно быть использовано в течение 1 суток при условии соблюдения всех правил асептики.

Пакеты для стерилизации бывают нескольких видов: а) бумага креппированная, которая заворачивается в виде конверта (при отсутствии нарушений целостности упаковки она сохраняет состояние стерильности содержимого 3 суток); б) бумажная упаковка с полоской термоклея и индикатором стерилизации [ класса (невскрытая упаковка сохраняет стерильность содержимого 60 суток); в) упаковка комбинированная, у которой одна сторона сделана из ламинированной бумаги, а другая - из полиэтиленовой плёнки, имеет полоску термоклея и индикатор стерилизации I класса (невскрытая упаковка сохраняет стерильность содержимого 1 год). Упаковочные пакеты для стерилизации производят европейские фирмы Rexam (Англия), SPS - lab. (Франция), Steriking (Финляндия) и др. Стерилизацию открытым способом в паровом стерилизаторе проводить не следует!

Существуют химические (холодные) методы стерилизации инструмен-тов: 6 % раствором перекиси водорода при температуре 18°С в течение 6 часов, параформом или 16 “/сводным раствором формальдегида в герметичных камерах в течение 48 часов, 0,5 % водно-спиртовом раствором хлоргексидина в течение 5 мин., стерилизация в специальных камерах оксидом этилена РО), а также радиационная стерилизация.

Режущие металлические инструменты (скальпели, хирургические иглы, ножницы и др.) стерилизуют холодными методами, чтобы они не тупились под воздействием горячего пара. Наиболее часто применяют для этой цели перекись водорода или спиртовой раствор хлоргексидина. Ножницы допус­тимо стерилизовать в сухожаровом шкафу. Оптимальным является промыш­ленная лучевая или этиленоксидная стерилизация скальпелей и атравматического шовного материала однократного применения.

Пластмассовые, резиновые и оптические инструменты. Стерилизация резиновых и пластмассовых изделий возможна термическим методом в паро­вом стерилизаторе под давлением 1,1 атм. в течение 45 мин. В настоящее время используют перчатки однократного применения, стерилизованные промышленным лучевым методом, однако в экстремальных условиях стери­лизовать резиновые перчатки можно автоклавированием. Для химического метода стерилизации используют пары формалина, этанол, этиленоксид и др.

Помимо газовой стерилизации оптических приборов (эндоскопы) при­меняют 0,5 % спиртовой раствор хлоргексидина, первомур или сайдекс.

1.2.2. Стерилизация перевязочного материала и операционного бе­лья. К перевязочному материалу и белью относят большие и малые марлевые салфетки, марлевые тампоны, другие специальные марлевые и ватные изде­лия, а также простыни, пелёнки и халаты. Набор материала для автоклавиро- вания называется укладкой. Паровая стерилшация производится в биксах Шиммельбуша, металлических биксах с фильтрами, а также в х/б простынях или пелёнках. Биксы снабжены этикетками, на которых должна быть инфор­мация о содержимом бикса и принадлежности его к той или иной операцион­ной или перевязочной. Процесс подготовки перевязочного материала к опе­рации или перевязке подразделяют на 3 этапа.

I этап предстершизационная подготовка материала. Марлевое по­лотно нарезают на куски различной величины в зависимости оттого, что предстоит изготовить - малые салфетки, большие салфетки, тампоны и т.п. Марля должна быть мягкой и гигроскопичной. Перевязочный материал скла­дывают так, чтобы свободные края были заправлены внутрь салфеток или тампонов.

II этап - укладка и подготовка материала к стерилизации. Существу­ют 3 основных вида укладки биксов. Универсальная укладка обычно исполь­зуется при работе в перевязочных и для малых операций. Материал при этом укладывают в биксы секторами (в один сектор - малые салфетки, и другой - большие салфетки, в третий - тампоны и т. д.), чтобы не приходилось нару­шать стерильность при поиске того или иного вида материала. Целенаправ­ленная укладка включает всё необходимое для выполнения типичных мани­пуляций, процедур и малых операций (укладка для трахеостомии, для кате­теризации подключичной вены, для перидуральной анестезии и др.). В бикс укладывают все необходимые инструменты, перевязочный материал и бельё. Видовая укладка используется при работе в больших операционных блоках. При этом в бикс укладывают один вид перевязочного материала или белья (в один - халаты, в другой - простыни, в третий - салфетки и т.д.).

В настоящее время всё шире используется операционное бельё одно­кратного применения из нетканого материала (простыни, пелёнки халаты, шапочки и маски), а также упаковки с марлевыми салфетками промышлен­ной лучевой стерилизации.

III этап - стерилизация. Стерилизация белья проводится паровым ме­тодом под давлением 2 атм. при температуре 132°С в течение 20 мин. Перед загрузкой в автоклав проверяют, открыты ли отверстия в биксе. После стери­лизации отверстия в биксе в процессе извлечения его из автоклава закрывают металлической вращающейся лентой на корпусе бикса и отмечают на нём да­ту стерилизации.

ОБРАБОТКА РУК ХИРУРГА

Обработка (мытье) рук хирурга - очень важная процедура. Существуют определенные правила мытья рук. Последовательно нужно осуществить: механическую и химическую (обезжиривание) обработку, воздействие антисептических средств и дубление (закрытие пор для поддержания стерильности поверхности кожи).

Современные способы обработки рук не требуют специального дубления (используются пленкообразующие антисептики или антисептики с элементом дубления).

Механическая и химическая обработка

Механическая и химическая обработка проводятся посредством мытья рук под краном со щеткой и мылом. Руки тщательно моются от кончиков пальцев до верхней трети предплечья. При этом соблюдается определенная последовательность обработки, в основе которой лежит принцип «не касаться обработанными участками рук менее чистой кожи и предметов».

Применение современных способов допускает мытье рук просто с мы-лом или с помощью жидких моющих средств (при отсутствии бытового загрязнения рук).

Стерилизация инструментов – первый шаг на операции. Инструменты можно стерилизовать, кипячением (основной способ), обжиганием (фламбирование) и антисептическими растворами (химическая стерилизация).
Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют их исправность. Инъекционные иглы после удаления смазки промывают эфиром или спиртом. Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели, гемостатические пинцеты) стерилизуют полураскрытыми или в разобранном виде. Режущие и колющие инструменты обвёртывают марлей для предохранения от затупления.
Стерилизация кипячением. Для стерилизации инструментов пользуются простым стерилизатором, для подогрева которого используют любой источник тепла (примус, газовую плиту, электроплитку и т. д.), или электрическим. При отсутствии стерилизатора используют любую эмалированную посуду с крышкой.
Стерилизатор представляет собой продолговатую металлическую коробку с крышкой и вставной сеткой с ручками, за которые ее удерживают крючками при извлечении инструментов из кипящей воды.
При работе с электрическими стерилизаторами следят за исправностью проводов, штепсельной вилки и розетки, а также не допускают затекания воды в нагревательный элемент. Стерилизатор ставят на огнеупорный материал.
Для стерилизации инструментов кипячением в стерилизатор наливают необходимое количество воды и добавляют 0,25% гидроокиси натрия или 2% карбоната натрия. Указанные растворы щелочей, осаждая углекислые соли кальция и магния, предохраняют инструменты от ржавчины. Раствор доводят до кипения и через 3 – 5 мин с момента его закипания в стерилизатор погружают сетку с предварительно разложенными на ней инструментами. В холодную воду инструмент класть нельзя, так как выделяющийся при нагревании ее кислород быстро окисляет металл.
Продолжительность стерилизации инструментов 15-20 мин; время отсчитывают от момента закипания раствора после погружения в него сетки с инструментами. По истечении указанного срока сетку извлекают из стерилизатора и, как только стечет с инструментов вода, их раскладывают на стерильном инструментальном столике, тазике или оставляют в стерилизаторе, предварительно вылив из него воду.
Инструменты после операции моют щеткой в проточной воде, кипятят в 2%-ном растворе бикарбоната натрия, вытирают, слегка смазывают (только замок) вазелиновым маслом и убирают в инструментальный шкаф. Продолжительность кипячения инструментов после асептических операций 15 мин, а после гнойных – 45 мин. Инструменты, загрязненные анаэробными микробами (возбудители газовой гангрены, столбняка, некробациллеза и др.), кипятят с небольшими перерывами 2-3 раза по 30 мин.
Стеклянные приборы (шприцы, мензурки, пробирки и др.) стерилизуют отдельно от металлических инструментов в дистиллированной, дождевой или прокипяченной воде без добавления щелочей. Шприцы кипят обязательно в разобранном виде, так как они могут лопнуть вследствие разницы в коэффициенте расширения при нагревании стеклянного цилиндра и металлического поршня. Перед кипячением составные части шприца, и другие стеклянные предметы предварительно обвертывают марлей и опускают в еще не нагретую воду. Продолжительность стерилизации стеклянных предметов 15 мин. Шприцы Жанэ, кроме того, можно стерилизовать в автоклаве.
Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин пли в автоклаве.
Стерилизация обжиганием. Этим способом обычно стерилизуют крупные инструменты и эмалированную посуду. Другие инструменты стерилизуют обжиганием редко, преимущественно при неотложных операциях, когда нет времени для стерилизации кипячением. Инструменты кладут в эмалированный тазик или стерилизатор, обливают небольшим количеством (10 мл) спирта и равномерно обжигают. Стерилизация обжиганием недостаточно надежна. Кроме того, при обжигании сильно портятся инструменты, особенно режущие.
Химическая стерилизация. Для химической стерилизации инструменты погружают в один из следующих антисептических растворов: 1) жидкость Каретникова (формалин – 20 г, кислота карболовая – 3 г, натрия карбонат- 15 г, вода дистиллированная- 1000 мл) -на 30 мин; 2) 3 – 5%-ный раствор кислоты карболовой – на 30 или 60 мин; 3) раствор бактерицида 1:3000 – на 10 мин; 4) 1%-ный спиртовой раствор бриллиантового зеленого на 15 мин; 5) 0,5%-ный спиртовой раствор формалина; 6) раствор фурацилина 1:5000.
Химическая стерилизация инструментов применяется в случаях, когда по каким-либо причинам нет возможности прокипятить их или если они от кипячения портятся.
Оптические инструменты (цистоскопы, ларингоскопы и др.) стерилизуют погружением в спирт на 10 мин, а затем переносят г. раствор основной цианистой ртути (1:1000) на 15 мин. Окуляры в химические растворы погружать нельзя; их перед пользованием протирают спиртом.
Разрабатывается и испытывается методика стерилизации инструментов и перевязочных материалов ионизирующим излучением, которое обладает выраженным антимикробным действием.

Существуют холодные и горячие способы стерилизации инструментов. К горячим относятся: стерилизация кипячением в воде, фламбирование и др. К холодным способам относится стерилизация в тройном растворе Каретникова.

Стерилизация кипячением в воде. Предложен Давидсоном и Кумером в 1881 году. Проводится в стерилизаторах. Вымытые инструменты погружаются в предварительно прокипяченую (10 минут) воду для удаления углекислоты и кислорода и кипятят 30 минут. Перед стерилизацией инструменты проверяют на пригодность. Если они были покрыты вазелином, то его вытирают. Смазанные вазелином иглы протирают и промывают эфиром или спиртом. Режущую часть скальпеля предварительно заворачивают в марлю. Хирургические иглы нанизывают на кусок марли с тем, чтобы они не затерялись, если инструментов много.

С целью повышения эффекта стерилизации инструменты кипятят в 3% растворе двууглекислой соды, или в 0,25% растворе едкого натра. По окончании стерилизации инструменты тотчас извлекают с решеткой стерилизатора, открывая крышку так, чтобы пар выходил из стерилизатора, не обжигая при этом руки и лицо. При необходимости повторной стерилизации воду не сливают.

Инструменты с решетки стерилизатора раскладывают на инструментальном столике, покрытым в три ряда стерильной простыней или полотенцем. Раскладку инструментов лучше проводить щипцами Микулича или корнцангом. При этом строго соблюдается определенный порядок -- однотипные инструменты на одном месте и в определенной, характерной для каждой операции последовательности. Марлю, в которой были завернуты скальпели, следует развернуть. Разложенные инструменты покрывают стерильной простыней или полотенцем.

Инъекционные иглы и шприцы стерилизуют в отдельном стерилизаторе и только в воде, поскольку наличие щелочей и др. (желательно дистиллированной) дезинфектантов может привести к инактивации лекарственных средств (например, щелочь инактивирует новокаин). При этом иглы и шприцы предварительно тщательно моют проточной водой и помещают в холодную воду в разобранном виде. Иглы стерилизуют с мандренами и помещают в стерилизатор через 10 минут после того, как в нем закипит вода.

Стерилизация инструментов фломбированием (обжиганием), Разобранный инструмент раскладывают в чистый эмалированный тазик или ванну, наливают необходимое количество спирта и зажигают его. В период горения спирта инструмент желательно перевернуть, поскольку в местах соприкосновения с дном он не может хорошо простерилизоваться.

Этот способ дорогой и небезопасный. Кроме того, длительное обжигание отпускает сталь, портит нержавеющие покрытия, тупит режущие части инструментов. Поэтому фламбирование используется лишь при оказании экстренной хирургической помощи, а также для стерилизации эмалированной посуды, когда за недостатком времени невозможны другие способы стерилизации.

Холодные способы стерилизации имеют большое практическое значение, поскольку позволяют обеспечить стерильность хирургических инструментов даже в полевых условиях, где нет возможности применить надежную тепловую обработку.

Стерилизация инструментов в тройном растворе Каретникова. Метод предложен в 1938 году. Раствор состоит из 20 г формалина, 15 г соды, 3 г карболовой кислоты и 1 литра дистиллированной воды. Продолжительность стерилизации 30 минут. Способ обеспечивает надежную стерилизацию инструментов, не портит их, предохраняет от ржавчины. При продолжительном хранении в банках с притертыми пробками раствор не теряет своих бактерицидных свойств и остается прозрачным.

Аналогичным образом можно стерилизовать инструменты в растворе бактерицида 1:3000 с содой 1% - 10 минут: в риваноле (этакридина лактат) 1:500 - 30 минут; в 1% спиртовом растворе бриллиантовой зелени - 15 минут.

Шприцы стерилизуют в растворе Китцлера, который состоит из: 3 г карболовой кислоты, 15 г буры и 20 г формалина на 1 литр воды. Продолжительность стерилизации -- 30 минут.

При гнойных операциях инструменты, бывшие в употреблении, вытирают влажной марлей (руками в перчатках), затем стерилизуют в течение 10 минут в 2% растворе углекислого натрия с добавлением 0,5% раствора лизола, вытирают сухим полотенцем и высушивают. При операциях, связанных с анаэробными процессами, а также в случае загрязнения инструментов землей их погружают на 10 минут в раствор лизола и после механической очистки стерилизуют в течение 30 минут в 0,25% растворе едкого натрия или в 2% растворе углекислой соды с прибавлением 0,5% лизола, после чего вытирают обычным порядком.

Хранение инструментов. Инъекционные иглы можно хранить в банках с притертой пробкой в жидкости Никифорова (спирт с эфиром поровну) или в растворе Китцлера. При этом в каждую иглу следует ввести мандрен. Темные пятна или ржавчину, образовавшуюся на инструментах можно удалить с помощью мела с нашатырным спиртом в отношении 2:1 пли порошком водной окиси железа.

Инструменты необходимо хранить в чистом сухом помещении, инструментальных шкафах, всегда плотно закрытых. Во избежание появления ржавчины на инструментах желательно иметь в шкафах сосуды, наполненные наполовину хлористым кальцием, которые хорошо поглощают влагу из воздуха.

Нельзя хранить инструменты вместе с препаратами йода. Редко употребляемые инструменты должны быть смазаны нейтральным жиром -- вазелином или натуральной олифой.

Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде. Для этого их заворачивают в марлю (чтобы не подгорели) и кипятят в течение 30 минут или холодным способом в парах формалина. Берут соответствующей величины стеклянный сосуд с герметической крышкой. На дно сосуда наливают немного формалина. Затем подвешивают к крышке пли укрепляют на специальной подставке катетеры (бужи, другие резиновые инструменты) и плотно закрывают крышку. Продолжительность стерилизации -- 24 часа. Резиновые изделия, бывшие в употреблении, механически очищают перед каждой стерилизацией теплой водой с мылом и мягкими щетками или куском марли.

Резиновые катетеры и бужи можно стерилизовать путем кипячения в 40% растворе хлористого натрия в течение 30 минут или холодным способом в парах формалина, или в 0,1% водном или 0,1% спиртовом (спирт 70° или 96°) растворе декаметоксина (протирают салфеткой в течение 3 минут).

Стерилизация инструментов с оптикой, которую используют для эндоскопии, моют в воде с мылом и протирают салфеткой, смоченной 6% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором синтетического моющего средства (Рубленко М.В.. 1996).

Оптические инструменты можно стерилизовать в растворе фурацилина (1:5000) в течение 30-50 минут. Оптическая система протирается этиловым спиртом или 2,5% раствором гибитана (хлоргексидина биглкжоната).

При стерилизации инфузионных систем, шприцев-автоматов, что имеют в своем составе полимерные материалы, следует обращать особое внимание на узлы и элементы, которые вступают в непосредственный контакт с лечебным веществом. Предварительно эти места моют 3% раствором перекиси водорода с 0,5-1% раствором синтетического моющего средства или смесью равных частей 1% раствора натрия гидрокарбоната и I % раствора аммиака. Дальнейшая обработка предполагает погружение инструментов в раствор одного из нижеперечисленных антисептиков: 0,5-2,5% гибитана (хлогексидина биглюконата) (20-30 минут), 0,1% диоцида (30 минут), 6% перекиси водорода (6 часов), 4,8% первомура (15 минут), или 70° этилового спирта (2 часа). Все антисептические средства, кроме перекиси водорода после стерилизации смывают стерильной водой.