Sterilizacija zavoja: metode i oprema. Asepsa, definicija. Osnovni zakon asepse. Osnovne metode sterilizacije instrumenata, zavoja i posteljine. Kontrola sterilnosti Kako sterilizirati kuglice od gaze

STERILIZACIJA ZAVOJNOG MATERIJALA I PLATNE a) Vrste zavojnog materijala i hirurškog platna.. Zavojni materijal uključuje kuglice od gaze, tampone, salvete, zavoje, turunde, štapiće od pamučne gaze. Materijal za zavoj se obično priprema neposredno prije sterilizacije, koristeći posebne tehnike za sprječavanje osipanja pojedinačne niti gaza. Radi lakšeg brojanja, kuglice se stavljaju u gazne salvete u grupama od 50-100, a salvete i tamponi se vezuju po 10 komada.Materijal se ne koristi ponovo i nakon upotrebe spaljuje. Operativna posteljina uključuje hirurške haljine, posteljinu, peškire i posteljinu. Materijal za njihovu proizvodnju su pamučne tkanine. Nakon upotrebe, hirurško rublje za višekratnu upotrebu pere se odvojeno od ostalih vrsta posteljine. b) Sterilizacija Oblozi i posteljina se sterilišu autoklavom pod standardnim uslovima. Prije sterilizacije oblačenje a veš se stavlja u kante. Postoje tri glavne vrste bix stila: Univerzalni stajling Obično se koristi u svlačionicama i manjim operacijama. Bix je konvencionalno podijeljen na sektore, a svaki od njih je napunjen određenom vrstom materijala za oblaganje ili posteljinom: salvete se stavljaju u jedan sektor, salvete se stavljaju u drugi - loptice, u trećem - tamponi itd. Ciljani stil Dizajniran za izvođenje tipičnih manipulacija, procedura i manjih operacija. Na primjer, kutija za traheostomiju, za kateterizaciju subklavijske vene, za epiduralnu anesteziju itd. U kutiju se stavljaju svi instrumenti, zavoji i posteljina potrebni za zahvat. Tip styling Obično se koristi u operacionim salama gde se nalaze velike količine sterilni materijal.. U ovom slučaju, na primjer, hirurški ogrtači se stavljaju u jednu kutiju, čaršave u drugu, salvete u treću itd. U malim količinama koristi se zavojni materijal u paketima koji su podvrgnuti radijacijskoj sterilizaciji. kompleti hirurškog platna za jednokratnu upotrebu (ogrtači i čaršavi), izrađeni od sintetičkih tkanina koje su takođe podvrgnute radijacijskoj sterilizaciji METODE KONTROLE STERILITETA Sve radnje u vezi sa obradom i sterilizacijom instrumenata, posteljine i sl. podležu obaveznoj kontroli. prati se sterilizacija i kvalitet predsterilizacijske pripreme. a) Kontrola steriliteta Sve metode kontrole steriliteta dijele se na direktne i indirektne. ~ Direktna metoda kontrola steriliteta je bakteriološki pregled: poseban sterilni štap se koristi za prelazak preko sterilnih instrumenata (koža ruku hirurga ili hirurško polje, hirurško rublje i sl.), nakon čega se stavlja u sterilnu epruvetu i šalje u bakteriološku laboratoriju, gdje se inokulira na različite hranjive podloge i na taj način utvrđuje bakterijska kontaminacija. Bakteriološka metoda kontrole steriliteta je najpreciznija. Negativna točka je trajanje studije: rezultat kulture bit će spreman tek nakon 3-5 dana, a instrumenti se moraju koristiti odmah nakon sterilizacije. Stoga se bakteriološka istraživanja sprovode prema planu i na osnovu njegovih rezultata metodološke greške u radu medicinskog osoblja ili kvarovi u opremi koja se koristi. Prema postojećim standardima, koji se neznatno razlikuju za različite vrste instrumentima, bakteriološki pregled treba obaviti jednom u 7-10 dana. Indirektne metode kontrole se uglavnom koriste u metodama termičke sterilizacije i omogućavaju određivanje temperature na kojoj je tretman obavljen, bez davanja tačnog odgovora na prisustvo ili odsustvo mikroflore. Prednost indirektnih metoda je brzina dobijanja rezultata i mogućnost upotrebe prilikom svake sterilizacije.Pri autoklaviranju se obično stavlja ampula (epruveta) sa praškastom supstancom koja ima tačku topljenja u rasponu od 110-120°C. a bis. Nakon sterilizacije, prilikom otvaranja biksa, medicinska sestra prije svega obraća pažnju na ovu ampulu: ako se tvar otopila, onda se materijal (instrumenti) može smatrati sterilnim. Ako nije, grijanje je bilo nedovoljno i takav materijal se ne može koristiti - nesterilan je. Za ovu metodu najčešće se koriste: benzojeva kiselina ((° talište - 120°C), rezorcin (<; ° плавл. - 119°С), антипирин (1° rastopljeni - 110°S). Umjesto ampule, u Bix se može postaviti indikator temperature ili maksimalni termometar koji se može koristiti i za utvrđivanje da li je tokom procesa obrade postignuta potrebna temperatura.

9. Uređaj za autoklav Tehnika sterilizacije.

U principu, svaki autoklav ima radnu komoru, generator pare sa manometrom, grijaći element, sistem za dovod pare, ventil za ispuštanje pare i sigurnosni ventil. Tehnika autoklaviranja uključuje sljedeće radnje: 1. Sipanje vode u generator pare.2. Postavljanje biksa u komoru autoklava.3. Zagrijavanje vode do stvaranja para.4. Podizanje pritiska u radnoj komori na 1 atm. i oslobađanje zaostalog vazduha.5. Podizanje pritiska u režim sterilizacije.6. Tokom procesa sterilizacije treba uzeti u obzir sljedeće parametre: 1,1 atm. - 121,2°C - 60 min., 1,5 atm. - 126,8°C - 45 min., 2 atm. - 132, 9°C - 30 min., 2, 2" - 135, HS - 20 min., 2, 4" - 137, 2°C - 15 min.7. Isključivanje autoklava.8. Oslobađanje pare, smanjenje njenog pritiska u komori na nulu.9. Sušite veš 5 minuta. sa zatvorenim poklopcem.10. Otvaranje poklopca, vađenje kanti, zatvaranje prstenova na bubnjevima.11. Ispuštanje vode iz generatora pare.12. Sušenje autoklava. Zatvorena posuda održava sterilnost predmeta koji se nalaze u njoj 72 sata.

10. Metode sterilizacije optičkih instrumenata.Sterilizacija optičkih instrumenata Glavni metod sterilizacije optičkih instrumenata koji zahtevaju najblaži tretman sa izuzetkom grejanja je gasna sterilizacija.Svi instrumenti za laparoskopske i torakoskopske intervencije se obrađuju ovom metodom, što je povezano sa njihovim složenim dizajnom i visokim troškovima.Pri sterilizaciji vlakana gastroskopi, holedohoskopi, kolonoskopi Moguća je i hladna sterilizacija hemijskim antisepticima (etil alkohol, hlorheksidin, Sidex - dvokomponentni preparat na bazi glutaraldehida) Posebno treba napomenuti da je najbolji način za sprečavanje kontaktne infekcije korišćenjem instrumente za jednokratnu upotrebu koji su podvrgnuti radijacijskoj fabričkoj sterilizaciji.

11. Materijal za šavove, klasifikacija. Sterilizacija svile, najlona.

STERILIZACIJA ŠIVNOG MATERIJALA a) Vrste šavnog materijala Postoji dovoljna raznolikost vrsta materijala za šavove. Materijal za šavove prirodnog i vještačkog porijekla Materijali za šavove prirodnog porijekla uključuju svilu, pamučni konac i catgut. Ketgut se pravi od submukoznog sloja crijeva goveda. Materijal za šavove umjetnog porijekla trenutno predstavlja ogroman broj niti stvorenih od sintetičkih kemikalija: najlon, lavsan, fluorolon, poliester, dacron itd. Materijal za šavove koji se može apsorbirati i koji se ne može apsorbirati Upijajući šavovi se koriste za šivanje brzo zarastajućeg tkiva u slučajevima kada nije potrebna visoka mehanička čvrstoća. Ovaj materijal se koristi za spajanje mišića, vlakana i mukoznih membrana gastrointestinalnog trakta, žučnih i urinarnih puteva. Klasičan primjer upijajućeg materijala za šavove je catgut. Catgut konci se potpuno apsorbuju u tijelu nakon 2-3 sedmice. Sintetički upijajući materijali uključuju Dexon, Vicryl, Oxcylon. Rokovi njihov resorpcija je približno ista kao kod hromiranog catguta, ali imaju povećanu čvrstoću, što omogućava upotrebu tanjih niti. Sve ostale niti (svila, najlon, lavsan, poliester, fluor, metalne kopče, itd.) su neupijajuće - ostaju u tijelu pacijenta cijeli život. Traumatski i atraumatski šavni materijal Dugi niz godina, tokom hirurške operacije, operativna sestra je neposredno pre postavljanja šava uvlačila odgovarajući konac u odvojivo ušicu hirurške igle. Takav materijal za šavove trenutno se naziva traumatskim. Poslednjih decenija je široko rasprostranjen atraumatski materijal za šavove.Konac se u fabrici čvrsto vezuje za iglu i namenjen je za postavljanje jednog šava. Glavna prednost atraumatskog šavnog materijala je u tome što promjer konca približno odgovara promjeru igle (kada se koristi traumatski, debljina konca je znatno manja od promjera ušice igle), tako da konac gotovo u potpunosti pokriva defekt tkiva nakon prolaska igle. Metalne kopče, terminali i obujmice od nerđajućeg čelika, titanijuma, tantala i drugih legura stoje nešto odvojeno. b) Metode sterilizacije šavnog materijala Trenutno, glavna metoda sterilizacije šavnog materijala je sterilizacija zračenjem u fabrici. Ovo se u potpunosti odnosi na atraumatski šavni materijal: igla i konac se stavljaju u posebno zapečaćeno pakovanje, što ukazuje na veličinu i vrstu igle (probijanje ili rezanje), materijal, dužinu i broj konca. Materijal za šavove se steriliše i u ambalaži dostavlja u medicinske ustanove. Klasične metode sterilizacije svile (Kocherova metoda), katguta (metode Sitkovskog u jodnoj pari, Gubareva i Klaudija u alkoholu i vodenim rastvorima Lugola) sada su praktično napuštene zbog njihov trajanje, složenost i ne uvek dovoljna efikasnost.U bolničkim uslovima sada se sterilišu samo najlonske, lavsanske i metalne kopče. Steriliziraju se kuhanjem ili autoklaviranjem. Nakon sterilizacije ili otvaranja pakovanja nakon sterilizacije zračenjem, materijal za šavove može se čuvati samo u 96° etil alkoholu.

2. Pirogova uloga u razvoju domaće hirurgije.

Nikolaj Ivanovič Pirogov (1810-1881) diplomirao je 1828 medicinski fa kult Moskovskog univerziteta i poslan je u Dorpat na Profesorski institut da se pripremi za nastavu. IN 1832_. N. I. Pirogov odbranio je doktorsku disertaciju „O vezivanju trbušne aorte“. 1836 N. I. Pirogov je bio na čelu hirurške klinike na Univerzitetu u Dorpatu. Godine 1841. prelazi u Sankt Peterburg na Medicinsko-hiruršku akademiju, na njegov prijedlog stvara se nova klinika bolničke hirurgije i patološke anatomije; na ovom odseku je ostao do 1856. N.I.Pirotov je pisao: „...Niko nikada nije predstavio tako celovitu sliku. slike normalnog položaja organa, kao ja.“ Pokazalo se da položaj mnogih organa (srce, želudac, crijeva) nije nimalo isti kao što se obično čini prilikom obdukcija, kada zbog pritiska zraka i narušavanja integriteta hermetički zatvorenih šupljina, ovaj položaj se mijenja do ekstrema.” Značaj naučne delatnosti N. I. Pirogova je u stvaranju prirodne naučne osnove za hirurgiju i u prevazilaženju, u velikoj meri, empirizma. N. I. Pirogov je postavio temelje nove nauke o hirurškoj anatomiji. Razvio je metodu osteoplastičnog produžavanja kostiju potkoljenice prilikom enukleacije stopala (1851), pisao o resekciji kolenskog zgloba, o rezanju Ahilove vene i o plastičnom procesu koji nastaje pri fuziji krajeva prerezane vene, o rinoplastici. Velike zasluge N. I. Pirogova u područja za ublažavanje bolova. Jedan od prvih u Evropi koji je koristio etar tokom operacije, N. I. Pirogov je prvi u svetu upotrebio etersku anesteziju prilikom pružanja pomoći ranjen na bojnom polju u Saltyju. Izvanredna uloga I. I. Pirogova u stvaranju i razvoju vojno-poljske hirurgije pitanja vojnomedicinskih organizacija stvari koje treba uraditi. N. I. Pirogov se založio za seciranje ulaznih i izlaznih rupa "u slučaju neugodnosti transporta ranjenika" iu slučaju nedostatka pažljivog nadzora, odbio je rano amputacije zbog požara prostrijelne rane udova sa oštećenje kostiju preporučeno" hirurgija štednje", razvijena i uveo metodu u široku praksu Metode imobilizacije ekstremiteta(škrob, gipsani zavoji). N. I. Pirogov je prvi u Rusiji uveo gips. Mnogi aspekti naučne i kliničke aktivnosti N. I. Pirogova značajno su uticali na kasniji razvoj medicine i zadržali svoj značaj za modernu medicinu: stvaranje topografske i hirurške anatomije, uvođenje eterske anestezije u hiruršku praksu, tumačenje upale. as reakcije tijela u cjelini, razvoj učenja o zaraznoj prirodi procesa rane, o djelovanju antiseptika.

12. Sterilizacija hirurških instrumenata.

STERILIZACIJA HIRURŠKIH INSTRUMENTA a) Presterilizacijska priprema Presterilizaciona priprema se sastoji od dezinfekcija, pranje i sušenje. Njemu su podvrgnute sve vrste instrumenata, a vrsta i obim presterilizacionog tretmana u bliskoj prošlosti određivan je stepenom infekcije instrumenata. Sve procedure predsterilizacije moraju se izvoditi u rukavicama! Dezinfekcija Odmah nakon upotrebe instrumenti se uranjaju u posudu sa dezinfekcionim sredstvima (akumulator). U tom slučaju moraju biti potpuno uronjeni u otopinu. Kao dezinficijens koristi se 3% rastvor hloramina (izlaganje 40-6,0 minuta) ili 6% rastvor vodonik peroksida (izlaganje 90 minuta). Nakon dezinfekcije, instrumenti se peru tekućom vodom. Oprati e Alati se uranjaju u posebnu otopinu za pranje (alkalnu), koja uključuje deterdžent (prašak za pranje), vodikov peroksid i vodu. Temperatura rastvora 50-60°C, ekspozicija 20 minuta Nakon toga instrumenti se peru četkama u istom rastvoru, a zatim u tekućoj vodi. Sušenje Sušenje se može obaviti prirodnim putem. Nedavno, posebno tokom naknadne sterilizacije vrućim vazduhom, instrumenti se suše u suvo zagrejanoj peći na 80°C 30 minuta. Nakon sušenja, instrumenti su spremni za sterilizaciju. Izbor metode sterilizacije prvenstveno zavisi od vrste hirurških instrumenata. b) Zapravo sterilizacija Svi hirurški instrumenti, prema karakteristikama upotrebljenih materijala i drugim kvalitetama, mogu se podeliti u tri grupe: metalni (rezni i nerezni), gumeni i plastični i optički. Sterilizacija nerezanih metalnih instrumenata. Glavna metoda sterilizacije je sterilizacija toplim vazduhom u suvogrejanoj peći ili u autoklavu pod standardnim uslovima. Moguće je koristiti i prokuvavanje. Međutim, ne preporučuje se prokuhavanje instrumenata nakon operacija za anaerobnu infekciju i u rizičnoj grupi za hepatitis.Neke vrste jednostavnih instrumenata (pincete, stezaljke, sonde i sl.) namijenjene jednokratnoj upotrebi mogu se sterilizirati zračenjem. Sterilizacija instrumenata za rezanje metala Sterilizacija reznih instrumenata termičkim metodama dovodi do njihov tupost i gubitak svojstava neophodnih za hirurga. Glavna metoda sterilizacije reznih instrumenata je hladna kemijska metoda korištenjem antiseptičkih otopina. Nedavno se u svlačionicama rezni instrumenti, kao i nerezni instrumenti, steriliziraju u suhoj pećnici, što dovodi do blagog smanjenja njihove oštrine, ali osigurava apsolutnu sterilnost. Najbolji metodi sterilizacije su gasna sterilizacija, a posebno zračenje u fabričkim uslovima. Potonja metoda je postala široko rasprostranjena kada se koriste jednokratne oštrice skalpela i hirurške igle (atraumatski materijal za šavove). Sterilizacija gumenih i plastičnih instrumenata Glavna metoda sterilizacije gumenih proizvoda je autoklaviranje. Ponovljenom sterilizacijom guma gubi svoja elastična svojstva i puca, što je nedostatak metode. Također je prihvatljivo kuhati gumene proizvode 15 minuta. Plastični proizvodi za jednokratnu upotrebu, kao i kateteri i sonde, podliježu tvorničkoj sterilizaciji zračenja. Posebno treba spomenuti sterilizaciju rukavica. U posljednje vrijeme najčešće se koriste rukavice za jednokratnu upotrebu koje su prošle radijacijsku tvorničku sterilizaciju. Za višekratnu upotrebu, glavna metoda sterilizacije je autoklaviranje u nježnom načinu: nakon tretmana prije sterilizacije, rukavice se osuše, posipaju talkom (sprečava lijepljenje), umotaju u gazu, stave u vrećicu i autoklaviraju na 1,1 atm. 30-40 minuta ili na 1,5 atm - 15-20 minuta.

9. Otkazivanje Srca.Otkazivanje Srca. Ozbiljna komplikacija koja se može pojaviti iznenada: puls nestaje, srčani tonovi se ne čuju, disanje prestaje i pojavljuje se jako bljedilo. Zenice su proširene, mišići opušteni, rana prestaje da krvari. Neophodno je, uz nastavak umjetnog disanja i osiguravanje dovoljne opskrbe tijela kisikom, odmah započeti masažu srca u prva 4 minute. Postoje dvije metode: zatvorena (indirektna) i otvorena. Masaža zatvorenog srca, Brza i efikasna metoda obnavljanja srčane aktivnosti, koja se izvodi ritmičnim, trzajnim pritiskom na donju trećinu grudne kosti do 60 puta u minuti. Prilikom pružanja pomoći od strane dva ljekara vrši se 5 trzajnih pritisaka na grudnu kost po jednoj injekciji u pluća, a kod pružanja pomoći od strane jednog ljekara vrši se 15 trzajnih pritisaka na prsnu kost nakon svaka dva brza naduvavanja u pluća. Svakim pritiskom prsna kost bi se trebala približiti kralježnici otprilike 3-4 cm, srce je komprimirano i krv ulazi u žile plućne i sistemske cirkulacije. Kada prestane pritisak na prsnu kost, srčane šupljine se pune krvlju. Tokom zatvorene masaže srca, pacijent mora biti postavljen na tvrdu podlogu. Ako je zatvorena masaža srca efikasna, pojavljuje se puls u perifernim žilama, zjenice se sužavaju, a koža dobiva ružičastu nijansu. Masaža otvorenog srca može se izvesti transtorakalnim subdijafragmatičnim i transdijafragmatskim putevima.

7. Metode obrade hirurškog polja. Poslednjih godina počeli su da se koriste i drugi antiseptički preparati za lečenje hirurškog polja: 1% rastvor degmina, kojim se tamponi obilno navlaže i koža se njime dva puta tretira; 05% rastvor hlorheksidina (voda-alkohol) se koristi za tretiranje kože dva puta u razmaku od 2 minuta.
Racionalna zamjena za alkoholnu otopinu joda je jodonat - vodeni rastvor kompleksa surfaktanta s jodom. Lijek sadrži 45% joda. Za liječenje kirurškog polja koristi se 1% otopina, za koju se originalni jodonat razrijedi 45 puta destilovanom vodom. Ovim rastvorom se koža maže dva puta pre operacije. Prije šivanja koža se ponovo obrađuje. Vidi (4).

10. Komplikacije tokom endotrahealne anestezije. KOMPLIKACIJE SA ENDOTRAHEALNOM NARKOZOM Prije nego što opišemo komplikacije endotrahealne anestezije, potrebno je podsjetiti se na vrste hipoksije: Hipoksična hipoksija. Samo ime sugerira da u udahnutom zraku ima malo kisika. Najčešće se javlja kada u smjesu dodamo malo kisika. Najčešće se ova situacija događa kada se koristi dušikov oksid (idealan maksimalni omjer je 3 prema 1); ako je anestezija nedovoljna, a anesteziolog poveća udio dušikovog oksida na više od 80%, tada će se nužno razviti hipoksična hipoksija. U životu se hipoksična hipoksija javlja prilikom penjanja na planine. Hemička hipoksija. Češće se javlja kod masivnog gubitka krvi, kada ima malo hemoglobina. Obično se liječi transfuzijama krvi i mehaničkom ventilacijom. Cirkulatorna hipoksija. Najčešće se javlja kod kardiovaskularnog zatajenja, kada krv ne dospijeva u mikrocirkulaciju. Najčešće se to događa kod hipotenzije, kada se ne održava normalan kapilarni tlak i prirodno kisik ne dolazi do stanica. Histotoksična hipoksija se javlja kod raznih trovanja. U anesteziološkoj praksi to je povezano s predoziranjem određene narkotičke tvari. KOMPLIKACIJE: Komplikacije povezane s intubacijom: Čini se da je intubacija jednostavna procedura, ali, nažalost, postoji veliki broj osoba s posebnostima anatomske i fiziološke strukture: glava je slabo ispravljena, vilica je slabo izbočena, epiglotis je kratak, a tokom intubacije, čak i u veštim rukama, glotis se ne vidi. I nažalost, neki pacijenti još uvijek umiru od neuspješne intubacije. U takvim slučajevima potrebno je u pomoć pozvati iskusnijeg ljekara. Ako to ne uspije, onda je potrebno izvesti traheostomiju, ili osobu možete spasiti difuznim disanjem: dušnik se probuši jednostavnom iglom, na iglu je spojena cijev i protok kisika. To znači da čak i ako osoba ne diše, obezbjeđujemo joj difuziju kisika, koja je sigurna pola sata. Pošto se oksigenacija odvija dobro, ali se ugljični dioksid akumulira u smrtonosnoj dozi nakon 30-40 minuta. Oštećenje jezika, stražnjeg dijela grla, zuba. Kink u cijevi. Laringospazam je komplikacija bilo koje vrste anestezije. Laringospazam je opasan za vrijeme uvodne anestezije; ponekad se glasne žice zatvaraju tako čvrsto da je nemoguće proći cijev. U takvim slučajevima najefikasnija je upotreba mišićnih relaksansa jer... Skeletni mišići su ti koji su uključeni u laringospazam. Svaki laringospazam se ublažava davanjem mišićnih relaksansa, ali treba imati na umu da se pacijent mora brzo prebaciti na mehaničku ventilaciju odmah nakon intubacije. Bronhospazam se javlja kada se glatki mišići kontrahuju, na koje ne utiču miorelaksanti, pa se koriste bronhodilatatori, počevši od aminofilina. Ftorotan ima snažan bronhodilatatorski učinak, koji se može koristiti čak i u liječenju bronhijalne astme.

2. Čuvanje i skladištenje krvi.

SKLADIŠTENJE KRVI Očuvanje krvi je kompleks djelovanja na nju, usmjeren na stvaranje uvjeta za dugotrajno skladištenje krvi izvan tijela u sterilnom stanju uz maksimalno očuvanje njenih bioloških svojstava (i formiranih elemenata i tečnog dijela krvi) Za konzerviranje krvi koriste se dvije metode: konzerviranje na pozitivnim temperaturama i konzerviranje na negativnim temperaturama. Čuvanje krvi na pozitivnim temperaturama obično se dešava u kućnim sobnim frižiderima koji obezbeđuju održavanje temperaturnih uslova u rasponu od +2 do +4°C. Konzervirana puna krv, crvena krvna zrnca i nativna plazma mogu se čuvati na ovim temperaturama.Različite komponente krvi imaju različit rok trajanja. Na primjer, crvena krvna zrnca mogu zadržati svoja svojstva nekoliko sedmica, ali bijela krvna zrnca i trombociti mogu zadržati svoja svojstva samo nekoliko dana. To se objašnjava činjenicom da su leukociti i trombociti nuklearne ćelije sa složenijim funkcijama, a tokom dugotrajnog skladištenja promene prvenstveno utiču na jezgro ćelije. Rok trajanja prirodne plazme je ograničen na tri dana. To je zbog činjenice da je za to vrijeme većina biološki aktivnih supstanci uključenih u njen sastav inaktivirana, a kako bi se izbjegle takve neželjene posljedice tokom dugotrajnog skladištenja krvi, koristi se njeno čuvanje na temperaturama ispod nule. Ovo vam omogućava da produžite rok trajanja krvi zbog činjenice da su metabolički procesi u ćelijama značajno potisnuti, a to sprečava njihovo rano „starenje“. Za kriokonzervaciju se koriste sledeći temperaturni uslovi: umereno niske temperature (–40.. .–60°C), ultra niske temperature (–196°C). Temperatura određuje period tokom kojeg crvena krvna zrnca mogu zadržati svoja svojstva. Na umjereno niskim temperaturama mogu se čuvati nekoliko mjeseci, a na ultra niskim temperaturama - 10 i više godina. Rješenja za konzerviranje. Da bi se produžio rok trajanja krvi izvan tijela, koriste se posebna rješenja - hemokonzervansi. Kao obavezna komponenta, sva rješenja za konzerviranje uključuju posebne kemikalije - stabilizatore. Takvi stabilizatori kao limunova kiselina I natrijum citrat. Oni vežu ione kalcija, što pomaže u suzbijanju jedne od faza procesa hemostaze - stvaranja trombina. Važno svojstvo natrijum citrata je da se 20-30 minuta nakon transfuzije krvi stabilizovane uz njegovu pomoć, skoro potpuno (najmanje 90%) eliminiše iz organizma. Mora se imati na umu da u slučaju akutnog gubitka krvi ili drugih stanja (hipotermije), kao rezultat primjene krvi stabilizirane natrijum citratom, može doći do nedostatka kalcijevih jona (vidi Poglavlje 9), stoga nakon transfuzije krvi od 500 ml, 10 ml 10% rastvora mora se primeniti intravenozno kalcijum hlorid ili glukonat. Ovo je sasvim dovoljno da se nadoknadi nastali nedostatak kalcijuma. Druga vrsta stabilizatora uključuje heparin. Sprečava zgrušavanje krvi direktnim vezivanjem i inaktivacijom trombina. Značajan nedostatak heparina kada se koristi kao stabilizator je to što ne dozvoljava da se krv koja se njime čuva dugo vremena, jer kako se period skladištenja povećava, dolazi do inaktivacije heparina. Kao rezultat toga, u roku od jednog dana nastaju mali krvni ugrušci, a nakon dva dana veliki krvni ugrušci. Heparin kao konzervans, pored samog heparina (50 mg), sadrži glukozu (5 g), izotonični rastvor natrijum hlorida (do 100 ml). Ova mješavina ima pH 7,3. Odnos rastvora i krvi tokom čuvanja treba da bude 1:9. Ova metoda stabilizacije krvi koristi se ako je hitno potrebna. Tako se heparinizirana krv koristi tijekom operacija pomoću aparata za umjetnu cirkulaciju krvi - uređaj se puni njome.

6. Indirektna transfuzija krvi, test kompatibilnosti.

Test za individualnu kompatibilnost krvi davaoca i primaoca. Osnovni pojmovi Ispitivanja kompatibilnosti krvnih grupa AB0 i Rh se provode odvojeno. Ovi testovi se izvode različitim metodama zbog činjenice da antitela AB0 i Rh sistema imaju različita svojstva i ispoljavaju svoje dejstvo u različitim uslovima.Svrha individualnog testa kompatibilnosti je sprečavanje transfuzije nekompatibilnih crvenih krvnih zrnaca. Test kompatibilnosti provodi liječnik koji vrši transfuziju krvi neposredno prije transfuzije. Da biste to učinili, koristite serum pacijenta i krv davaoca iz bočice pripremljene za transfuziju. Testiranje seruma primaoca sa eritrocitima namjeravanog donora je najpouzdaniji način za identifikaciju antitijela koja mogu uzrokovati oštećenje transfuziranih eritrocita i posttransfuzijske reakcije uključujući hemolitičke. Provođenje takvog testa omogućava vam da: potvrdite AB0 kompatibilnost davaoca i primaoca; identificirati gotovo sva antitijela u serumu primaoca usmjerena protiv crvenih krvnih zrnaca donora. Tehnika provođenja individualnog testa kompatibilnosti U svim slučajevima, osim hitnih transfuzija, ispitivanje se provodi u dvije faze (prva - bez upotrebe antiglobulinskog reagensa, druga - s antiglobulinskim reagensom). prva faza: Stavite 2 kapi seruma primaoca u označenu epruvetu Dodajte 1 kap 5% suspenzije triput ispranih crvenih krvnih zrnaca donora u fiziološkom rastvoru (fiksacija antitela je bolja u rastvoru niske jonske snage (LISS), pa je poželjno izvažite crvena krvna zrnca u otopini LISS, koju obično isporučuje proizvođač zajedno s antiglobulinskim reagensom). Odmah centrifugirajte na 2000 o/min 15-20 s. Pregledajte supernatant na prisustvo hemolize laganim protresanjem epruvete, odvojite ćeliju sediment sa dna epruvete i utvrdi prisustvo aglutinata. Prisustvo hemolize i/ili aglutinata u ovoj fazi može značiti: nekompatibilnost prema AB0 sistemu; prisustvo u serumu primaoca potpunih hladnih antitela prema AB0 specifičnosti (anti-S, anti-P1, itd.). druga faza: Ako nije bilo hemolize, a nakon protresanja epruvete crvena krvna zrnca su formirala homogenu suspenziju, inkubirajte epruvetu 30-40 minuta (kada se koristi LISS, vrijeme inkubacije je 10-15 minuta) na +37°C. Centrifugirajte epruvetu (pogledajte korak 3) i ispitajte supernatant na prisustvo hemolize i aglutinata. Prisustvo hemolize i/ili aglutinata (nakon protresanja epruvete) ukazuje na prisustvo kompletnih toplih antitela protiv crvenih krvnih zrnaca davaoca u primaocu.Ako nema aglutinacije i hemolize, isprati crvena krvna zrnca 3-4 puta velikim zapreminu (najmanje 5 ml) fiziološke otopine (nedovoljno ispiranje može dovesti do inaktivacije antiglobulinskog reagensa i lažno negativnog rezultata testa, jer serum, čak i pri razrjeđenju 1:4000, inaktivira jednaku zapreminu antiglobulinskog reagensa) ; potpuno uklonite fiziološki rastvor nakon posljednjeg pranja Dodajte 1-2 kapi antiglobulinskog seruma i dobro promiješajte Centrifugirajte epruvetu (pogledajte korak 3), lagano razbijte sediment i pregledajte epruvetu na prisustvo aglutinata. Ako je hitna transfuzija neophodna, možete se ograničiti samo na faze 1-4 testa kompatibilnosti. U ovom slučaju moguće je provesti i individualni test kompatibilnosti u avionu miješanjem 1 kapi seruma primatelja s malom kapi krvi donora (omjer seruma i krvi trebao bi biti oko 10:1). U ovoj formulaciji, test individualne kompatibilnosti se zapravo svodi na identifikaciju nekompatibilnosti samo prema sistemu AB0 Tumačenje rezultata testa Donor se smatra kompatibilnim ako se ni u jednoj fazi testa za individualnu kompatibilnost ne uoče ni hemoliza ni aglutinacija. Aglutinacija ukazuje na prisustvo aloantitijela u serumu primaoca, čija se specifičnost može utvrditi u posebnoj serološkoj laboratoriji testiranjem na panelu tipiziranih crvenih krvnih zrnaca. Takvi primaoci zahtijevaju poseban odabir donora, a kvalitet antiglobulinskog reagensa garantuje proizvođač. Nemojte koristiti reagens kojem je istekao rok trajanja ili je više puta zamrznut i odmrznut. Korisno je kao kontrola (ako sumnjate u kvalitet reagensa) uraditi antiglobulinski test sa Rh-pozitivnim eritrocitima senzibiliziranim nepotpunim anti-0 antitijelima. Indirektna transfuzija Indirektna transfuzija krvi je glavna metoda transfuzije krvi. Odlikuje se lakoćom implementacije i jednostavnom tehničkom opremljenošću, eliminiše rizik od infekcije donora i negativan psihološki efekat prisustva davaoca tokom transfuzije. Važno je da ova metoda omogućava nabavku velikih količina darivačke krvi, koja se može koristiti i rutinski i u hitnim slučajevima. U slučaju indirektne transfuzije, krv se prikuplja u posebne boce (pakovanja) sa konzervansom koji se prema planu vrši na stanicama (odjelima) za transfuziju krvi. Prikupljena krv, pohranjena pod određenim uvjetima, čini takozvanu banku krvi i koristi se po potrebi. Istovremeno, ova metoda ima i niz negativnih aspekata: tokom skladištenja krv i njene komponente gube neka vrijedna ljekovita svojstva, a prisustvo konzervansa može izazvati neželjene reakcije kod primatelja.

1. Modrice.

POTRES je zatvoreno mehaničko oštećenje mekih tkiva i organa bez vidljivog narušavanja njihovog anatomskog integriteta. Površno locirana meka tkiva – koža i potkožno tkivo – najčešće su podložna modricama. Međutim, moguća je i modrica unutrašnjih organa (modrica mozga, srca, pluća). Takve povrede se klasifikuju kao povrede unutrašnjih organa i predmet su privatne hirurgije. DIJAGNOSTIKA Glavne kliničke manifestacije modrice su bol, otok, hematom i disfunkcija oštećenog organa. Bol javlja se neposredno u trenutku ozljede i može biti vrlo značajna, što je povezano sa oštećenjem velikog broja receptora za bol u zahvaćenom području. Modrice su posebno bolne kada je periosteum oštećen. U roku od nekoliko sati bol jenjava, a njegovo dalje pojavljivanje obično je povezano sa rastom hematoma. Gotovo odmah nakon oštećenja postaje primjetno oteklina, bolna pri palpaciji, bez jasnih granica, postepeno se pretvara u netaknuto tkivo. Otok se povećava tokom nekoliko sati (do kraja prvog dana), što je povezano s nastankom traumatskog edema i upalnih promjena. Vrijeme razvoja hematomi(hemoragija) zavisi od njegove dubine. Kada su koža i potkožno tkivo nagnječeni, hematom postaje vidljiv gotovo odmah (imbibicija, penetracija u kožu - intradermalni hematom). S dubljom lokacijom, hematom se može pojaviti izvana u obliku modrice tek 2-3 dana. Boja modrice se mijenja zbog razgradnje hemoglobina. Svježa modrica je crvena, zatim njena boja postaje ljubičasta, a nakon 3-4 dana postaje plava. Nakon 5-6 dana modrice postaju zelene, a zatim žute, nakon čega postepeno nestaju. Tako se po boji modrice može odrediti trajanje oštećenja i istovremenost njihov pribavljanja, što je posebno važno u pitanjima sudsko-medicinskog pregleda. Disfunkcija U slučaju modrice obično se ne javlja odmah, već kako hematom i otok rastu. U tom slučaju nastaju ograničenja u aktivnim pokretima, što je povezano sa jakim bolom. Pasivni pokreti se mogu sačuvati, iako su i vrlo bolni. Ovo razlikuje modrice od prijeloma i dislokacija, kod kojih se povreda raspona pokreta javlja odmah nakon ozljede i utječe na aktivne i pasivne pokrete. LIJEČENJE Liječenje modrica je prilično jednostavno. Da bi se smanjio razvoj hematoma i traumatskog edema, hladno mirovanje treba lokalno primijeniti što je prije moguće. Da biste to učinili, na mjesto ozljede nanesite oblogu leda, koju je poželjno držati 12-24 sata s pauzama svaka 2 sata po 30-40 minuta. minuta. Da bi se smanjilo kretanje u slučaju modrica, na područje zgloba se stavlja pritisni zavoj (što je prije moguće od trenutka ozljede). Za smanjenje otoka koristi se povišen položaj ekstremiteta. Počevši od 2-3 dana primjenjuju se termalne procedure (grijanje, ultraljubičasto zračenje, UVD terapija) za ubrzavanje resorpcije hematoma i ublažavanje edema. U nekim slučajevima, kada se formiraju veliki hematomi, posebno duboki, oni se punktiraju, nakon čega se stavlja pritisni zavoj. Ubode - u nekim slučajevima se moraju ponoviti. Evakuacija ovakvih hematoma je neophodna zbog rizika od razvoja infekcije (gnojni hematom) ili njene organizacije (organizovani hematom).

Faza 1—priprema materijala.

Materijal za zavoje treba lako sterilizirati i ne gubiti svojstva. Priprema se od gaze i vate, rjeđe od viskoze i lignina. Za rad se od njih pripremaju kuglice, salvete, tamponi, turunde i zavoji. Gazu treba saviti tako da nema slobodne ivice sa koje vlakna tkanine mogu otpasti. Materijal se skladišti za buduću upotrebu, nadopunjuje kako se koristi. Prije sterilizacije stavlja se na sljedeći način: kuglice - u vrećice od gaze od 50-100 komada, salvete su vezane po 10 komada.

Koristi se kao hirurško rublje hirurški bade mantili, posteljina, pelene, ručnici, kape, navlake za cipele. Izrađene su od pamučne tkanine. Haljine, plahte, pelene, peškiri za sterilizaciju presavijeni su u obliku rolni, što olakšava njihovo rasklapanje prilikom upotrebe.

Zavojni materijal se spaljuje nakon upotrebe. Veš za višekratnu upotrebu može se prati, ali odvojeno od ostalih vrsta veša.

Faza 2 – polaganje materijala.

Zavojni materijal i hirurško rublje steriliziraju se u kantama. Koriste se tri vrste bix stajlinga:

Univerzalni stajling

Ciljani stil

Tip styling

Univerzalni – slažu materijal i posteljinu za jednu malu, tipičnu operaciju. Ova vrsta instalacije se koristi pri radu u svlačionicama i u malim operacijama. Polaganje se vrši po sektorima. Biksi se dijele na sektore koji se pune određenom vrstom materijala ili platna: u jedan sektor se stavljaju salvete, u drugi loptice, u treći tamponi itd.

Namenski – materijal i posteljina su postavljeni za određenu operaciju. Na primjer, za apendektomiju, resekciju želuca. U kutiji se nalazi set zavoja i posteljine neophodnih za operaciju.

Vrste - položite određenu vrstu materijala ili platna.

Ova vrsta instalacije se koristi u operacionim salama gde veliki broj razne operacije. Polaganje se vrši na sljedeći način - hirurške haljine u jednu kantu, plahte u drugu, salvete u treću itd.

Bix je postavljen na sljedeći način.

Provjerite ispravnost bixa. Obrišite dno, zidove i poklopac kante, prvo iznutra, a zatim i spolja sa 0,5% amonijaka. Na bočnoj stijenci bixa pomiče se kružna ploča (zatezni pojas) kako bi se otvorile bočne rupe. Biks je obložen listom presavijenim na pola, sa krajevima koji vise prema van. Indikator kontrole sterilnosti nalazi se na dnu biksa. Odjevni materijal i posteljina se slobodno postavljaju u kantu, okomito, u sektorima ili u slojevima. Svaka stavka je postavljena tako da je lako dostupna bez narušavanja rasporeda. Indikator za kontrolu sterilnosti je takođe postavljen u sredini biksa. Rubovi lima koji oblaže bix presavijeni su jedan na drugi. Još jedna kontrolna lampica je postavljena na vrhu, bliže bix bravi. Zatvorite poklopac kutije bravom. Oznaka - pasoš - pričvršćena je na ručku bixa.

Faza 3 – sterilizacija. Oblozi i posteljina se sterilišu autoklavom pod standardnim uslovima.

Faza 4 – skladištenje sterilnog materijala. Bočni otvori steriliziranog bixa moraju biti zatvoreni. Kutije sa sterilnim materijalom čuvaju se odvojeno od kutija sa nesterilnim materijalom. Nakon sterilizacije neotvorene kekse možete čuvati 3 dana, nakon otvaranja 1 dan. Neiskorištene kante se ponovo sterilišu.

PROVJERA KVALITETA STERILIZACIJE

Kontrola steriliteta se može vršiti direktnim i indirektnim (indirektnim) metodama. Direktna metoda je bakteriološka, ​​inokulacija se vrši iz sterilnih predmeta. Proizvodi se na sljedeći način: u operacionoj sali otvara se bix, nekoliko puta se preko posteljine provlače mali komadići gaze navlažene izotoničnom otopinom natrijevog klorida, nakon čega se spuštaju u epruvetu. Ovako uzet materijal šalje se na bakteriološko ispitivanje. Bakteriološka kontrola se vrši jednom u 10 dana. To je najpouzdaniji metod kontrole steriliteta.

Indirektne metode se koriste za direktnu kontrolu sterilnosti materijala. Zahvaljujući njima, možete ocijeniti kvalitetu sterilizacije svakog bixa. Indirektne metode se zasnivaju na postavljanju termičkih indikatora u sterilisane posude, koji pokazuju da li je materijal koji se steriliše prošao određeni temperaturni režim. Za indikatore se koriste supstance sa određenom tačkom topljenja: benzojeva kiselina (120°C), urea (132°C), tiourea (180°C). Stavljaju se u ampule. Indikatori se postavljaju zajedno sa predmetima koji se sterilišu. Topljenje praha i njegova transformacija u čvrstu masu ukazuje da je temperatura sterilizacije bila jednaka ili viša od tačke topljenja kontrolne supstance.

TRETMAN RUKA

Svrha hirurške dezinfekcije ruku je pouzdano ih osloboditi od mikroorganizama na duže vrijeme. Pripremite ruke hirurg i njegovih pomoćnika za operaciju je puna velikih poteškoća, zbog nemogućnosti korištenja visoke temperature i koncentriranih antiseptičkih otopina za to. Posebno je teško dezinficirati ruke od mikroba koji se nakupljaju u izvodnim kanalima lojnih i znojnih žlijezda i u folikulima dlake. S tim u vezi, uz ispiranje bakterija i njihovo uništavanje na površini kože antisepticima, sve metode uključuju tamnjenje kože kao obaveznu komponentu kako bi se suzile pore i spriječio prodor mikroba na njenu površinu tijekom operacije.

Princip hirurške dezinfekcije ruku je prvo mehaničko čišćenje, a zatim dezinfekcija. Šake i podlaktice se prethodno tretiraju 2-5 minuta sapunom i četkom. Posebna pažnja se poklanja tretmanu noktiju i kožnih nabora, interdigitalnih prostora. Nakon toga ruke se ispiru i osuše sterilnim maramicama. U završnoj fazi koriste se dezinficijensi. Koji mora ispunjavati sljedeće uslove:

• brzo ubijaju patogenu mikrofloru.
• pouzdano ubijaju klice u soku od rukavica tako da ruke ostaju dezinficirane tokom cijele operacije.
• imaju kumulativni učinak tako da ruke kirurga ostaju iscrpljene od mikroorganizama čak i u intervalima između postupaka dezinfekcije.
• ne iritiraju kožu.

Metoda Spasokukotsky-Kochergin.

Prvo se ruke peru pod slavinom toplom vodom, ispirući „tramvajsku prljavštinu“ (izraz akademika S. I. Spasokukotskog). Nakon pranja sapunom i toplom vodom, operite ruke 6 minuta (2 puta po 3 minute) u dva umivaonika u 0,5% rastvoru amonijaka, koristeći i krpu za pranje i sterilnu gazu. Prije ulijevanja otopina, umivaonici se spaljuju alkoholom. Nakon takvog pranja ruke se osušite sterilnim ručnikom i obrišite kuglicom gaze ili malom salvetom, obilno navlaženom 96% etil alkoholom. Zatim mnogi hirurzi podmazuju nokte sa nabora kože na leđima prstiju 5% alkoholnom otopinom joda (jodonat). Iako sami autori metode to nisu preporučili. Međutim, iskustvo pokazuje da takav dodatak ne nanosi štetu, ali stvara više povjerenja u štavljenje kože.

Alfeldova metoda je jedna od najstarijih metoda predloženih za tretman ruku. Ruke se peru sapunom i četkama ispod slavine 10 minuta. Počinju uobičajenim pranjem ruku sapunom i toplom vodom, nakon čega pincetom uzimaju sterilnu četku i, nakon što je sapunaju, počinju sistematski tretirati ruke i podlaktice. Dosljedno, počevši od 1 prsta, obrišite prste četkom, ne propuštajući niti jedan milimetar površine kože, pažljivo tretirajte prostore za nokte, nabore noktiju i nabore kože šake i prijeđite na podlakticu. Obradite do pregiba lakta. Ruke se drže tako da voda teče iz šaka u podlaktice. Na svakoj ruci odvojite 2 minute, nakon čega se sapun ispere toplom tekućom vodom i, uzimajući drugu sterilnu četku koju obezbjeđuje medicinska sestra ili bolničar, ponovite postupak za uzastopni tretman; ponovite postupak za sekvencijalni tretman prstiju, šake i donju trećinu podlaktice, trošeći još 5 minuta. Isperite sapun toplom tekućom vodom i osušite ruke sterilnim peškirom ili salvetom. Suhe ruke obrišu se ubrusom obilno navlaženim 96% alkohola u trajanju od 3 minute, a nokti se podmažu alkoholnom otopinom joda.

Tretman ruku otopinom vodikovog peroksida i mravlje kiseline. Recept “S-4” priprema se na dan operacije od potrebne količine 30-33% vodikovog peroksida (perhidrola) i 85-100% mravlje kiseline, koji se pomiješaju u sterilnoj posudi u omjeru 1:2,4 i čuvati ne više od jednog dana u zatvorenoj posudi sa čepom na hladnom mestu. Za tretiranje ruku koristite 2,4% rastvor formulacije "C-4".

Prije tretiranja ruku otopinom po receptu „S-4“, operite ih vodom i sapunom (bez četke) 1 minut, obrišite sterilnom krpom, a zatim tretirajte ruke receptom „C-4“ za 1 minuta u emajliranoj posudi. Obrišite sterilnom krpom i stavite sterilne rukavice.

Tretman ruku hlorheksidin diglukonatom. Za liječenje ruku koristite 0,5% alkoholnu otopinu lijeka (lijek je razrijeđen u 70% alkohola u omjeru 1:40). Nakon prethodnog pranja ruku sapunom i naknadnog brisanja sterilnom krpom od gaze, tretiraju se sa dva pamučna štapića natopljena 0,5% alkoholnom otopinom klorheksidina 2-3 minute.

Tretman ruku degminom i degmicidom. Prije tretiranja degminom ili degmicidom, operite ruke toplom vodom i sapunom 2-3 minute, temeljito ih isperite i obrišite sa dva tampona, obilno navlažena 1% otopinom lijeka, svaki po 3 minute. Nakon toga obrišite ruke sterilnim maramicama i stavite sterilne rukavice.

Tretman ruku cerigelom. Lijek sadrži cetilpiridinijum hlorid, kationski deterdžent sa visokom površinskom aktivnošću. Bezbojna, opalescentna tekućina Zerigela nanesena na kožu stvara tanak aseptični polimerni film nakon što alkohol isparava (efekat polivinil butira).

Nakon prethodnog tretmana ruku sapunom, nanijeti 3-4 g cerigela na suhu kožu i dobro utrljati 8-10 s tako da preparat pokrije palmarnu i dorzalnu površinu, interdigitalne prostore i distalnu trećinu podlaktice. Sušite ruke na vazduhu ili pod ventilatorom 2-3 minuta, pazeći da vam se prsti ne dodiruju i da su blago savijeni. Metoda tretmana ruku je efikasna u hitnim situacijama, pri radu u svlačionici, pri primarnom hirurškom tretmanu rane itd., polimerni film se nakon toga ispere s ruku operacije ili manipulacija sa 95% etil alkoholom.

Tretman ruku jodoforom. Veoma efikasan i brz način je tretiranje jodoforom (1% jodopiron-polivinilpirolidon, povidon-jod-betadin) i heksahlorofenom u rastvoru sapuna (šampon) u trajanju od 3-5 minuta. Istovremeno se postiže čišćenje i dezinfekcija ruku, nakon čega se suše ubrusom i stavljaju sterilne rukavice.

Ultrazvučni tretman ruku. Dizajnirani su posebni uređaji sa ultrazvučnim kupkama u kojima se pranje i dezinfekcija ruku odvija u roku od 1 minute. Ruke se uranjaju u antiseptički rastvor (0,5% vodeni rastvor gibitana), kroz koji se propuštaju ultrazvučni talasi koji obezbeđuju dezinfekciju.

Tretman ruku rokkalom. Rokkal je surfaktant s učinkom čišćenja i dezinfekcije. Dostupan u bocama različitog kapaciteta u 10% i 1% rastvoru, providna žućkasta tečnost.

Ruke, prethodno oprane sapunom, dobro se ispiru i potapaju u lavor sa rastvorom rokkala 1:1000 na 2 minuta. Za razrjeđivanje rokkala koristite samo destilovanu vodu.

Tretman ruku jodopironom. Ruke se peru tekućom vodom i sapunom 1 minut i suše sterilnom salvetom, zatim se ruke potapaju u lavor sa 1% rastvorom jodopirona i peru 4 minuta sterilnom gazom.

Tretman ruku hibiskrabom. Ruke se navlaže vodom do lakata i nanese se 5 ml hibiscrub-a, opere 1 minut. Zatim temeljito isperite ruke i ponovo nanesite 5 ml Hibiscrub-a i perite ruke 2 minute. Dezinfekciono sredstvo se ispere sterilnom fiziološkom otopinom.

Tretman ruku sa SEPTOTSID R PLUS.

Operite ruke sapunom i vodom, po mogućnosti tečnom (pH-neutralnom), bez upotrebe tvrdih četki. Osušite sterilnom salvetom ili peškirom za jednokratnu upotrebu. Obradite nokte i periungualne nabore jednokratnim sterilnim drvenim štapićima navlaženim antiseptikom. Trajanje: najmanje 1 minut. Nanesite antiseptik na šake i podlaktice u porcijama od 2,5-3 ml. Potrošnja po tretmanu – 10 ml.

Utrljajte antiseptik u kožu ruku, sprečavajući da se isuši. Vrijeme obrade 5 min.

OBLAĆENJE OPERACIJSKE ODJEĆE

Medicinski osoblje (hirurg, asistenti, operacione sestre) posle hirurški Prilikom dezinfekcije ruku nosite sterilne (bez mikroorganizama) haljine. Labavi tekstilni materijal koji je više puta korišten nije prikladan za operacijske haljine, jer postaje propustljiv za znoj i bakterije sadržane na koži članova operativnog tima (pojavljuju se na ogrtaču nakon 30 minuta rada). Najbolje je koristiti donje rublje i ogrtače od debelog impregniranog pamučnog materijala.Masnete i kravate treba da budu elastične i da ne stišću zglobove i ruke. Maska treba da vam dobro prekriva usta i nos.

Nakon hirurške dezinfekcije ruku, na koži nema mikroorganizama. Međutim, ubrzo se iz kanala znojnih žlijezda, folikula dlake i mikropukotina na površini kože ponovno pojavljuju mikroorganizmi, pa je za aseptično izvođenje operacije potrebno izolirati ruke sterilnim gumenim rukavicama.

Kada stavljate rukavice, ne dirajte njihovu vanjsku površinu golom rukom.

Prilikom rada u rukavicama, vaše ruke postaju vlažne, tu se nakuplja takozvani sok od rukavica koji sadrži koncentrat virulentne mikroflore, stoga je prije i za vrijeme operacije potrebno paziti na integritet rukavica. Oštećenu rukavicu treba odmah promijeniti. Ako je operacija duga, tokom rada svakih 45-60 minuta rukavice se tretiraju sa 2,4% pervomura i brišu sa 96% etil alkoholom. Rukavice se također moraju tretirati nakon svake faze operacije, koja uključuje otvaranje šupljeg organa.

TRETMAN HIRURŠKOG POLJA

Priprema hirurškog polja počinje u preoperativnom periodu (higijenska kupka, čišćenje kontaminanata eterom ili benzinom, tretiranje kože zelenim ili kalijevim sapunom, brijanje dlaka u predelu hirurškog polja). Uoči operacije pacijent se kupa i mijenja donji veš. Ujutro, na dan operacije, dlake u području hirurškog polja pažljivo se obrijaju. Za brijanje koristite oštre brijače koji ne izazivaju iritaciju kože. Nakon brijanja kožu obrišite alkoholom. Dlake u području nadolazeće hirurške intervencije mogu se ukloniti i posebnom kremom za depilaciju. To pruža pogodnost prilikom obrade kože u području pregiba i smanjuje rizik od mikrooštećenja, što se uočava pri obradi žiletom.

Klasična metoda liječenja kirurškog polja metodom Grossikh-Filonchikov - podmazivanje 5% alkoholnom otopinom joda - trenutno se ne koristi. Za tretiranje kože hirurškog polja trenutno se najčešće koriste jodonat, jodopiron i 0,5% alkoholna otopina klorheksidin biglkionata.

Osnovna pravila za obradu hirurškog polja:

1. Obradite naširoko.
2. Obrada se vrši od centra prema periferiji.
3. Kontaminirana područja tretirajte na kraju.
4. Obrada se vrši više puta.

Hirurško polje se podmazuje prvi put prije stavljanja sterilnog platna, drugi put nakon stavljanja platna, treći put prije šivanja kože i četvrti put nakon postavljanja šavova na kožu. Kao što su pokazala brojna istraživanja, jod tamni kožu i, prodirući u dubinu nabora i pora, dezinficira je.

Za tretiranje hirurškog polja koriste se i druge antiseptičke supstance (1% rastvor degmicida, 1% rastvor Rokcal ili Katamine A-B, 2,4% rastvor Pervomure). Za dezinfekciju sluznice podmazuju se 1% otopinom briljantne zelene boje, 3% otopinom vodikovog peroksida, 1% otopinom jodonata ili jodopirona, kao i 0,5% alkoholnom otopinom hibitana.

Za izolaciju kože hirurškog polja može se koristiti poseban sterilni film (protektor).

PREVENCIJA INFEKCIJE IMPLANTATA

Prevencija zaraze plantaža postiže se osiguranjem najstrože sterilnosti svih predmeta koji se unose u tijelo pacijenta.

Značajka puta implantacije je da u 100% slučajeva infekcija dovodi do razvoja gnojno-upalnog procesa. Strano tijelo zaostalo u tkivima podupire upalni proces dugo vremena. U nekim slučajevima može doći do inkapsulacije inficiranih implantata, pri čemu mikroorganizmi ne umiru, a mogu postati izvor izbijanja gnojnog procesa u kasnom postoperativnom periodu. Formira se izvor uspavane infekcije.

Izvori implantacijske infekcije.

• šavni materijal
• endoproteze
• metalne konstrukcije (klamalice, vijci, igle za pletenje, vijci, ploče za osteosintezu),
• specijalni uređaji (vasa filteri, spirale, stentovi, itd.)
• presađenih organa i tkiva.

STERILIZACIJA ŠIVNOG MATERIJALA

Hirurški šavni materijal mora biti sterilan, otporan na kidanje i dobro podnošljiv od strane tkiva, a nakon obavljanja funkcije fiksiranja mora se po mogućnosti apsorbirati. Trenutno postoji mnogo vrsta materijala za šavove. Obično se dijeli na materijale prirodnog i umjetnog porijekla. Materijal za šavove prirodnog porijekla: svila, pamučni konac i ketgut. Umjetni materijal za šavove izrađuje se od sintetičkih kemikalija: najlon, lavsan, fluorlon, poliester, dakron itd.

Sterilizacija šavnog materijala se postiže na različite načine: termičkim, hemijskim, gama zračenjem.

Sterilizacija svile.

Kocherova metoda. Momci svile se peru u toploj vodi i sapunu, a zatim suše. Svila namotana na kolut se stavlja u vazduh 12-24 sata da se odmasti. Nakon što se svila ukloni iz etra sterilnim instrumentom, uroni se u 70% etanol na isti period. Nakon ekstrakcije iz alkohola, svila se kuva 10-20 minuta u rastvoru sublimata 1:1000. Sterilnu svilu čuvajte u hermetički zatvorenim teglama sa 95% etil alkohola. Nakon dva dana vrši se bakteriološka kontrola. Ako je kultura sterilna, može se koristiti svila. U zatvorenim teglama alkohol se menja svakih 7 dana.

Sterilizacija catguta. Ketgut je materijal organskog porijekla. Ketgut se pravi od submukoznog sloja tankog crijeva goveda ili svinja. Kao heterogen protein, može izazvati jake reakcije tkiva. Prednost catguta je u tome što se nakon 6-12 dana resorbuje u organizmu. Zbog hromiranja (hromirani katgut), resorpcija catguta u organizmu se može produžiti na 15-40 dana. Štavljeni catgut nije toksičan. Kromirani katgut se proizvodi u ampulama ili pakovanju od aluminijumske folije sa rastvorom konzervansa (rektifikovani alkohol 96% - 89 ml, glicerin 6 ml, avionski benzin 1 ml, destilovana voda 4 ml), steriliše se gama zračenjem

Suha metoda sterilizacije ketgutnih niti u jodnoj pari (prema Sitkovskom). Ketgut se uranja u vazduh 12-24 sata. Standardna nit catguta seče se na tri dijela i temeljito se briše krpom od gaze namočenom u 1:1000 otopinu živinog diklorida. Konci tretirani sublimatom umočeni su u 2% vodeni rastvor kalijum jodida. Ovo čini ketgut osjetljivim na jodnu paru. Ekspozicija u ovom rastvoru određena je debljinom niti (svi nulti brojevi - za 30 sekundi, a ostatak - za broj minuta koji odgovara broju niti). Ketgut je namotan u kolutiće, nanizan na duge niti i okačen u dva reda u sterilnu staklenu teglu sa brušenim poklopcem. Udaljenost catguta od dna tegle je 60-70 mm. Kristalni jod se prvo sipa na dno tegle, uzimajući u obzir veličinu tegle i održavajući potrebnu koncentraciju jodnih para. Obračun od 20 paketa suhog catguta: u tegli kapaciteta 3 litre - 40 g joda, u tegli kapaciteta 5 litara - 60 g joda. Čep tegle je napunjen parafinom (na vrhu sterilne gaze). Tegla se svakodnevno protrese kako bi se osigurao slobodan pristup jodnim parama u sve prostore između katguta. Tanki katgut (br. 0-1) je gotov nakon 3 dana, br. 2,3, 4 – nakon 4 dana, br. 5 i 6 – nakon 5 dana. Nakon isteka perioda sterilizacije, ketgut se prenosi u suvu sterilnu teglu, a zatim se kultura uzima na sterilnost.

Way sterilizacija ketgutne niti sa alkoholnom Lugolovom otopinom (prema Gubarevu). Suhe niti katguta ne duže od 1 m smotaju se u kolutove i pune etrom 12-24 sata. Eter je isceđen. Catgut se sipa u alkoholnu Lugolovu otopinu 8-10 dana (96% alkohola - 1000 g, kalijum jodida - 10 g, čistog joda - 10 g). Catgut se ponovo puni svježim Lugol otopinom još 8-10 dana. Dana 16-20 od početka sterilizacije ketgut se podvrgava bakteriološkom ispitivanju i, ako su rezultati povoljni, dozvoljava se upotreba. Ketgut čuvajte u Lugolovom rastvoru, menjajući ga svakih 7-10 dana.

Metoda sterilizacije ketgutnih niti u vodenom Lugolovom rastvoru (prema Heinaz-Claudijusu). Suhe niti katguta ne duže od 1 m smotaju se u kolutove i pune etrom 12-24 sata. Eter se ocijedi, a ketgut se sipa u vodeni Lugolov rastvor 8-10 dana (destilirana voda - 1000 g, kalijum jodid - 20 g, čisti jod - 10 g). Nakon 8-10 dana, vodeni Lugol rastvor se zamjenjuje svježim i katgut se ponovo ostavlja u njemu 8-10 dana. Nakon 16-20 dana od početka sterilizacije, otopina se ocijedi i ketgut se puni 96% etil alkoholom 4-6 dana, nakon čega se uzima kultura na sterilnost. Ketgut čuvajte u 96% alkoholu, koji se mijenja svakih 7-10 dana.

Svaka porcija catguta je podvrgnuta obaveznoj bakteriološkoj kontroli. Inokulacija se uzima iz svake tegle različitih niti katguta u 6 epruveta: 3 za bujon i 3 za Tarozzi medijum. Rezultati laboratorijskih testova se pažljivo čuvaju. Etiketa koja označava broj catguta, datum početka i završetka sterilizacije, datum i broj bakteriološke analize zalijepljena je na staklenku catguta koja je odobrena za upotrebu.

Sterilizacija najlona. Najlon se može sterilizirati kuhanjem 20 minuta.

Sterilizacija lavsana. Mylar konci se mogu sterilisati autoklavom, ključanjem i rastvorom diocida (1:1000-1:5000).

Većina vrsta modernog materijala za šavove se steriliše u fabrici gama zračenjem.

Sterilnost šavnog materijala se kontroliše bakteriološkom metodom.

STERILIZACIJA KONSTRUKCIJA, PROTEZA, TRANSPLANTACIJA

Način sterilizacije različitih konstrukcija i proteza ovisi o vrsti materijala od kojih su izrađene.

Metalne konstrukcije se steriliziraju u autoklavu, pećnici na suho ili kuhanjem.

Platnene proteze se sterilišu ključanjem ili u gasnom sterilizatoru.

Proteze složene izvedbe steriliziraju se kemijskim metodama u plinskom sterilizatoru ili hemijskim antisepticima.

Trenutno se većina proteza proizvodi tvornički sterilizirane gama zračenjem.

Biološke transplantacije je nemoguće sterilizirati, stoga je garancija prevencije infekcije poštivanje pravila asepse prilikom prikupljanja organa ili tkiva.

Vrste zavoja i hirurškog platna

Materijali za previjanje uključuju kuglice od gaze, tampone, salvete, zavoje, turunde, štapiće od pamučne gaze. Materijal za zavoj se obično priprema neposredno prije sterilizacije, koristeći posebne tehnike kako bi se spriječilo trošenje pojedinačnih niti od gaze. Radi lakšeg brojanja, kuglice se stavljaju u 50-100 komada po maramice od gaze, salvete i tamponi su vezani po 10 komada. Zavojni materijal se ne koristi ponovo, nakon upotrebe se uništava.

Operativna posteljina uključuje hirurške haljine, posteljinu, peškire i posteljinu. Materijal za njihovu proizvodnju su pamučne tkanine. Hirurško rublje za višekratnu upotrebu pere se nakon upotrebe, a odvojeno od ostalih vrsta posteljine.

Sterilizacija

Zavojni materijal i posteljina se sterilišu autoklavom pod standardnim uslovima. Prije sterilizacije obloge i posteljina se stavljaju u posude. Postoje tri glavne vrste bix stila: univerzalni, ciljani i specifični.

Univerzalni stajling. Obično se koristi za rad u svlačionici i za manje operacije. Biksi su konvencionalno podijeljeni u sektore, svaki od njih je napunjen određenom vrstom materijala za previjanje ili posteljinom: salvete se stavljaju u jedan sektor, kuglice u drugi, tamponi u treći itd.

Ciljani stil. Dizajniran za izvođenje tipičnih manipulacija, procedura i manjih operacija. Na primjer, postavljanje traheostomije, kateterizacija subklavijske vene, epiduralna anestezija itd. Svi instrumenti, zavoji i posteljina potrebni za zahvat stavljaju se u bix.

Vrsta stajlinga. Obično se koristi u operacionim salama gde su potrebne velike količine sterilnog materijala. U ovom slučaju, na primjer, hirurške haljine se stavljaju u jednu kantu, plahte u drugu, salvete u treću itd.

Koriste se male količine zavojnog materijala u pakovanjima koja su podvrgnuta radijacionoj sterilizaciji. Postoje i posebni kompleti hirurškog platna za jednokratnu upotrebu (haljine i čaršave) napravljene od sintetičkih tkanina koje su također bile podvrgnute radijacijskoj sterilizaciji.

Tretman ruku hirurga

Čišćenje (pranje) ruku hirurga je veoma važna procedura. Postoje određena pravila za pranje ruku.

Klasične metode tretmana ruku Spasokukotsky-Kochergina, Ahlfelda, Furbringera i drugih samo su povijesni interes, a trenutno se ne koriste.

Savremene metode lečenja ruku hirurga

Liječenje ruku kirurga sastoji se od dvije faze: pranja ruku i izlaganja antiseptičkim sredstvima.

Ručno pranje

Korištenje modernih metoda uključuje početno pranje ruku sapunom ili tekućim deterdžentima (u nedostatku kontaminacije ruku u domaćinstvu).

Utjecaj antiseptika

Hemijski antiseptici koji se koriste za liječenje ruku moraju imati sljedeća svojstva:

Imaju snažan antiseptički učinak;

Budite bezopasni za kožu ruku kirurga;

Budite pristupačni i jeftini (pošto se koriste u velikim količinama).

Moderne metode tretmana ruku ne zahtijevaju posebno sunčanje (koriste antiseptike za stvaranje filma ili antiseptike s elementom za tamnjenje).

Ruke se pažljivo tretiraju od vrhova prstiju do gornje trećine podlaktice. Pri tome se poštuje određeni redosled koji se zasniva na principu da se tretiranim delovima ruku ne dodiruje manje čista koža i predmeti.

Glavna moderna sredstva za tretman ruku su Pervomur, hlorheksidin, degmin (degmicid), Cerigel, AHD, Eurosept itd.

Prvi tretman ruku

Pervomur (koji su 1967. predložili F. Yu. Rachinsky i V. T. Ovsipyan) je mješavina mravlje kiseline, vodikovog peroksida i vode. Kada se komponente spoje, formira se permična kiselina - snažan antiseptik koji uzrokuje stvaranje tankog filma na površini kože, zatvarajući pore i eliminirajući potrebu za sunčanjem. Koristite pripremljenu 2,4% otopinu ex temporo.

Metodologija: pranje ruku se vrši u umivaonicima u trajanju od 1 minute, nakon čega se ruke osuše sterilnom salvetom. Prednost metode je njena brzina. Nedostatak: mogući razvoj dermatitisa na rukama kirurga.

Tretman ruku hlorheksidinom

Koristi se 0,5% alkoholna otopina klorheksidina, što eliminira potrebu za dodatnim izlaganjem alkoholu u svrhu sunčanja, kao i sušenjem zbog brzog isparavanja otopine alkohola.

Metodologija: ruke se tretiraju dva puta tamponom navlaženim antiseptikom 2-3 minute. Relativni nedostatak metode je njeno trajanje.

Tretman degminom i degmicidom

Ovi antiseptici spadaju u grupu surfaktanata (deterdženta).

Metodologija: tretman se izvodi u umivaonicima 5-7 minuta, nakon čega se ruke osuše sterilnom salvetom. Nedostatak metode je njeno trajanje.

Tretman AHD, AHD-specijal, Eurosept

Aktivni principi ovih kombinovanih antiseptika su etanol, ester poliola masne kiseline i klorheksidin.

Metodologija: lijekovi se nalaze u posebnim bocama, iz kojih se, pritiskom na posebnu polugu, određena doza lijeka izlije na ruke kirurga, a on utrlja otopinu u kožu ruku 2-3 minute. Postupak se ponavlja dva puta. Nema potrebe za dodatnim sunčanjem ili sušenjem. Metoda je praktički bez nedostataka, trenutno se smatra najprogresivnijim i najraširenijim.

Uprkos postojećim metodama tretmana ruku, trenutno Hirurzi moraju sve operacije i manipulacije u kontaktu sa krvlju pacijenta obavljati samo u sterilnim rukavicama!

Ako su neophodne manje manipulacije ili u kritičnim situacijama, sterilne rukavice se mogu nositi bez prethodne obrade ruku. Prilikom obavljanja rutinskih hirurških zahvata to ne treba činiti, jer svako oštećenje rukavice može dovesti do infekcije hirurške rane.

Tretman hirurškog polja

Prvo se obavlja sanitarno-higijenski tretman (pranje pod kadom ili tušem, presvlačenje kreveta i donjeg rublja). Na dan operacije, dlake u predjelu hirurškog polja se obrijaju (brijanje na suho). Na operacionom stolu se hirurško polje tretira hemijskim antisepticima (organski preparati koji sadrže jod, hlorheksidin, pervomur, AHD, sterilne lepljive folije). U ovom slučaju se poštuju sljedeća pravila:

Široka obrada;

Slijed je “od centra ka periferiji”;

Kontaminirana područja se tretiraju posljednje;

Ponovljeni tretman tokom operacije (pravilo Filonchikov-Grossikh): tretman kože se izvodi prije razgraničenja

sterilno donje rublje, neposredno prije reza, kao i prije i nakon postavljanja kožnih šavova.

Pravila pripreme za operaciju

Osim poznavanja osnova čišćenja ruku kirurga, hirurškog polja, sterilizacijskih instrumenata i sl., potrebno je pratiti određeni redoslijed radnji prije započinjanja bilo kakvog kirurškog zahvata. Obično se priprema za operaciju provodi na sljedeći način.

Operativna sestra se prva priprema za operaciju. Presvlači se u specijalno operativno odijelo, navlači navlake za cipele, kapu i masku. Zatim u preoperativnoj sali čisti ruke po jednoj od navedenih metoda, nakon čega ulazi u operacionu salu, otvara vrećicu sa sterilnom posteljinom (posebnom nožnom pedalom otvara poklopac kutije) i oblači sterilnu haljinu, istovremeno stavljajući obje ruke u rukave, bez dodirivanja stranih predmeta ni ogrtačem ni rukama, što može dovesti do narušavanja steriliteta. Nakon toga sestra veže konce na rukavima ogrtača, a medicinska sestra ogrtač na poleđini; ruke su mu nesterilne, tako da može dodirnuti samo unutrašnju površinu ogrtača i onaj njegov dio koji završi na sestrina leđa i kasnije se smatra nesterilnom.

Općenito, tokom čitave operacije, haljina medicinske sestre i hirurga se smatra sterilnom od prednje strane do struka. Sterilne ruke ne treba podizati iznad ramena i spuštati ispod struka, što je povezano s mogućnošću kršenja sterilnosti nepažljivim pokretima.

Nakon oblačenja sterilne odeće, medicinska sestra navlači sterilne rukavice i postavlja sterilni sto za obavljanje intervencije: mali (ili veliki) operacioni sto prekriva se sa četiri sloja sterilnog platna, zatim se stavljaju sterilni instrumenti i zavoji neophodni za operaciju. položenih na njemu određenim redoslijedom.

Hirurg i asistenti se presvlače i na isti način tretiraju svoje ruke. Nakon toga, jedna od njih dobije iz sestrinih ruku dugačak instrument (obično pincetu) sa salvetom navlaženom antiseptikom i tretira hirurško polje, mijenjajući ubrus antiseptikom nekoliko puta. Medicinska sestra tada oblači hirurga i asistenta u sterilne haljine, prevlačeći ih preko ispruženih sterilnih ruku i vežući kravate na zglobovima. Bolničar veže haljine pozadi.

Nakon oblačenja sterilnih ogrtača, hirurzi ograničavaju operacijsko polje sterilnom hirurškom posteljinom (posteljina, posteljina ili peškiri), pričvršćujući ga posebnim platnenim kopčama ili kopčama. Sestra hirurzima stavlja sterilne rukavice na ruke. Ponovo se tretira koža i radi se rez, odnosno počinje hirurški zahvat.

Metode kontrole sterilnosti

Sve radnje vezane za obradu i sterilizaciju instrumenata, posteljine i ostalog podležu obaveznoj kontroli. Oni kontrolišu i efikasnost sterilizacije i kvalitet pripreme pred sterilizaciju.

Kontrola steriliteta

Metode kontrole steriliteta dijele se na direktne i indirektne.

Direktna metoda

Direktna metoda kontrole steriliteta je bakteriološki pregled: na sterilnim instrumentima (koža kirurgovih ruku ili hirurškog polja, hirurško rublje i sl.) vrši se poseban sterilni štapić, nakon čega se stavlja u sterilnu epruvetu i šalje se u bakteriološki laboratorij, gdje se vrši inokulacija na različite hranljive podloge i na taj način se utvrđuje bakterijska kontaminacija.

Bakteriološka metoda kontrole steriliteta je najpreciznija. Negativna točka je trajanje studije: rezultat kulture je spreman tek nakon 3-5 dana, a instrumenti se moraju koristiti odmah nakon sterilizacije. Dakle, bakteriološko istraživanje se provodi planirano i na osnovu njegovih rezultata se ocjenjuju metodološke greške u radu. medicinsko osoblje ili kvarovi u opremi koja se koristi. Prema postojećim standardima, koji se neznatno razlikuju za različite vrste instrumenata, bakteriološki pregled se mora obavljati svakih 7-10 dana. Osim toga, 2 puta godišnje slične studije provode se na svim odjelima bolnice od strane okružnih i gradskih sanitarnih i epidemioloških službi.

Indirektne metode

Metode indirektne kontrole koriste se uglavnom kada termičke metode sterilizacija. Uz njihovu pomoć možete odrediti temperaturu na kojoj je tretman obavljen, bez davanja tačnog odgovora na pitanje o prisutnosti ili odsutnosti mikroflore. Prednost indirektnih metoda je brzina dobivanja rezultata i mogućnost korištenja pri svakoj sterilizaciji.

Prilikom autoklaviranja, u keks se obično stavlja ampula (epruveta) sa praškastom supstancom koja ima tačku topljenja u rasponu od 110-120 °C. Nakon sterilizacije, prilikom otvaranja biksa, medicinska sestra prije svega obraća pažnju na ovu ampulu: ako se supstanca otopila, onda se materijal (instrumenti) može smatrati sterilnim, ali ako nije, zagrijavanje je bilo nedovoljno i takav materijal se ne može koristiti , pošto je nesterilna. Za ovu metodu najčešće se koriste benzojeva kiselina (tačka topljenja 120 °C), resorcinol (tačka topljenja 119 °C) i antipirin (tačka topljenja 110 °C). Umjesto ampule, u Bix možete postaviti indikator temperature ili maksimalni termometar koji se može koristiti i za određivanje temperature tokom obrade.

Slične indirektne metode koriste se za sterilizaciju u pećnici na suhoj temperaturi. Međutim, ovdje se koriste tvari s višom tačkom topljenja (askorbinska kiselina - 190 °C, jantarna kiselina - 190 °C, tiourea - 180 °C), i drugi temperaturni indikatori ili termometri.

Kontrola kvaliteta predsterilizacionog tretmana

Kako bi se kontrolirao kvalitet tretmana prije sterilizacije, hemikalije se koriste za otkrivanje tragova neoprane krvi ili ostataka deterdženta na instrumentima. Reagensi obično mijenjaju boju u prisustvu odgovarajućih supstanci (krv, alkalni deterdženti). Metode se koriste nakon tretmana prije sterilizacije.

Za otkrivanje takozvane okultne krvi najčešće se koristi benzidin test.

Za otkrivanje tragova deterdženata koriste se acido-bazni indikatori, a najčešći je fenolftaleinski test.

Prevencija implantacijske infekcije

Implantacija je unošenje umjetnih, stranih materijala i uređaja u tijelo pacijenta za određenu terapeutsku svrhu.

Značajke prevencije implantacijske infekcije

Prevencija implantacijske infekcije - osiguranje najstrože sterilnosti svih predmeta koji se unose u tijelo pacijenta. Za razliku od kontaktnog puta infekcije, kod implantacije se bilježi gotovo 100% zaraznost. Ostajući u tijelu pacijenta, gdje postoje povoljni uvjeti (temperatura, vlažnost, hranjive tvari), mikroorganizmi ne umiru dugo vremena i često se počinju razmnožavati, uzrokujući gnojenje. U tom slučaju strano tijelo uneseno u tijelo naknadno održava upalni proces dugo vremena. U nekim slučajevima dolazi do inkapsuliranja kolonija mikroorganizama koji ne umiru i mogu postati izvor izbijanja gnojnog procesa za mjesecima ili godinama. Dakle, svako implantirano tijelo je mogući izvor takozvane uspavane infekcije.

Izvori implantacijske infekcije

Šta hirurzi "ostavljaju" u tijelu pacijenta? Prije svega, materijal za šavove. Gotovo nijedna intervencija ne može bez ovoga. U prosjeku, tokom abdominalne operacije, hirurg postavlja oko 50-100 šavova.

Vjerovatni izvor implantacijske infekcije su drenaže - specijalne cijevi namijenjene za odljev tekućine, rjeđe zraka (pleuralna drenaža) ili namijenjene za davanje lijekova (kateteri). S obzirom na ovaj put širenja infekcije, postoji čak i koncept „kateter sepse“ (sepsa je teška opća zarazna bolest, vidi Poglavlje 12).

Osim šavnog materijala i drenaže, tijelo pacijenta sadrži protetske srčane zaliske, krvne žile, zglobove itd., razne metalne konstrukcije (klamanje, spajalice od šavnih uređaja, šrafove, igle za pletenje, šrafove i ploče za osteosintezu), specijalne uređaje ( kava-filteri, spirale, stentovi, itd.), sintetička mreža, homofascija, a ponekad i transplantirani organi.

Naravno, svi implantati moraju biti sterilni. Način sterilizacije zavisi od materijala od kojeg su napravljeni. Mnoge proteze imaju složen dizajn i stroga posebna pravila sterilizacije. Ako se gumeni drenaži i kateteri mogu sterilizirati u autoklavu ili prokuhati, onda neke plastične proizvode, kao i različite materijale, treba sterilizirati kemijskim metodama (u antiseptičkim otopinama ili plinskom sterilizatoru).

Istovremeno, fabrička sterilizacija γ-zracima danas je prepoznata kao glavna, praktički najpouzdanija i najprikladnija metoda.

Glavni vjerojatni izvor implantacijske infekcije ostaje šavni materijal koji kirurzi stalno koriste.

Sterilizacija šavnog materijala

Vrste materijala za šavove

Materijal šava je heterogen, što je povezano s njegovim različitim funkcijama. U jednom slučaju je najvažnija čvrstoća niti, u drugom - njihova resorpcija tokom vremena, u trećem - inertnost u odnosu na okolna tkiva itd. Tokom operacije, hirurg bira najpogodniji tip konca za svaki konkretan šav. Postoji dovoljna raznolikost vrsta materijala za šavove.

Materijal za šavove prirodnog i vještačkog porijekla

Materijali za šavove prirodnog porijekla uključuju svilu, pamučni konac i catgut. Porijeklo prve dvije vrste je dobro poznato. Ketgut se pravi od submukoznog sloja crijeva goveda. Materijal za šavove umjetnog porijekla trenutno predstavlja ogroman broj niti stvorenih od sintetičkih kemikalija: najlon, lavsan, fluorolon, poliester, dacron itd.

Materijal za šavove koji se može apsorbirati i koji se ne može apsorbirati

Upijajući šavovi se koriste za šivanje brzo zarastajućeg tkiva u slučajevima kada nije potrebna visoka mehanička čvrstoća. Ovaj materijal se koristi za šivanje mišića, vlakana i sluzokože gastrointestinalnog trakta, žučnih i mokraćnih puteva. U potonjem slučaju primjenom upijajućih šavova izbjegava se stvaranje kamenaca zbog taloženja soli na ligaturama. Klasičan primjer upijajućeg materijala za šavove je catgut. Catgut konci se potpuno apsorbuju u tijelu nakon 2-3 sedmice. Produženje vremena resorpcije, kao i povećanje čvrstoće catguta, postiže se impregnacijom niti metalima (hromirani katgut, rjeđe - srebrni catgut), u ovom slučaju vrijeme resorpcije se povećava na 1-2 mjeseca .

Sintetički upijajući materijali uključuju dekson, vikril, oksilon. Njihovo vrijeme resorpcije je približno isto kao i kod hromiranog catguta, ali imaju povećanu čvrstoću, što omogućava korištenje tanjih niti.

Sve ostale niti (svila, najlon, lavsan, poliester, fluor itd.) nazivaju se neupijajućim - ostaju u tijelu pacijenta doživotno (osim kožnih šavova koji se mogu skinuti).

Materijal za šavove sa različitom strukturom niti

Postoje pleteni i tordirani šavni materijali. Od pruća je teže napraviti, ali je izdržljivije. Nedavno je napredak u hemiji doveo do mogućnosti upotrebe niti u obliku monofilamenta, koji ima visoku mehaničku čvrstoću sa malim prečnikom. Monofilamenti se koriste u mikrohirurgiji, estetskoj hirurgiji i operacijama srca i krvnih sudova.

Traumatski i atraumatski šavni materijal

Dugi niz godina, tokom hirurške operacije, operativna sestra je neposredno pre postavljanja šava uvlačila odgovarajući konac u odvojivo ušicu hirurške igle. Takav materijal za šavove trenutno se naziva traumatskim.

Posljednjih desetljeća atraumatski materijal za šavove postao je široko rasprostranjen. Fabrički je konac čvrsto povezan sa iglom i namenjen je za nanošenje jednog šava. Glavna prednost atraumatskog šavnog materijala je približno podudaranje promjera konca s promjerom igle (kada se koristi traumatski materijal, debljina konca je znatno manja od promjera ušice igle), dakle, konac gotovo u potpunosti pokriva defekt tkiva nakon prolaska igle. S tim u vezi, to je atraumatski šavni materijal koji se mora koristiti za vaskularne i kozmetičke šavove. Uzimajući u obzir i oštrinu jednokratnih igala i jednostavnost korištenja, treba pretpostaviti da će u bliskoj budućnosti atraumatski šavni materijal postupno u potpunosti zamijeniti traumatske.

Debljina navoja

Radi lakšeg korištenja, svim nitima su dodijeljeni brojevi ovisno o njihovoj debljini. Najtanji konac je br. 0, najdeblji je broj 10. U općim hirurškim operacijama obično se koriste niti od br. 1 do br. 5. Konac br. 1, na primjer, može se koristiti za šivanje ili podvezivanje malih krvnih žila, postavljanje sivo-seroznih šavova na crijevni zid. Niti br. 2 i 3 - za podvezivanje krvnih sudova srednje veličine, nanošenje serozno-mišićnih šavova na crijevo, šivanje peritoneuma itd. Konac br. 5 se obično koristi za šivanje aponeuroze.

Prilikom izvođenja vaskularnih operacija, posebno mikrohirurških intervencija, potrebni su još tanji niti od niti br. 0. Takve niti su počele da se dodeljuju brojevima 1/0, 2/0, 3/0, itd. Najtanji konac koji se trenutno koristi u oftalmologiji i operacijama na limfnim sudovima je broj 10/0. Treba napomenuti da se niti razlikuju i po drugim svojstvima: neki bolje klize i skloni su odmotavanju, drugi se vraćaju kada su zategnuti, manje-više su inertni u odnosu na tkanine, manje ili više izdržljivi, itd.

Nedavno su konci s antimikrobnim djelovanjem postali široko rasprostranjeni zbog uvođenja antiseptika i antibiotika u njihov sastav (letilan-lavsan, fluorlon, itd.).

Metalne kopče, terminali i obujmice od nerđajućeg čelika, titanijuma, tantala i drugih legura stoje nešto odvojeno.

Ova vrsta materijala za šavove koristi se u specijalnim mašinama za šivanje.

Metode sterilizacije materijala za šavove

Trenutno, glavna metoda sterilizacije šavnog materijala je sterilizacija zračenjem u fabrici. Ovo se u potpunosti odnosi na atraumatski šavni materijal: igla i konac se stavljaju u posebno zapečaćeno pakovanje, što ukazuje na veličinu, zakrivljenost i vrstu (probijanje ili rezanje) igle, materijal, dužinu i broj konca. Materijal za šavove se steriliše, a zatim se u pakovanju isporučuje u medicinske ustanove.

Također možete sterilizirati samo konce. Osim toga, komadi konca se mogu staviti u zatvorene staklene ampule sa posebnim antiseptičkim rastvorom, a kalemovi konca se mogu staviti u posebne zatvorene posude sa istim rastvorom.

Klasične metode sterilizacije svile (Kocherova metoda) i katguta (metoda Sitkovskog u jodnoj pari, Gubarev i Claudius metode u alkoholu i vodenim Lugolovim rastvorima) trenutno su zabranjene za upotrebu zbog njihovog trajanja, složenosti i ne uvek dovoljne efikasnosti.

Sterilizacija struktura, proteza, transplantacija

Metoda sterilizacije implantata u potpunosti ovisi o materijalu od kojeg su izrađeni.

Metalne konstrukcije za osteosintezu (ploče, šrafovi, šrafovi, igle za pletenje) steriliziraju se zajedno sa metalnim nereznim instrumentima u autoklavu ili pećnici na suho grijanje.

Složenije proteze (proteze srčanih zalistaka, zglobovi), koje se sastoje ne samo od metalnih, već i od plastičnih dijelova, najbolje se steriliziraju kemijskim metodama - u plinskom sterilizatoru ili namakanjem u antiseptičkim otopinama.

U posljednje vrijeme vodeći proizvođači proteza ih proizvode u zatvorenim pakovanjima, steriliziranim zračenjem.

Pored različitih struktura i proteza, izvor implantacijske infekcije mogu postati i alogeni organi koji su uklonjeni iz drugog organizma tokom operacije transplantacije. Sterilizacija transplantata je nemoguća, stoga je pri vađenju organa potrebno poštovati najstrožiju sterilnost: operacije sakupljanja se izvode u skladu sa istim aseptičkim pravilima kao i konvencionalne hirurške intervencije. Nakon vađenja iz tijela donora i ispiranja sterilnim rastvorima, organ se stavlja u posebnu zatvorenu posudu, gdje ostaje u sterilnim uvjetima do transplantacije.

TO materijal za previjanje uključuju kuglice od gaze, tampone, salvete, zavoje, turunde, štapiće od pamučne gaze. Materijal za zavoj se obično priprema neposredno prije sterilizacije, koristeći posebne tehnike kako bi se spriječilo trošenje pojedinačnih niti od gaze. Radi lakšeg brojanja, kuglice se stavljaju u 50-100 komada u gaze salvete, salvete i tamponi su vezani u 10 komada. Zavojni materijal se ne koristi ponovo, nakon upotrebe se uništava.

TO operativna posteljina uključuju hirurške haljine, plahte, peškire, obloge. Materijal za njihovu proizvodnju su pamučne tkanine. Hirurško rublje za višekratnu upotrebu pere se nakon upotrebe, a odvojeno od ostalih vrsta posteljine.

2.2.2. Sterilizacija zavoja i hirurške posteljine

Zavojni materijal i posteljina se sterilišu autoklavom pod standardnim uslovima. Prije sterilizacije obloge i posteljina se stavljaju u posude. Postoje tri glavne vrste bix stila: univerzalni, ciljani i specifični.

Univerzalni stajling

Obično se koristi za rad u svlačionici i za manje operacije. Biksi su konvencionalno podijeljeni u sektore, svaki od njih je napunjen određenom vrstom materijala za previjanje ili posteljinom: salvete se stavljaju u jedan sektor, kuglice u drugi, tamponi u treći itd.

Ciljani stil

Dizajniran za izvođenje tipičnih manipulacija, procedura i manjih operacija. Na primjer, postavljanje za traheostomiju, kateterizaciju subklavijske vene, epiduralnu anesteziju itd., svi instrumenti, zavoji i posteljina potrebni za zahvat se stavljaju u bix.

Tip styling

Obično se koristi u operacionim salama gde su potrebne velike količine sterilnog materijala. U ovom slučaju, na primjer, hirurški ogrtači se stavljaju u jednu kantu, čaršave u drugu, salvete u treću itd. Zavojni materijal se koristi u malim količinama u pakovanjima koja su podvrgnuta radijacijskoj sterilizaciji. Postoje i posebni kompleti hirurškog platna za jednokratnu upotrebu (haljine i čaršave) napravljene od sintetičkih tkanina koje su također bile podvrgnute radijacijskoj sterilizaciji.

2.3 Metode kontrole sterilnosti

Sve radnje vezane za obradu i sterilizaciju instrumenata, posteljine i ostalog podležu obaveznoj kontroli. Oni kontrolišu i efikasnost sterilizacije i kvalitet pripreme pred sterilizaciju.

Metode kontrole steriliteta dijele se na direktne i indirektne.

2.3.1. Direktna metoda za kontrolu steriliteta

Radi se o bakteriološkoj studiji. Metodologija : preko sterilnih instrumenata (kože ruku hirurga ili hirurškog polja, hirurškog platna i sl.) prelazi se posebnim sterilnim brisom, nakon čega se stavlja u sterilnu epruvetu i šalje u bakteriološku laboratoriju, gde se vrši inokulacija na različite hranljive podloge i na taj način se utvrđuje bakterijska kontaminacija. Bakteriološka metoda kontrole steriliteta je najpreciznija. Negativna točka je trajanje studije: rezultat kulture je spreman tek nakon 3-5 dana, a instrumenti se moraju koristiti odmah nakon sterilizacije. Dakle, bakteriološko istraživanje se provodi planirano i na osnovu njegovih rezultata se ocjenjuju metodološke greške u radu medicinskog osoblja ili kvarovi u opremi koja se koristi. Prema postojećim standardima, koji se neznatno razlikuju za različite vrste instrumenata, bakteriološki pregled se mora obavljati svakih 7-10 dana. Osim toga, dva puta godišnje slične studije provode na svim odjeljenjima bolnice okružne i gradske sanitarne i epidemiološke službe.

Materijal koji se koristi za dreniranje rana i hirurškog polja, tamponiranje rana, nanošenje zavoja itd. naziva se zavojni materijal. Zavojni materijal mora biti visoko higroskopan (dobro apsorbirati tekućinu iz rane), brzo se sušiti, imati elastičnost i čvrstoću, ne izazivati ​​alergijske reakcije, ne pogoršavati svojstva tokom sterilizacije, biti pristupačan i jeftin, s obzirom na veliku potrošnju materijala za zavoje. Najčešći materijali su gaza, vata, lignin i elastični zavoji. Od gaze se prave zavoji, salvete, tamponi, kuglice, turunde itd. Upijajuća bijela vata ima veliki usisni kapacitet i štiti ranu od vanjskih utjecaja. Vata se nanosi na ranu preko gaze kako se vata ne bi zalijepila i ne bi ostala vlakna u rani. Umjesto vate koristi se lignin (rebrasti listovi tankog papira od drveta). Elastični cevasti zavoji "Retelast" i pleteni cevasti zavoji se široko koriste za pričvršćivanje zavoja.

U hitnim slučajevima, u nedostatku sterilnog materijala za zavoje, može se koristiti bilo koja čista tkanina, prethodno dobro ispeglana. Ako nije moguće sterilizirati oblogu na ovaj način, onda nesterilnu gazu, lan, kaliko itd. treba navlažiti otopinom rivanola, kalijum permanganata, borne kiseline (jedna trećina kašičice borne kiseline po čaši prokuvane vode) ili drugim dezinfekcionim rastvorima.
Najefikasniji način sterilizacije zavoja i hirurškog rublja je sterilizacija parom pod pritiskom u parnim sterilizatorima (autoklavima). Kada se prokuva pod normalnim pritiskom, voda ključa i proizvodi paru na temperaturi od 100°. Kada se pritisak poveća za 0,5 atmosfere, ključanje i isparavanje počinje na temperaturi od 110°, što stvara uslove za smrt svih mikroba, uključujući i one otporne na visoke temperature (izlaganje 1 sat). Kada se pritisak poveća na 1 atmosferu na temperaturi od 120-126°, izlaganje treba da bude 45 minuta; pri pritisku pare od 1,5 atmosfere na temperaturi od 127-133°, trajanje sterilizacije je 30 minuta; para nastala ključanjem pod pritiskom od 2 atmosfere ima temperaturu od 134° i ubija mikrobe u roku od 15-20 minuta.
Ako autoklav radi ispravno, potrebno je samo pratiti manometar i održavati vrijeme određeno za sterilizaciju. U slučaju da se ispostavi da je autoklav neispravan, koriste se dodatni testovi za utvrđivanje efikasnosti sterilizacije. Mikuliczov test se sastoji u tome da se na traku papira ispiše riječ "sterilizirano", zatim se papir prekrije slojem škrobne paste, a kada se papir malo osuši, navlaži se u Lugolovom rastvoru. Papir dobija tamnoplavu boju, zbog čega više nije vidljiva riječ "sterilizirano". Papir se suši i stavlja u materijal za sterilizaciju. Kada se izloži temperaturama iznad 100°, tamnoplava boja se uništava i ponovo postaje vidljiva riječ “sterilizirano”. Kontrola je efikasnija sa sumporom, antipirinom, antifibrinom, resorcinolom, benzojevom kiselinom, fenacetinom, ureom ili naftolom, koji imaju višu tačku topljenja (od 111 do 135°). Navedene supstance u obliku komadića ili praha stavljaju se u epruvete ili boce, zatvorene čepovima, kada se u autoklavu dostigne odgovarajuća temperatura, tope se, a kada se ohlade, formiraju kompaktnu masu. Češće koriste sumpor ili antipirin (sumpor se topi na temperaturi od 126°, antipirin na 110°). Dobra tehnika za praćenje sterilizacije je korištenje obojenih indikatorskih gaznih traka (na različitim temperaturama boja se mijenja različitim intenzitetom). Sterilizovani materijal mora biti suv, inače je upitna njegova sterilnost.
Autoklav je metalna posuda s dvostrukim čvrstim stijenkama, između kojih se ulijeva voda, poklopac je zapečaćen vijcima, a zatim se voda zagrijava odozdo pomoću uređaja za grijanje. Na vanjskoj površini autoklava nalazi se sigurnosni ventil, mjerač tlaka, termometar, lijevak za punjenje vode i slavina za njeno ispuštanje. Kada voda proključa, nastala para ispunjava unutrašnju posudu autoklava, gdje se zavoji, posteljina i drugi proizvodi prethodno stavljaju u vrećice ili u posebne sterilizacijske metalne kutije (vreće).
Biksi imaju poklopac za zatvaranje, na bočnim stijenkama se nalaze rupe za prolaz pare u biksi, te se rupe nakon sterilizacije zatvaraju pokretnim metalnim rubom. Ovo zatvara kontejnere, koji se mogu čuvati van autoklava 2 dana. Kljunovi su iznutra obloženi ubrusom ili platnom. Prilikom punjenja čaša, morate osigurati da para može slobodno prodrijeti u dubinu čaša. Osim toga, materijal je presavijen što je više moguće okomito tako da se bilo koji predmet može ukloniti bez ometanja drugih. Pogodnije je puniti kontejnere homogenim materijalima; nemojte miješati, na primjer, hirurško rublje i ogrtače sa zavojnim materijalom.
Slična pravila važe za stavljanje zavoja i hirurške posteljine u vrećice za autoklaviranje. Jedna karakteristika: materijal koji se steriliše stavlja se u dve vrećice, postavljene jedna na drugu, sa vezicama u obliku vrećice. To se radi kako bi nakon sterilizacije nesterilnim rukama odvezali gornju vrećicu i pomjerili je prema dolje. Doktor tada može, noseći sterilne rukavice ili koristeći sterilne instrumente, ukloniti unutrašnju vrećicu i staviti je na sterilnu draperiju u operacionoj sali ili svlačionici.
Ponovna upotreba zavojnog materijala nakon pranja i autoklaviranja moguća je samo nakon čistih operacija umrljanih krvlju, ali ne i gnojem.