Asepsis, definisi. Hukum dasar asepsis. Metode dasar mensterilkan instrumen, dressing, dan linen. Kontrol sterilitas. Dan linen bedah. organisasi kerja di ruang operasi Persiapan dan sterilisasi pembalut bedah

Saat mensterilkan dressing di dalam tas, linen tidak diletakkan rapat, tas diikat dengan pita. Tas diturunkan ke tas lain yang identik dan diikat. Jika perlu menggunakan bahan, kantong diletakkan di atas bangku, perawat melepaskan ikatan kantong bagian atas, melebarkan tepinya dan menggerakkannya ke bawah.Perawat operasi melepaskan ikatan kantong bagian dalam dengan tangan steril, membukanya dan mengeluarkan bahan.

Sterilisasi bahan ganti, linen bedah:

Tahap 1 - persiapan bahan pra-sterilisasi. Bahan pembalut antara lain tas kasa, serbet, tampon, turundas, perban, serta gaun bedah, sprei, handuk, masker, topi, penutup sepatu. Mereka digunakan selama operasi dan pembalutan untuk mengeringkan luka, menghentikan pendarahan, dan untuk drainase atau pembalutan luka. Bahan pembalut dibuat dari kain kasa dan pial, lebih jarang dari viscose dan lignin. Bahan pembalut dibuat dari kain kasa yang sebelumnya dipotong-potong. Kain kasa dilipat sedemikian rupa sehingga ujung-ujungnya terselip ke dalam dan tidak ada ujung bebas yang dapat membuat serat kain terlepas. Bahan tersebut disimpan sebagai cadangan, diisi ulang saat dikonsumsi. Untuk memudahkan penghitungan bahan yang digunakan selama operasi, bahan tersebut ditempatkan sebelum sterilisasi dalam urutan tertentu: bola - dalam kantong kain kasa, serbet diikat menjadi 10 buah. Bahan pembalut, kecuali pembalut yang tidak terkontaminasi darah, dibakar setelah digunakan.

Linen operasi meliputi gaun bedah, seprai, handuk, masker, topi, penutup sepatu. Bahan pembuatannya adalah kain katun - belacu, linen. Linen bedah yang dapat digunakan kembali harus memiliki tanda khusus dan dicuci terpisah dari linen lain dalam kantong khusus. Jubah tidak boleh memiliki saku atau ikat pinggang, dan seprai harus dikelim. Jubah, seprai, popok, dan handuk untuk sterilisasi dilipat dalam bentuk gulungan agar mudah dibuka lipatannya saat digunakan.

Tahap II - meletakkan dan menyiapkan bahan untuk sterilisasi. Bahan pembalut dan linen bedah ditempatkan dalam kotak. Jika tidak ada bixes, sterilisasi dalam kantong linen diperbolehkan.

Dengan penempatan universal, bahan yang ditujukan untuk satu operasi kecil (radang usus buntu, herniotomi, proses mengeluarkan darah, dll.) ditempatkan di dalam bix.

Selama penempatan yang ditargetkan, seperangkat pembalut dan pakaian bedah yang diperlukan untuk operasi tertentu (pneumonektomi, reseksi lambung, dll.) ditempatkan di bix. Bila diletakkan menurut jenisnya, jenis bahan pembalut atau linen tertentu ditempatkan di dalam bix (bix dengan gaun, bix dengan serbet, bix dengan bola, dll).

Bahan ini dimasukkan ke dalam wadah dengan perhitungan sebagai berikut: bahan pembalut (kain kasa, perban) dilipat sedemikian rupa sehingga ujung-ujungnya menghadap ke dalam dan tidak ada bagian tepi yang bebas sehingga serat-serat kain dapat terlepas. gunakan, mengisi kembali cadangannya saat sudah habis.

Pertama, kemudahan servis bix diperiksa, kemudian lembaran yang tidak dilipat ditempatkan di bagian bawahnya, yang ujung-ujungnya terletak di luar. Bahan pembalut ditempatkan secara vertikal dalam beberapa sektor atau dalam kemasan. Bahan dimasukkan secara longgar untuk memungkinkan akses uap, indikator mode sterilisasi ditempatkan di tengah, tepi lembaran dibungkus, bix ditutup dengan penutup dan kunci ditutup. Label kain minyak ditempelkan pada tutup wadah, yang menunjukkan nama bahan, dan setelah sterilisasi, tanggal dan prosedur serta nama orang yang melakukan sterilisasi.

Tahap III - sterilisasi. Bahan pembalut dan linen bedah disterilkan dalam autoklaf selama 40 menit pada tekanan 2 atm. dan suhu 132,9°C.

Tahap IV - konservasi bahan steril. Setelah sterilisasi dan pengeringan linen selesai, ruang sterilisasi dikeluarkan, wadah dikeluarkan, segera ditutup dan dipindahkan ke meja khusus untuk bahan steril. Bixes disimpan dalam lemari terkunci di ruangan khusus.

Pengendalian sterilitas bahan dan cara sterilisasi dalam autoklaf dilakukan dengan cara langsung dan tidak langsung. Metode langsung bersifat bakteriologis; kultur dari dressing dan linen atau penggunaan uji bakteriologis. Penaburan dilakukan dengan cara ini: di ruang operasi, bix dibuka, potongan kecil kain kasa yang dibasahi dengan larutan natrium klorida isotonik dilewatkan di atas linen beberapa kali, setelah itu potongan kain kasa direndam dalam tabung reaksi. , yang dikirim ke laboratorium bakteriologis. Untuk pengujian bakteriologis, digunakan tabung reaksi dengan kultur mikroorganisme non-patogen yang diketahui mengandung spora dan mati pada suhu tertentu. Tabung ditempatkan dalam wadah, setelah sterilisasi selesai dikeluarkan dan dikirim ke laboratorium. Tidak adanya pertumbuhan mikroba menunjukkan sterilitas bahan. Pemeriksaan kultur dari dressing dan linen dilakukan setiap 10 hari sekali.

Metode tidak langsung untuk memantau sterilitas bahan terus digunakan selama setiap sterilisasi. Untuk melakukan ini, digunakan zat dengan titik leleh tertentu: asam benzoat (120°C), resorsinol (119°C), antipirin (110°C). Zat-zat ini tersedia dalam ampul. Mereka juga digunakan dalam tabung reaksi (masing-masing 0,5 g), ditutup dengan penutup kain kasa. 1-2 ampul ditempatkan di bix di antara lapisan bahan. Melelehnya serbuk dan transformasinya menjadi massa padat menunjukkan bahwa suhu dalam campuran sama dengan atau lebih tinggi dari titik leleh zat pengatur. Untuk mengontrol rezim sterilisasi dalam alat sterilisasi panas kering, digunakan bahan bubuk dengan titik leleh lebih tinggi: asam askorbat (187-192°C), asam suksinat(180-184°C), pilocarpine hidroklorida (200°C), urea (180°C).

Saat ini, berbagai indikator pengendalian sterilitas digunakan, yang diproduksi di pabrik. Penggunaannya didasarkan pada kemampuan zat kimia mengubah parameter fisikokimia dan warnanya pada suhu tertentu.

Sterilisasi instrumen:

Tahap I - persiapan pra-sterilisasi. Tujuannya adalah pembersihan mekanis secara menyeluruh pada instrumen, jarum suntik, jarum suntik, sistem transfusi, penghilangan zat pirogenik dan penghancuran virus hepatitis.

Tata cara penyiapan instrumen pra-sterilisasi:

Disinfeksi;

Berendam dalam larutan sabun peroksida selama 15 menit. pada T 50 °C.;

Cuci selama 30 detik dalam larutan sabun peroksida menggunakan kapas;

Bilas dengan air mengalir selama 30 detik;

Bilas dengan air suling;

Pengeringan;

Pengujian mutu sediaan prasterilisasi (pengujian keberadaan deterjen, sampel untuk mengetahui adanya sisa darah, sampel untuk mengetahui adanya residu lemak.).

Tahap II - peletakan dan persiapan sterilisasi. Setelah pengeringan awal di udara, instrumen ditempatkan untuk dikeringkan dalam oven panas kering, yang dipanaskan hingga 80°C dengan pintu terbuka. Kemudian pintu lemari ditutup dan sterilisasi dimulai.

Tahap III - sterilisasi. Sterilisasi instrumen, spuit, jarum suntik, peralatan gelas dilakukan dalam alat sterilisasi panas kering. Setelah pintu lemari ditutup, suhu diatur ke 160 °C atau 180 °C, dipertahankan secara otomatis. Sterilisasi berlangsung selama 60 menit pada suhu 180°C, atau 150 menit pada suhu 160°C. Setelah mematikan sistem pemanas dan menurunkan suhu hingga 70-50°C, buka pintu lemari, dan tutup kotak logam berisi instrumen dengan instrumen steril.

Sterilisasi instrumen yang mengandung bagian plastik (misalnya cartridge dengan penjepit kertas), spuit dapat dilakukan di dalam alat sterilisasi uap (autoklaf). Barang-barang yang dikemas ditempatkan ke dalam ruang sterilisasi. Jika bungkusan ditempatkan di dalam kotak, maka bagian-bagiannya harus terbuka. Instrumen bedah dan spuit disterilkan selama 20 menit pada tekanan 2 atm. dan suhu 132,9°C. Waktu mulai sterilisasi dihitung dari periode tercapainya tekanan yang sesuai. Sarung tangan karet, sistem transfusi darah, tabung drainase karet disterilkan pada 1,1 atm. dan suhu 120°C selama 45 menit. atau pada 0,% atm. dan suhu 110 °C selama 180 menit.Saat mengeluarkan autoklaf, tutup lubang wadah.

Metode sterilisasi dalam alat sterilisasi panas kering dan uap harus dianggap sebagai metode dasar. Metode sterilisasi perebusan sesuai dengan OST42-21-2-85 “Sterilisasi dan desinfeksi peralatan medis” digunakan.

Sterilisasi instrumen dan barang yang tidak dikenakan perawatan panas(endoskopi, torakoskop, laparoskop, alat atau unit alat untuk sirkulasi buatan, hemosorpsi), dilakukan dalam alat sterilisasi gas khusus. Barang-barang yang akan disterilkan ditempatkan dalam ruang sterilisasi tertutup yang diisi dengan etilen oksida. Periode pemaparan adalah 16 jam pada suhu 18°C. Sterilisasi juga dapat dilakukan dengan campuran etilen oksida dan metilen bromida pada suhu 55°C selama 6 jam.

Tahap IV - pengawetan bahan steril. Bahan steril disimpan dalam ruangan khusus. Penyimpanan bahan yang tidak steril dan steril dalam satu ruangan tidak diperbolehkan. Sterilitas bahan dalam wadah (jika tidak dibuka sedikit) dijaga selama 48 jam, dan jika bahan dikemas tambahan dalam kantong kapas - 72 jam. Dengan sterilisasi terpusat, jarum suntik tetap steril selama 25 hari.

Pengertian dan klasifikasi metode pemotongan, optik dan sterilisasi umum peralatan bedah. Sterilisasi alat pemotong dilakukan dengan metode udara kering pada suhu 180°C, dibungkus dengan dua lapis kertas khusus.

Sterilisasi instrumen dan alat optik (laparoskop, torakoskop) dapat dilakukan dalam larutan alkohol Pervomuru, larutan glutaraldehid 2,5% selama 360 menit atau larutan obat "Sidex" selama 660 menit. Sterilisasi peralatan dan instrumen dengan bahan kimia harus dilakukan dalam kotak logam dengan penutup yang mencegah penguapan obat. Jika tidak ada peralatan khusus, sterilkan dalam wadah berenamel atau kaca. Instrumen diisi dengan larutan sehingga menutupi seluruhnya dan ditutup dengan penutup. Dalam kasus darurat, ketika tidak mungkin untuk memastikan sterilisasi instrumen dengan menggunakan salah satu metode yang ditunjukkan, sterilisasi instrumen dengan cara dibakar digunakan. 15-20 ml alkohol dituangkan ke dalam nampan logam, beberapa instrumen ditempatkan di bagian bawah dan alkohol dibakar. Cara pembakaran yang kurang dapat diandalkan, bahaya kebakaran dan ledakan (adanya oksigen, uap zat narkotika di udara dalam ruangan). Oleh karena itu, hal ini dilakukan dalam kasus luar biasa, dengan mengikuti aturan keselamatan kebakaran dengan ketat.

TOPIK 14.

STERILISASI BAHAN PAKAI DAN LINEN OPERASI. ORGANISASI KERJA DI RUANG OPERASI. PERAWATAN BEDAH TANGAN BEDAH

DAN BIDANG BEDAH

Cara membuat serbet, tampon, bola.

Unit operasi menerima kain kasa yang mempunyai sertifikat kualitas dan disetujui untuk digunakan dalam institusi medis. Kasa tersedia dalam bentuk gulungan atau potongan dengan panjang dan lebar berbeda. Itu harus berwarna putih, lembut, higroskopis, bebas lemak.

Saat menguji higroskopisitas, sepotong kain kasa berukuran 5x5 cm ditempatkan dalam nampan berisi air, dengan higroskopisitas normal, kain kasa tenggelam dalam 10-15 detik.

Bahan bedah dan pembalut disiapkan di meja khusus dengan tangan bersih. Sepotong kain kasa diletakkan di atas meja dan dipotong dengan gunting atau pisau elektromekanis. Kasa dilipat menjadi 10 lapisan. Mereka dipotong sesuai dengan skema pemotongan yang diterapkan dalam setiap prosedur operasional. Salah satu skema yang diterima secara umum adalah:

Aturan dasar saat melipat bahan bedah adalah membengkokkan tepi kain kasa ke dalam untuk mencegah benang kecil masuk ke dalam luka. Untuk pekerjaan bedah, tiga jenis serbet digunakan: besar, sedang, dan kecil. Yang besar terbuat dari kain kasa berukuran 40x60 cm, yang sedang - 37x30 cm, dan yang kecil - 20x15 cm.Pemotongan kain kasa sepanjang 1 m menjadi serbet dilakukan sebagai berikut: sepotong kain kasa dalam 10 lapis dipotong dengan gunting. Untuk menyiapkan serbet besar dan sedang, potong kain kasa selebar 20 cm di sepanjang benang melintang di kedua sisi hingga seluruh ketebalan kain. Potongan-potongan ini digunakan untuk membuat serbet besar. Bagian tengahnya juga dipotong menjadi 3 bagian kain kasa yang sama besar, yang kemudian dipotong menjadi dua dua kali. Potongan yang dihasilkan digunakan untuk menyiapkan serbet kecil. Untuk membuat serbet besar dan sedang, serta bola-bola, kain kasa diletakkan di atas meja, seperti pada kasus sebelumnya, dalam jumlah lapisan yang sama, tetapi sepotong 20 cm dipotong di salah satu ujungnya untuk membuat serbet besar, dan potongan 5 cm dari yang lain untuk bola. Potongan yang tersisa dari tengah dipotong dua kali menjadi dua bagian yang sama - memanjang dan melintang; serbet sedang dibuat dari potongan-potongan ini. Melipat serbet besar dilakukan sebagai berikut: dua bagian tepi yang dipotong dilipat ke dalam sedalam 5-6 cm, kemudian kain kasa dilipat dua lagi. Pelipatan serbet ukuran sedang diawali dengan menyelipkan ketiga sisinya ke dalam sedalam 3-5 cm, kemudian serbet dilipat menjadi dua, mula-mula melintang lalu sepanjang benang memanjang. Untuk membuat bola, tepi sisi yang lebih besar dilipat terlebih dahulu sehingga saling tumpang tindih, kemudian ujung bebas dari sisi yang lebih kecil dilipat ke dalam hingga ujung-ujungnya saling bertemu dan dilipat menjadi dua. Tampon besar, sedang dan kecil dibuat dari kain kasa yang sama. Membuat tampon besar: tepi kain kasa yang sudah dipotong digulung ke dalam hingga kedalaman 5-6 m, kemudian tampon dilipat dua dua kali dengan arah yang sama. Pita ini, panjang 60 cm dan lebar 10 cm, dilipat hampir menjadi dua (bagian bawah harus lebih panjang 5-6 cm dari bagian atas. Tepi bebas dari lapisan kain kasa bawah dililitkan di sekitar tampon; itu perlu untuk mencengkeram tampon saat operasi. Pembuatan tampon bagian tengah hampir sama, kecuali pada manipulasi terakhir, dimana pita yang terlipat dilipat lagi sepanjang garis lobar dan baru kemudian sepanjang garis memanjang. Tampon seperti itu bisa dibuat oleh saudari operasi dari yang tengah selama operasi. Pembuatan tampon kecil dimulai dengan menyelipkan salah satu ujung kain kasa ke dalam sejauh 1-2 cm, kemudian menyelipkannya ke dalam dengan sedikit tumpang tindih pada tepi yang lebih panjang, dan melipatnya lagi menjadi dua dengan arah memanjang. Bola-bola tersebut dibuat dari potongan kain kasa berukuran 11x10 cm atau 11x5 cm, dilipat sehingga terbentuk bola kain kasa berbentuk segitiga atau amplop segi empat. Perhatikan untuk memastikan tidak ada benang yang menonjol. Bahan yang telah disiapkan ditempatkan dalam wadah dan disterilkan dalam autoklaf.

Persiapan linen dan dressing untuk digunakan mencakup langkah-langkah berikut:

I – persiapan bahan pra-sterilisasi;

II – peletakan dan persiapan sterilisasi;

III – sterilisasi;

IV – pengawetan bahan steril.

Sterilisasi dressing dan linen bedah, jubah

Tahap 1– persiapan bahan sebelum sterilisasi. Bahan ganti meliputi bola kasa, serbet, tampon, turundas, perban, serta baju bedah, seprai, handuk, masker, topi, penutup sepatu. Mereka digunakan selama operasi dan pembalutan untuk mengeringkan luka, menghentikan pendarahan, dan untuk drainase atau pembalutan luka. Bahan pembalut dibuat dari kain kasa dan kapas, lebih jarang dari viscose dan lignin, dari kain kasa, yang sebelumnya dipotong-potong. Kain kasa dilipat sedemikian rupa sehingga ujung-ujungnya masuk ke dalam dan tidak ada tepi bebas yang dapat membuat serat kain terlepas. Bahan tersebut disimpan untuk digunakan di masa depan, mengisi kembali cadangannya saat dikonsumsi. Untuk memudahkan penghitungan bahan yang digunakan selama operasi, bahan tersebut ditempatkan sebelum sterilisasi dengan urutan tertentu: bola dalam kantong kain kasa, serbet diikat menjadi 10 buah. Bahan pembalut, kecuali pembalut yang tidak terkontaminasi darah, dibakar setelah digunakan.

Linen operasi meliputi gaun bedah, handuk, seprai, masker, topi, penutup sepatu. Bahan pembuatannya adalah kain katun - belacu, linen. Linen bedah yang dapat digunakan kembali harus memiliki tanda khusus dan dicuci terpisah dari linen lain dalam kantong khusus. Jubah tidak boleh memiliki saku atau ikat pinggang, dan seprai harus dikelim. Jubah, seprai, popok, dan handuk untuk sterilisasi dilipat dalam bentuk gulungan agar mudah dibuka lipatannya saat digunakan.

Tahap II– meletakkan dan menyiapkan bahan untuk sterilisasi. Dressing bahan dan linen bedah ditempatkan dalam kotak. Jika tidak ada bixes, sterilisasi dalam kantong linen diperbolehkan. Pada saat mensterilkan di dalam tas, bahan pembalut dan linen tidak diletakkan rapat, tas diikat dengan kepang. Tas diturunkan ke dalam tas lain yang identik dan diikat. Jika perlu menggunakan bahan, tas diletakkan di atas bangku, perawat melepaskan ikatan tas bagian atas, merentangkan tepinya dan melepasnya ke bawah. Perawat operasi mengambil kantong bagian dalam dengan tangan steril, membukanya, dan mengeluarkan bahannya. Dengan penempatan universal, bahan yang ditujukan untuk satu operasi standar kecil (usus buntu, herniotomi, proses mengeluarkan darah, dll.) ditempatkan di dalam bixes.

Selama penempatan target, seperangkat pembalut dan pakaian bedah yang diperlukan untuk operasi tertentu (pneumonektomi, gastrektomi, dll.) ditempatkan di dalam kotak. Saat mengemas satu per satu, jenis bahan pembalut atau linen tertentu ditempatkan di dalam kotak (kotak berisi gaun, kotak serbet, kotak berisi bola, dll.). Bahan ini dimasukkan terlebih dahulu ke dalam wadah dengan perhitungan sebagai berikut: bahan pembalut (kain kasa, perban) ditempatkan sedemikian rupa sehingga ujungnya terselip ke dalam dan tidak ada tepi yang bebas sehingga serat kain dapat terlepas. Lebih banyak bahan yang disiapkan, mengisi kembali cadangannya seiring dengan konsumsinya.

Pertama, kemudahan servis bix diperiksa, kemudian lembaran yang tidak dilipat ditempatkan di bagian bawahnya, yang ujung-ujungnya berada di luar. Bahan pembalut diletakkan secara vertikal di sektor-sektor atau dalam kemasan. Bahan diletakkan longgar untuk memungkinkan akses uap, indikator sterilisasi ditempatkan di dalam, tepi lembaran dilipat, bix ditutup dengan penutup dan kunci dikunci. Label kain minyak ditempelkan pada tutup kotak, yang di atasnya tertera nama bahan, dan setelah sterilisasi, tanggal dan nama orang yang melakukan sterilisasi.

Tahap III– sterilisasi.

Bahan pembalut dan linen bedah disterilkan dalam autoklaf selama 20 menit pada tekanan 2 atm. dan suhu 132,9 °C atau selama 45 menit pada tekanan 1,1 atm. dan suhu 122 °C.

Tahap IV– pengawetan bahan steril. Setelah sterilisasi dan pengeringan linen selesai, ruang sterilisasi dikeluarkan, wadah dikeluarkan, segera ditutup dan dipindahkan ke meja khusus untuk bahan steril. Bix disimpan dalam lemari terkunci di ruangan khusus.

Pengendalian sterilitas bahan dan cara sterilisasi dalam autoklaf dilakukan dengan cara langsung dan tidak langsung. Metode langsung adalah kultur bakteriologis dari dressing dan linen atau penggunaan uji bakteriologis. Penaburan dilakukan sebagai berikut: di ruang operasi, bix dibuka, potongan kecil kain kasa yang dibasahi dengan larutan natrium klorida isotonik dilewatkan ke linen beberapa kali, setelah itu potongan kain kasa direndam dalam tabung reaksi dan dikirim ke laboratorium bakteriologi. Untuk pengujian bakteriologis, digunakan tabung reaksi dengan kultur mikroorganisme non-patogen yang diketahui mengandung spora dan mati pada suhu tertentu. Tabung ditempatkan dalam wadah, setelah sterilisasi selesai dikeluarkan dan dikirim ke laboratorium. Tidak adanya pertumbuhan mikroba menunjukkan sterilitas bahan. Kultur dari dressing dan linen diperiksa setiap 10 hari sekali.

Metode tidak langsung untuk memantau sterilitas bahan terus digunakan selama setiap sterilisasi. Untuk ini mereka menggunakan zat dengan titik leleh tertentu: asam benzoat (120 ° C), resorsinol (119 °C), antipirin (110 °C). Zat-zat ini diproduksi dalam ampul dalam bentuk indikator khusus. Mereka juga digunakan dalam tabung reaksi (masing-masing 0,5 g), ditutup dengan penutup kain kasa. 1-2 ampul ditempatkan di bix di antara lapisan bahan. Melelehnya serbuk dan transformasinya menjadi massa padat menunjukkan bahwa suhu dalam campuran sama dengan atau lebih tinggi dari titik leleh zat pengatur. Untuk mengontrol rezim sterilisasi dalam alat sterilisasi panas kering, zat tepung dengan suhu lebih tinggi titik leleh: asam askorbat (187-192 °C), suksinat asam (180-184 °C), pilocarpine hidroklorida (200 °C), urea (180 °C) dan indikator yang diproduksi dalam kondisi industri.

Saat ini, berbagai indikator pengendalian digunakan sterilitas, diproduksi di pabrik. Berdasarkan merekapenerapannya didasarkan pada kemampuan zat kimia untuk mengubah sifat fisiknya indikator kimia dan warna pada suhu tertentu.

Struktur, prinsip dan cara pengoperasian autoklaf.

Aturan keselamatan saat bekerja dengan autoklaf

Ruang sterilisasi dan ruang air-uap terbuat dari baja tahan karat dan merupakan struktur las tunggal, namun terpisah secara fungsional. Katup memungkinkan Anda untuk mematikan aliran uap ke dalam ruang sterilisasi saat memuat, mensterilkan, dan mengeluarkan alat sterilisasi, sehingga menjaga tekanan operasi dalam ruang air-uap untuk siklus sterilisasi berikutnya. Penutupnya, melalui paking karet melingkar dan enam klem sekrup, menciptakan kekencangan yang diperlukan pada ruang kerja. Casing berbentuk silinder yang ditopang oleh tiga kaki berfungsi untuk mengurangi kehilangan panas dan bersifat elemen penahan beban desain. Air dituangkan ke dalam ruang air-uap melalui corong. Terdapat kaca indikator air untuk memantau ketinggian air. Air dipanaskan oleh pemanas listrik yang dipasang di bagian bawah ruang air-uap. Pengeringan bahan yang disterilkan terjadi dalam ruang hampa, yang dibuat menggunakan injektor. Setelah penyuntikan berakhir, kondisi normal dipulihkan di ruang sterilisasi. tekanan atmosfir udara murni disuplai ke dalamnya melalui filter. Indikator tekanan di dalam ruang sterilisasi adalah pengukur tekanan-vakum. Kondensat dikeluarkan melalui katup, dan ruang sterilisasi juga dibersihkan secara berkala dengan uap selama proses sterilisasi. Alat sterilisasi dinyalakan dengan memutar kenop saklar, dan lampu sinyal “Daya” menyala. Jika ada ketinggian air di ruang air-uap, pemanas listrik dihidupkan. Untuk melindungi pemanas listrik agar tidak terbakar jika ketinggian air turun di ruang air-uap di bawah minimum, khusus alat yang secara otomatis mematikan pemanas listrik. Elemen sensitif perangkat ini adalah sensor ketinggian air. Penurunan ketinggian air di bawah batas minimum ditandai dengan aktifnya lampu sinyal “Tidak ada air”. Alat sterilisasi memiliki perangkat untuk menjaga tekanan pengoperasian secara otomatis. Tanggal Kunci perangkat ini adalah pengukur tekanan kontak listrik, panah kontak bergerak yang dipasang pada tanda skala yang sesuai dengan batas perubahan tekanan operasi yang diizinkan. Alat sterilisasi ini memiliki katup pengaman yang disesuaikan dengan tekanan uap 0,23±0,26 MPa (2,3±2,6 kg/cm). Untuk menghubungkan landasan pelindung Terdapat baut khusus pada panel listrik dan casing alat sterilisasi. Hanya personel terlatih khusus yang diperbolehkan bekerja dengan autoklaf.

Cara menggunakan autoklaf

Nyalakan sakelar dan lampu peringatan akan menyala.

Ketika tekanan uap dalam ruang air-uap mencapai 0,11 MPa (1,1 kg/cm), buka katup keluar 1/2 putaran. Dalam hal ini, tekanan uap dalam ruang sterilisasi harus berada dalam kisaran (0,01-0,02) MPa (0,1-0,2 kg/cm). Keluarnya udara dari ruang sterilisasi harus dilanjutkan selama 10 menit. Tutup katup pada akhir pembersihan dan bawa tekanan dalam ruang sterilisasi ke pembacaan yang sesuai dengan mode sterilisasi. Ketika tekanan operasi yang disetel tercapai, yang bertepatan dengan yang pertama mati otomatis pemanas listrik, tandai waktu mulai sterilisasi. Sterilisasi dalam alat sterilisasi dilakukan dengan uap air jenuh pada suhu (132 ± 2)°C dan tekanan (2 ± 0,02) atm. dalam waktu (20±2) menit; pada suhu (120±2) °C, tekanan (1,1±0,02) atm. selama (45±3) menit. Pada awal sterilisasi, disarankan untuk membuka katup 1-2 kali dalam waktu 30 detik. Hal ini akan menggantikan kondensat yang terakumulasi di ruang sterilisasi dan memberikan kontribusi yang lebih baik penetrasi uap ke dalam ketebalan bahan yang disterilkan. Setelah Selama sterilisasi, tutup katup, keluarkan uap dan kondensat dari ruang sterilisasi melalui katup, biarkan tekanan di dalam ruang sterilisasi dalam kisaran (0,01-0,02) MPa (0,1-0,2) kgf/cm3 sesuai dengan tekanan-vakum meteran dan keringkan bahan yang sudah disterilkan.

Metode mempersiapkan tangan untuk operasi

Kebersihan tangan merupakan cara penting untuk mencegah infeksi kontak. Ahli bedah, ruang operasi, dan perawat ruang ganti harus senantiasa menjaga kebersihan tangan serta merawat kulit dan kuku. Jumlah mikroorganisme terbesar terakumulasi di bawah kuku, di area lipatan kuku, dan di retakan kulit. Perawatan tangan meliputi mencegah kulit pecah-pecah, memotong kuku (harus pendek), dan menghilangkan kuku gantung. Pekerjaan yang berhubungan dengan kontaminasi dan infeksi pada kulit tangan harus dilakukan dengan sarung tangan. Perawatan yang tepat tangan harus dianggap sebagai tahapan dalam mempersiapkannya untuk operasi. Perawatan tangan dengan cara apapun dimulai dengan pembersihan mekanis.

Metode klasik perawatan tangan termasuk metode Furbringer., Alfeld, Spasokukotsky-Kochergin, yang sekarang praktis tidak digunakan karena ukurannya yang besar dan durasinya.

Metode Furbringer dan Alfeld dan lainnya termasuk mencuci tangan terlebih dahulu dengan sikat dan sabun steril. Sikat dipegang dengan tangan kanan, disabuni dengan sabun, kemudian sabun diletakkan pada permukaan belakang sikat dan dipegang dengan telapak tangan tempat sikat berada. Sikat atau kain harus digerakkan searah dari jari ke lengan bawah, tangan diletakkan di atas lengan bawah, dan aliran air hangat yang mengalir diarahkan dari jari ke siku. Dalam posisi ini, mereka memulai dan mengakhiri mencuci dengan sikat, mencegah air mengalir dari siku ke tangan. Pertama, basuhlah permukaan telapak tangan masing-masing jari, kemudian permukaan punggung dan dasar kuku, sela-sela jari tangan kiri, lalu tangan kanan, lalu telapak tangan dan punggung tangan kiri dan kanan, dan terakhir lengan bawah hingga tepinya. sepertiga bagian atas dan tengah mereka. Busa sabun selalu dicuci dengan air mengalir, dan sikat disabuni sesuai kebutuhan. Selama seluruh proses pencucian, tangan tidak boleh menyentuh keran, aliran air dan suhunya disesuaikan sebelum dicuci. Setelah selesai mencuci, letakkan sikat dan sabun di atas meja, bilas tangan dengan air dan, seperti sebelumnya, pegang tangan setinggi dada, keringkan kulit dengan kain kasa atau handuk steril, tanpa menyentuh area kulit yang belum dicuci. Selanjutnya (tergantung metode pengobatannya), jari tangan, tangan, dan sepertiga bagian bawah lengan bawah dilap dengan serbet yang dibasahi dengan alkohol, larutan Zerigel atau antiseptik lainnya; menurut metode Alfeld, tangan dilap dengan alkohol 96% untuk 5 menit; menurut metode Furbringer, setelah pembersihan mekanis, tangan diseka selama 1 menit dengan larutan merkuri klorida 1:1000 dan kemudian dengan alkohol 96% selama 3 menit, ujung dasar kuku dirawat dengan 5% tingtur yodium.

Metode Spasokukotsky-Kochergin menyediakan pembersihan mekanis tangan dengan larutan amonia 0,5%. Tangan dicuci dalam dua baskom selama 3 menit dengan serbet, lakukan gerakan secara berurutan seperti saat mencuci dengan kuas, dimulai dari jari-jari tangan kiri. Di baskom pertama, tangan dibasuh sampai siku, di baskom kedua - sampai batas sepertiga atas dan tengah lengan bawah. Setelah dicuci, tangan dibilas dengan larutan amonia dan tangan diangkat sehingga tetesan air mengalir sampai ke siku. Mulai saat ini, tangan selalu berada di atas lengan bawah. Kulit tangan dikeringkan dengan serbet steril: mula-mula kedua tangan (serbet ini dilempar), kemudian berturut-turut sepertiga bagian bawah dan tengah lengan bawah. Desinfeksi kulit dengan tisu yang dibasahi alkohol 96%, rawat tangan hingga sepertiga bagian bawah lengan dua kali selama 2,5 menit, lalu ujung jari, lipatan kuku; dasar kuku dan lipatan kulit jari dilumasi dengan larutan alkohol yodium 5%.

Saat ini, cara mencuci tangan yang paling umum adalah cara merawat tangan dengan pervomur (obat C-4), hibitan (klorheksidin), dll.

Perawatan tangan pertama(obat C-4). Pervomur adalah campuran yang terdiri dari asam format dan hidrogen peroksida. Pertama, siapkan larutan basa dengan perbandingan 81 ml asam format 85% dan 171 ml larutan hidrogen peroksida 33%, yang dicampur dalam wadah dengan ground stopper dan dimasukkan ke dalam lemari es selama 2 jam. Interaksi asam format dan hidrogen peroksida menghasilkan asam format yang memiliki efek bakterisidal yang kuat. Dari jumlah larutan utama yang ditentukan, Anda dapat menyiapkan 10 liter larutan kerja Pervomur dengan mencampurkannya dengan air suling - larutan kerja dapat digunakan. Saat menyiapkan larutan, perlu menggunakan sarung tangan karet untuk mencegah luka bakar akibat larutan pekat asam format atau hidrogen peroksida. Perawatan tangan melibatkan mencuci terlebih dahulu selama 1 menit dengan air mengalir dan sabun. Kemudian tangan dan lengan bawah setinggi sepertiga tengah dicuci dengan serbet dalam baskom berisi larutan pervomur selama 1 menit dan dikeringkan dengan serbet steril; 5 orang dapat melakukan perawatan tangan dalam satu baskom.

Perawatan tangan dengan klorheksidin bigluconate, yang tersedia dalam bentuk larutan air 20%. Untuk merawat tangan, siapkan larutan alkohol 0,5%: 500 ml alkohol 70% ditambahkan ke 12,5 ml larutan klorheksidin biglukonat 20%. Cuci tangan terlebih dahulu dengan air mengalir dan sabun, keringkan dengan tisu steril, lalu lap dengan kain kasa yang dibasahi larutan yang sudah disiapkan selama 2-3 menit.

Metode perawatan tangan yang dipercepat digunakan dalam praktik rawat jalan atau dalam kasus darurat. Untuk mendisinfeksi tangan dengan cepat, gunakan sediaan pembentuk film Cerigel, yang memiliki efek bakterisida yang kuat. Ini mengandung polivinilbutyrol dan 96% etanol. Tangan dicuci bersih dengan sabun dan air terkuras. Tuangkan 3-4 ml cerigel ke telapak tangan dan basahi hingga bersih.Ini adalah jari-jari, bantalan dan lipatan kuku, tangan dan bagian bawah lengan bawah. Jari-jari yang setengah tertekuk dibiarkan dalam keadaan rileks selama 2-3 menit hingga lapisan cerigel terbentuk di kulit. Film yang dihasilkan memiliki sifat pelindung dan bakterisida, pada akhir operasi mudah dihilangkan dengan bola kain kasa yang dibasahi dengan alkohol.

Perawatan tangan di kondisi ekstrim dapat dilakukan dengan cara menggosok kulit dengan etil alkohol 96% selama 10 menit (metode Brun) atau selama 3 menit dengan larutan alkohol yodium 2%.

Perawatan tangan dengan perangkat khusus menggunakan ultrasound semakin meluas.

Perawatan tangan ahli bedah di luar klinik

Tenaga medis di bagian bedah dan ruang operasi harus melindungi tangan mereka dari kontaminasi. Jangan menyentuh bahan yang terkontaminasi (instrumen bekas, pembalut yang terinfeksi) dengan tangan yang tidak terlindungi. Tangan Anda tidak boleh retak, terpotong, tergores atau kapalan. Kuku harus dipotong pendek dan bersih. Tidak perlu memotong kutikula untuk mencegah terbentuknya kantong tempat infeksi menumpuk. Dilarang keras menutupi kuku Anda dengan pernis. Kulit tangan Anda harus sehat, terawat, dilembabkan dengan krim inert atau campuran alkohol-gliserin.

Persiapan bidang bedah

Persiapan awal di tempat sayatan akan dibuat - bidang bedah - dimulai pada malam sebelum operasi dan mencakup mandi higienis umum, penggantian linen, dan pencukuran rambut kering langsung di lokasi bedah. Setelah mencukur rambut, kulit dilap dengan alkohol.

Saat memproses bidang bedah langsung di ruang operasi, prinsip-prinsip berikut harus dipatuhi:

Perawatan harus jauh lebih luas daripada zona akses operasional;

Urutan pemrosesannya adalah “dari pusat ke pinggiran”;

Perawatan berulang selama operasi (sebelum dan sebelum penjahitan);

Daerah yang paling terkontaminasi ditangani terakhir.

Sebelum operasi di meja operasi, bidang bedah dilumasi secara luas dengan larutan alkohol yodium 5%. Lokasi bedah segera diisolasi dengan bahan steril dan dilumasi lagi dengan larutan alkohol 5% yodium. Sebelum diaplikasikan dan setelah dijahit, kulit dirawat dengan larutan alkohol yang sama. Metode ini dikenal dengan nama metode Grossikh-Filonchikov. Dalam kasus hipersensitivitas terhadap yodium, kulit pasien dewasa dan anak-anak dirawat dengan larutan alkohol 1% berwarna hijau cemerlang (metode Baccala).

Untuk merawat bidang bedah, gunakan larutan alkohol 0,5% hibitan (klorheksidin bigluconate), serta untuk merawat tangan ahli bedah sebelum operasi. Saat ini perawatan bidang bedah dengan Pervomur (3 kali, selama 1,5 menit) sudah meluas. Dalam kasus pembedahan darurat, persiapan lapangan bedah terdiri dari mencukur rambut, merawat kulit dengan larutan amonia 0,5%, dan kemudian menggunakan salah satu metode (diikuti oleh Grossikha-Filonchikov, Bakkal, dll.).

Struktur blok operasi

Blok operasi – subdivisi struktural rumah sakit, terdiri dari ruang operasi dan kompleks bangunan tambahan. Unit operasi harus ditempatkan di ruangan terpisah atau bagian rumah, dihubungkan oleh koridor dengan bagian bedah, atau terletak di lantai terpisah (tetapi bukan yang pertama) dari gedung bedah bertingkat. Ini memisahkan ruang operasi untuk melakukan operasi bersih dan operasi bernanah. Lebih tepat memiliki ruang terisolasi terpisah untuk departemen bedah bernanah blok operasi. Tempat utama ruang operasi: ruang operasi, ruang pra operasi, ruang presterilisasi, sterilisasi

Kompleks bangunan tambahan dan pendukung: kantor kepala perawat, material, ruang penyimpanan obat-obatan, ruang penyimpanan instrumen dan perlengkapan cadangan, ruang penyimpanan linen bersih, ruang penyimpanan linen kotor, ruang penyimpanan bahan biologi, ruang protokol, transfusiologis, fasilitas kebersihan, ruang makan ruang tamu,ruang pelayanan anestesiologi, ruang perawat nyonya rumah, ruang dukungan teknis, dll.

Blok operasi diisolasi dari departemen bedah oleh ruang depan khusus, paling sering ini adalah bagian dari koridor tempat unit operasi mode umum dibuka. Setiap orang yang memasuki ruang operasi harus memakai penutup sepatu dan linen steril. Personil yang tidak terlibat dalam operasi dilarang memasuki unit operasi. Untuk memastikan sterilitas di unit operasi, zona fungsional dan higienis khusus dipisahkan satu sama lain dengan “garis merah”.

1. Zona steril (sterilitas mutlak) menggabungkan ruang operasi dan ruang sterilisasi. Di lokasi zona ini, operasi dan sterilisasi instrumen dilakukan. Luas ruang operasi untuk satu meja operasi tidak boleh kurang dari 36 m2, untuk 2 meja operasi - tidak kurang dari 56 m2. Perlu diingat bahwa meskipun terdapat 2 meja operasi dalam satu ruang operasi, dilarang keras melakukan dua operasi secara bersamaan! Ketinggian ruang operasi tidak boleh kurang dari 3,5 m, dinding harus halus, berubin atau cat minyak, yang membuat pembersihan lebih mudah. Warna dinding sebaiknya menenangkan (dingin) dan tidak menimbulkan iritasi. Semua jenis perangkat pemanas harus dipasang di dinding (jenis perpindahan panas - konveksi). Rasio cahaya optimal adalah 2:3, namun pengurangan hingga 1:4 diperbolehkan. Penerangan umum ruang operasi adalah 300-500 lux (minimal 200 lux), penerangan luka akibat lampu tanpa bayangan minimal 3000-10000 lux. Kondisi iklim mikro di ruang operasi: suhu - 20-30 (di musim panas 19-20 ° C), kelembaban udara - 50-55%, kecepatan udara tidak lebih dari 0,1 m/s.

2. Zona rezim yang ketat (sterilitas relatif) mencakup ruangan seperti ruang pra operasi dan ruang pemeriksaan sanitasi, yang terdiri dari ruangan untuk personel membuka pakaian, fasilitas mandi, dan kabin untuk mengenakan pakaian steril. Ruangan-ruangan ini terletak secara berurutan dan staf keluar dari ruang ganti langsung melalui koridor menuju area pra-operasi. Area yang sama meliputi tempat penyimpanan instrumen dan perangkat bedah, peralatan anestesi dan obat-obatan, ruang transfusi darah, ruang tim jaga, perawat operasi senior, dan unit sanitasi untuk staf unit operasi.

3. Pada area terlarang terdapat area teknis yang menggabungkan tempat industri untuk menjamin pengoperasian unit operasi, dengan peralatan AC, instalasi vakum, instalasi suplai oksigen dan gas narkotika ke ruang operasi, juga terdapat gardu baterai untuk penerangan darurat, kamar gelap untuk pengembangan film sinar-X.

4. Di zona keamanan umum terdapat kantor manajer, seniorperawat, tempat pengolahan linen kotor, dll.

Mode operasi unit operasi menyediakan kunjungan terbatas, dan hanya peserta operasi yang boleh berada di area rezim steril: ahli bedah dan asistennya, perawat operasi, ahli anestesi dan anestesi, dan perawat untuk pembersihan rutin ruang operasi. Mahasiswa dan dokter peserta pelatihan diperbolehkan masuk ke zona steril. Pegawai unit operasi mengenakan pakaian khusus: gaun atau jaket dan celana panjang, yang warnanya berbeda dengan pakaian pegawai departemen lain.

Sterilitas unit operasi dipantau pemeriksaan bakteriologis secara berkala terhadap udara ruang operasi, pembersihan dinding, peralatan dan perangkat. Bahan untuk disemai dikumpulkan dua kali sebulan.

Kondisi steril di ruang operasi dicapai dengan mencegah masuknya mikroorganisme ke dalam ruang operasi dari ruangan lain dan penyebaran mikroorganisme di ruang operasi. Desain khusus unit operasi, penggunaan steril airlocks sebelum memasuki ruang operasi, mempersiapkan pasien untuk operasi(mencuci, mengganti linen, mencukur rambut di area bedah), mempersiapkan personel untuk operasi (wajib mengganti pakaian, menggunakan memanggil linen steril, memakai penutup sepatu, topi, masker, pengolahan tangan) secara signifikan membatasi penetrasi mikroorganisme ke dalam ruang operasi. Masker yang terbuat dari kain kasa harus memiliki 4-6 lapisan, sehingga dapat menahan 88-96% mikroorganisme. Sterilitas masker dan gaun dipertahankan selama 5-6 jam. Masker selulosa modern hanya efektif selama 1 jam.

Mikroorganisme di udara dan benda sangat jarang ditemukan dalam bentuk terisolasi, mereka terutama menempel pada partikel debu mikroskopis. Oleh karena itu, pembuangan debu secara hati-hati, serta mencegahnya memasuki ruang operasi, akan mengurangi tingkat kontaminasi mikroba.

Jenis pembersihan berikut disediakan di ruang operasi: pendahuluan, rutin, pasca operasi, akhir dan umum. Sebelum memulai pengoperasian, bersihkan semua benda, perangkat, kusen jendela dengan kain lembab, hilangkan debu yang menempel semalaman (pra-pembersihan). Selama operasi, benda yang jatuh terus-menerus dikeluarkan. bola, serbet, peralatan, dll. di lantai ( pembersihan saat ini). Di sela-sela operasi, saat pasien dikeluarkan dari ruang operasi, linen, serbet, instrumen dilepas, kain lembab dibasahi dengan larutan antiseptik, meja operasi dilap dan ditutup dengan sprei, lantai diseka. dengan kain lembab (pembersihan pasca operasi). Di penghujung hari kerja, mereka melakukan pembersihan akhir, termasuk pembersihan basah dengan menyeka langit-langit, dinding, kusen jendela, seluruh benda dan peralatan, lantai menggunakan larutan disinfektan: larutan hidrogen peroksida 1-3% dengan deterjen sintetis , larutan dezoxon dan lain-lain, dilanjutkan dengan menyalakan lampu bakterisida. Pada akhir minggu, ruang operasi dibersihkan secara menyeluruh menggunakan larutan hidrogen peroksida 3-6% atau larutan kloramin B 1%.

Pembersihan dimulai dengan desinfeksi ruang operasi: langit-langit, dinding,lalu semua barang dan lantai disemprot dengan larutan disinfektan dihilangkan dengan menyeka. Setelah itu, pembersihan basah umum dilakukan dan agen bakterisida dimasukkan. lampu ultraviolet. Pembersihan umum juga dapat menjadi keadaan darurat jika ruang operasi terkontaminasi nanah, isi usus, atau setelah operasi pada pasien dengan infeksi anaerobik.

Untuk iradiasi udara dan benda di ruang operasi, gunakan lampu ultraviolet (UV) bakterisida seluler, dinding, langit-langit dengan daya berbeda, memiliki layar khusus yang melindungi dari paparan langsung sinar ultraviolet sinar. Lampu UV dapat beroperasi saat ruang operasi ditempati. Sebaiknya Ingatlah bahwa lampu bakterisida yang dipasang di dinding digantung pada ketinggian minimal 2 m dari lantai. Satu lampu bakterisida mensterilkan 30 m 3 udara dalam waktu 2 jam. Setiap lampu menciptakan zona sterilitas dengan diameter 2-3 m di sekelilingnya.Setelah 3 jam pengoperasian lampu UV, jumlah mikroba di udara berkurang 50-80%, jumlah komplikasi infeksi berkurang 3- 3,5 kali.

Pencegahan pencemaran udara di ruang operasi dilakukan dengan sistem ventilasi mekanis dengan memasok udara dari jalan atau dengan mensirkulasikannya kembali. Memasok ventilasi menciptakan udara yang dipaksa melalui filter yang terletak di bawah langit-langit ke dalam ruang operasi. Mikroba yang menempel pada debu dikeluarkan dari debu yang menempel pada filter. Udara keluar dari ruang operasi melalui celah alami dan melalui bukaan yang terletak di dekat lantai. Arah aliran udara ini menghindari penetrasi udara terkontaminasi dari ruangan yang berdekatan dengan ruang operasi, termasuk bagian bedah. Dengan tidak adanya sistem terpusat untuk memurnikan udara dari debu dan kuman, alat pembersih udara bergerak khusus dapat digunakan. Dalam waktu 15 menit pengoperasian perangkat, jumlah mikroba di ruang operasi berkurang 7-10 kali lipat. Nilai tukar udara di ruang operasi selama menggunakan ventilasi pasif-aktif minimal harus 6-8, dan dengan AC – 10.

Untuk memenuhi kondisi aseptik, unit operasi umum harus memiliki dua kompartemen terisolasi (tidak dapat ditembus): 1) aseptik, bersih; 2) septik, bernanah dengan zona ruang interior dan memisahkan tempat tambahan untuk masing-masingnya. Semua ruangan unit operasi, tergantung pada tingkat kepatuhan terhadap aturan asepsis dan pengendalian infeksi nosokomial, secara fungsional dibagi menjadi empat zona: steril, rezim ketat, rezim terbatas, dan rezim rumah sakit umum.

Utas di blok operasi dibagi menjadi " steril"untuk ahli bedah dan perawat operasi, membersihkan– untuk pasien, ahli anestesi, staf teknis dan tidak boleh tumpang tindih.

Rezim sanitasi dan higienis dari institusi bedah ditujukan untuk menghilangkan pengaruh negatif faktor lingkungan rumah sakit pada pasien dan staf, memberikan pasien kenyamanan higienis, somatik dan mental yang lengkap, dan staf - kondisi optimal bekerja. Rezim sanitasi dan higienis mengatur kepatuhan terhadap standar kepadatan bangsal rumah sakit, memastikan iklim mikro yang optimal, komposisi kimia dan bakteriologis yang tepat dari lingkungan udara, mode ventilasi dan penyiaran tempat, pasokan berkualitas baik air minum, tepat waktu dan pembuangan menyeluruh dan netralisasi limbah, memberikan pasien diet yang rasional dan seimbang, pembersihan tempat, mencuci dan mengganti linen, mematuhi aturan kebersihan pribadi, dll.

Rezim anti-epidemi di departemen bedah ditujukan untuk mencegah terjadinya dan penyebaran infeksi nosokomial. Ketentuan pokok rezim anti epidemi diatur dengan Surat Perintah No. 720 (31/07/1978).

Jenis pembersihan

Jenis pembersihan berikut di unit operasi dibedakan:

Pendahuluan (sebelum mulai bekerja);

Saat ini (selama masa kerja);

Final (di akhir hari kerja);

Umum (seminggu sekali).

Pembersihan basah tempat (mencuci lantai, menyeka furnitur, peralatan) dilakukan setidaknya dua kali sehari dengan menggunakan deterjen dan desinfektan, menyeka kaca setidaknya sebulan sekali. Pembersihan umum bagian bangsal dilakukan minimal sebulan sekali dengan pencucian menyeluruh pada dinding, lantai, peralatan, menyeka furnitur. Pembersihan umum (pencucian dan desinfeksi) unit operasi dan ruang ganti dilakukan minimal seminggu sekali. Setelah dibersihkan, ruangan dengan sistem sterilitas khusus diperlakukan dengan lampu bakterisida stasioner atau bergerak dengan kecepatan daya 1 W per 1 m2 ruangan.

Rute utama infeksi luka di ruang operasi adalah kontak(sekitar 90% kasus), hanya 10% kasus infeksi terjadi melalui udara. Setiap anggota tim bedah, apapun itu Pelatihan khusus sebelum operasi, melepaskan hingga 1500 mikroorganisme ke udara sekitar per menit. Dalam 1-1,5 jam kerja satu tim bedah, polusi udara bakteri di ruang operasi meningkat 100%. Jumlah mikroorganisme yang diizinkan dalam 1 m 3 udara di ruang operasi sebelum mulai bekerja tidak boleh melebihi 500-600, selama operasi - 1000-1200, setelah operasi berakhir - 1500-2000 per 1 m 3, dengan ketentuan bahwa tidak ada mikroorganisme patogen di udara. Tingkat ini dapat dicapai dengan bantuan perangkat sistem ventilasi khusus, mode pengoperasian dan pembersihan ruang operasi, desinfeksi udara dan benda. Untuk mencegah infeksi kontak, perlu dilakukan kemandulan segala sesuatu yang berhubungan dengan luka. Hal ini dicapai dengan mensterilkan linen bedah, balutan dan jahitan, sarung tangan, instrumen, serta merawat tangan ahli bedah dan bidang bedah. Sterilisasi bahan jahitan bertujuan untuk mencegah infeksi luka kontak dan implantasi.

Metode transportasi pasien ke ruang operasi

Setelah perawatan higienis pasien, evakuasi isi lambung, persiapan lapangan bedah (mencukur), pencabutan gigi palsu, pemeriksaan, konsultasi dokter spesialis terkait, koreksi obat, enema (namun harus diingat pada kasus penyakit bedah akut organ rongga perut pembersihan enema merupakan kontraindikasi), mengganti pakaian rumah sakit yang bersih, melakukan premedikasi pasien dengan didampingi oleh paramedis tenaga medis diangkut dalam posisi horizontal ke ruang operasi.

Aturan untuk memakai linen bedah

Tim operasi, setelah mengenakan perban kasa empat lapis di ruang pra operasi dan merawat tangan dengan salah satu metode yang diterima, mengenakan linen operasi steril, sementara perawat operasi, didampingi oleh perawat dari ruang pra operasi, pergi ke ruang operasi, dimana perawat dengan hati-hati membuka tutup wadah steril linen bedah(jubah). Perawat operasi dengan hati-hati mengeluarkan jubah yang terlipat dari kotak dan membuka lipatannya dengan tangan terentang, memastikan permukaan luar jubah tidak menyentuh benda di dekatnya dan pakaian saudari. Untuk melakukan ini, perawat operasi mengenakan lengan bajunya dan mengenakan jubah di depannya. Perawat, yang saat ini berada di belakang perawat operasi dan membantu perawat operasi berpakaian, menarik tepi jubah dan mengikat pita. Perawat operasi kemudian mengambil ikat pinggang dari saku gaun yang dikenakannya dan memegangnya pada jarak 30-40 cm dari dirinya sehingga ujung ikat pinggang menggantung. Selanjutnya perawat dengan hati-hati mengambil ujung ikat pinggang dan mengikatnya di bagian belakang. Saudari (jika jubahnya memiliki manset) mengikat sendiri pita di lengan jubahnya. Selanjutnya perawat operasi mengenakan sarung tangan steril sehingga ujung sarung tangan berada di atas gaun steril, mencuci sisa bedak dengan larutan steril dan mulai menyiapkan meja instrumen.

Diproduksi dalam tas logam atau tas linen dua lapis. Metode sterilisasi - autoklaf (uap panas di bawah tekanan). Mode sterilisasi:

Pada 132 °C (±2 °C) di bawah tekanan 2 atm. (0,2 MPa) selama 20 menit;

Pada 120 °C (±2 °C) di bawah tekanan 1,1 atm. (0,11 MPa) selama 45 menit.

Penyimpanan dressing dan linen bedah

Terjadi dalam wadah tertutup steril atau kantong linen dua lapis. Sterilitas dalam tas biasa dan tas kanvas dua lapis dipertahankan hingga 3 hari, dan dalam tas dengan filter - hingga 20 hari atau lebih (tergantung jenis tas). Lokasi penyimpanan bahan steril dijelaskan pada bagian “Penyimpanan Instrumen Bedah Steril”.

Memantau sterilitas balutan dan linen bedah Metode langsung untuk memantau sterilitas

Kultur untuk sterilitas bahan pembalut. Perban, bola kapas, tisu kasa, turundas, dll. dipilih dari tempat yang berbeda bix dengan pinset steril. Produk kecil dicelupkan seluruhnya ke dalam tabung reaksi dengan media nutrisi. Potongan perban (bagian dalam) dan kain kasa besar dipotong dengan menggunakan gunting steril dan direndam dalam tabung reaksi yang berisi media nutrisi. Untuk setiap jenis bahan pembalut digunakan dua tabung masing-masing media.

Kultur sterilitas linen bedah. Dengan menggunakan gunting yang disterilkan dan flambé (direndam dalam alkohol dan ditahan melalui api pembakar), potongan kecil jaringan (dasi, jahitan internal, dll.) dipotong dari linen bedah menggunakan pinset dan direndam dalam tabung reaksi (labu) dengan media nutrisi, jika mungkin, tidak menyentuh dinding tabung reaksi (labu).

Metode pengendalian sterilitas tidak langsung- Lihat di atas.

4.4. Sterilisasi bahan jahitan

Ada bahan jahitan yang dapat diserap dan tidak dapat diserap. Benang serapan alami adalah benang berbahan catgut, ada juga benang serapan sintetik berbahan dexon, vicryl, occilon, dan lain-lain, dengan waktu serapan yang berbeda-beda. Benang alami yang tidak dapat diserap termasuk benang yang terbuat dari sutera alam (saat ini praktis tidak digunakan), benang sintetis termasuk benang yang terbuat dari nilon, lavsan, dacron, fluorlon, dll. Bahan jahitan yang paling dikenal disterilkan dengan radiasi γ di pabrik . Diproduksi steril dalam kemasan atau ampul khusus. Simpan pada suhu kamar dan gunakan sesuai kebutuhan. Bahan jahitan logam (kawat, staples) disterilkan dengan autoklaf (suhu 132°C, tekanan 2,0 atm, waktu sterilisasi 30 menit). Bahan jahitan sintetis, khususnya nilon, disterilkan sesuai dengan rekomendasi metodologi yang ditandatangani oleh kepala Direktorat Epidemiologi Utama Kementerian Kesehatan Uni Soviet M.I. Narkevich 19 Juli 1990 (No. 15-6/34).

Rekomendasi metodologis untuk sterilisasi bahan jahitan pengikat di institusi medis (Ekstrak)

1. Ketentuan Umum.

1.2. Pedoman ditujukan untuk personel institusi medis yang terlibat dalam persiapan bahan jahitan pengikat untuk prosedur bedah, serta spesialis di stasiun sanitasi-epidemiologi dan desinfeksi.

Benang sutra bedah yang dipilin, tidak disterilkan sesuai dengan GOST 392-82;

benang bedah nilon bengkok tidak steril TU 17 RSFSR 62-2040-79;

Tali bedah poliester tidak steril TU 17 RSFSR 44-9762-85. Berikutnya: bahan jahitan ligatur.

1.4. Bahan jahitan pengikat tidak dikenakan pembersihan pra-sterilisasi di institusi medis.

1.5. Bahan jahitan pengikat disiapkan untuk sterilisasi dalam bentuk jalinan, gelendong, luka pada gulungan, batang kaca, dll.

1.6. Sterilisasi bahan jahitan pengikat dilakukan dengan menggunakan uap atau, dalam keadaan darurat, metode kimia (larutan pervomur 4,8%) yang tidak berdampak negatif pada sifat fisik, mekanik, dan operasional benang.

1.7. Bahan jahitan pengikat steril tidak boleh disimpan dalam etil alkohol, karena etil alkohol bukan bahan steril.

Jenis dressing dan linen bedah

Bahan pembalut antara lain bola kasa, tampon, serbet, perban, turundas, kapas kasa. Bahan pembalut biasanya disiapkan segera sebelum sterilisasi, menggunakan teknik khusus untuk mencegah setiap helai kain kasa berjumbai. Untuk memudahkan penghitungan, bola-bola ditempatkan sebanyak 50-100 buah di dalam kain kasa, serbet dan tampon diikat menjadi 10 buah. Bahan pembalut tidak digunakan kembali, setelah digunakan dimusnahkan.

Linen operasi meliputi gaun bedah, seprai, handuk, dan linen. Bahan pembuatannya adalah kain katun. Linen bedah yang dapat digunakan kembali dicuci setelah digunakan, dan terpisah dari jenis linen lainnya.

Sterilisasi

Bahan ganti dan linen disterilkan dengan autoklaf dalam kondisi standar. Sebelum sterilisasi, dressing dan linen ditempatkan dalam wadah. Ada tiga jenis utama gaya bix: gaya universal, bertarget, dan spesifik.

Gaya universal. Biasanya digunakan saat bekerja di ruang ganti dan untuk operasi kecil. Bix secara konvensional dibagi menjadi beberapa sektor, yang masing-masing diisi dengan jenis bahan ganti atau linen tertentu: serbet ditempatkan di satu sektor, bola di sektor lain, tampon di sektor ketiga, dll.

Gaya yang ditargetkan. Dirancang untuk melakukan manipulasi, prosedur, dan operasi kecil yang khas. Misalnya penempatan untuk trakeostomi, kateterisasi vena subklavia, anestesi epidural, dll. Semua instrumen, pembalut dan linen yang diperlukan untuk prosedur ditempatkan di dalam bix.

Jenis gaya. Biasanya digunakan di ruang operasi yang memerlukan bahan steril dalam jumlah besar. Dalam hal ini, misalnya, gaun bedah ditempatkan di satu wadah, seprai di wadah lain, serbet di wadah ketiga, dan seterusnya.

Bahan pembalut dalam jumlah kecil dalam kemasan yang telah mengalami sterilisasi radiasi digunakan. Ada juga set khusus linen bedah sekali pakai (gaun dan seprai) yang terbuat dari kain sintetis yang juga telah disterilkan secara radiasi.

Perawatan tangan ahli bedah

Membersihkan (mencuci) tangan ahli bedah merupakan prosedur yang sangat penting. Ada aturan tertentu cuci tangan.

Metode klasik perawatan tangan oleh Spasokukotsky-Kochergin, Alfeld, Furbringer dan lainnya hanya memiliki kepentingan sejarah; saat ini tidak digunakan.

Metode modern dalam merawat tangan ahli bedah

Perawatan tangan ahli bedah terdiri dari dua tahap: mencuci tangan dan paparan agen antiseptik.

Cuci tangan

Penggunaan metode modern melibatkan mencuci tangan awal dengan sabun atau deterjen cair (tanpa adanya kontaminasi rumah tangga pada tangan).

Dampak antiseptik

Antiseptik kimia yang digunakan untuk merawat tangan harus memiliki sifat sebagai berikut:

Memiliki efek antiseptik yang kuat;

Tidak berbahaya bagi kulit tangan dokter bedah;

Mudah diakses dan murah (karena digunakan dalam jumlah banyak).

Metode modern perawatan tangan tidak memerlukan penyamakan khusus (gunakan antiseptik pembentuk film atau antiseptik dengan unsur penyamakan).

Tangan dirawat dengan hati-hati mulai dari ujung jari hingga sepertiga bagian atas lengan bawah. Pada saat yang sama, urutan tertentu diikuti, yang didasarkan pada prinsip tidak menyentuh kulit dan benda yang kurang bersih dengan area tangan yang dirawat.

Utama sarana modern Perawatan tangan termasuk Pervomur, chlorhexidine, degmin (degmicide), Cerigel, AHD, Eurosept, dll.

Perawatan tangan pertama

Pervomur (diusulkan pada tahun 1967 oleh F.Yu. Rachinsky dan V.T. Ovsipyan) adalah campuran asam format, hidrogen peroksida dan air. Ketika komponen-komponen tersebut digabungkan, asam kinerja terbentuk - antiseptik kuat yang menyebabkan pembentukan film tertipis pada permukaan kulit, menutup pori-pori dan menghilangkan kebutuhan akan penyamakan. Gunakan larutan 2,4% yang sudah disiapkan ex temporo.

Metodologi: Pencucian tangan dilakukan dalam baskom selama 1 menit, setelah itu tangan dikeringkan dengan serbet steril. Keuntungan dari metode ini adalah kecepatannya. Kerugian: kemungkinan berkembangnya dermatitis di tangan ahli bedah.

Perawatan tangan dengan klorheksidin

Larutan klorheksidin alkohol 0,5% digunakan, yang menghilangkan kebutuhan paparan tambahan terhadap alkohol untuk tujuan penyamakan, serta pengeringan karena penguapan larutan alkohol yang cepat.

Metodologi: tangan dirawat dua kali dengan kapas yang dibasahi antiseptik selama 2-3 menit. Kerugian relatif dari metode ini adalah durasinya.

Pengobatan dengan degmin dan degmicide

Antiseptik ini termasuk dalam kelompok surfaktan (deterjen).

Metodologi: perawatan dilakukan di baskom selama 5-7 menit, setelah itu tangan dikeringkan dengan serbet steril. Kerugian dari metode ini adalah durasinya.

Perawatan dengan AHD, AHD-khusus, Eurosept

Prinsip aktif dari kombinasi antiseptik ini adalah etanol, ester asam lemak poliol, dan klorheksidin.

Metodologi: obat-obatan ada dalam botol khusus, yang ketika Anda menekan tuas khusus, dosis obat tertentu dituangkan ke tangan ahli bedah, dan ia menggosokkan larutan ke kulit tangannya selama 2-3 menit. Prosedur ini diulangi dua kali. Tidak perlu penyamakan atau pengeringan tambahan. Metode ini praktis bebas dari kekurangan, saat ini dianggap paling progresif dan tersebar luas.

Meskipun metode perawatan tangan sudah ada, saat ini Ahli bedah harus melakukan semua operasi dan manipulasi yang bersentuhan dengan darah pasien hanya dengan mengenakan sarung tangan steril!

Jika manipulasi kecil diperlukan atau dalam situasi kritis, sarung tangan steril dapat dipakai tanpa perawatan tangan terlebih dahulu. Saat melakukan operasi bedah rutin, hal ini tidak boleh dilakukan, karena kerusakan pada sarung tangan dapat menyebabkan infeksi pada luka bedah.

Perawatan bidang bedah

Perawatan sanitasi dan higienis dilakukan terlebih dahulu (mencuci di bak mandi atau pancuran, mengganti tempat tidur dan pakaian dalam). Pada hari operasi, rambut di area bekas operasi dicukur (cukur kering). Di meja operasi, bidang bedah dirawat dengan antiseptik kimia (sediaan organik yang mengandung yodium, klorheksidin, pervomur, AHD, film perekat steril). Pada saat yang sama, mereka mematuhinya aturan berikut:

Pemrosesan yang luas;

Urutannya adalah “dari pusat ke pinggiran”;

Daerah yang terkontaminasi ditangani terakhir;

Perawatan berulang selama operasi (aturan Filonchikov-Grossikh): perawatan kulit dilakukan sebelum pembatasan

pakaian dalam yang steril, segera sebelum sayatan, serta sebelum dan sesudah penjahitan kulit.

Aturan untuk mempersiapkan operasi

Selain mengetahui dasar-dasar membersihkan tangan ahli bedah, bidang bedah, mensterilkan instrumen, dll., perlu mengikuti serangkaian tindakan tertentu sebelum memulai operasi bedah apa pun. Biasanya persiapan pembedahan dilakukan sebagai berikut.

Perawat operasi adalah orang pertama yang mempersiapkan operasi. Dia berganti pakaian operasi khusus, mengenakan penutup sepatu, topi, dan masker. Kemudian di ruang pra operasi, dia membersihkan tangannya sesuai dengan salah satu cara di atas, setelah itu dia masuk ke ruang operasi, membuka tas berisi linen steril (menggunakan pedal kaki khusus untuk membuka tutup kotak) dan memakainya. gaun steril, sekaligus memasukkan kedua tangan ke dalam lengan baju, tanpa menyentuh benda asing baik dengan gaun maupun tangan, yang dapat mengakibatkan pelanggaran sterilitas. Setelah itu, perawat mengikat tali pada lengan jubah, dan petugas mengikat bagian belakang jubah, tangannya tidak steril, sehingga ia hanya dapat menyentuh. Permukaan dalam gaun dan bagiannya yang menempel di punggung saudarinya dan kemudian dianggap tidak steril.

Secara umum, selama seluruh operasi, pakaian perawat dan ahli bedah dianggap steril dari depan hingga pinggang. Tangan yang steril tidak boleh diangkat di atas bahu dan diturunkan di bawah pinggang, karena kemungkinan melanggar kemandulan karena gerakan yang ceroboh.

Setelah mengenakan pakaian steril, perawat mengenakan sarung tangan steril dan menyiapkan meja steril untuk melakukan intervensi: meja operasi kecil (atau besar) ditutup dengan empat lapis linen steril, kemudian instrumen dan pembalut steril yang diperlukan untuk operasi adalah diletakkan di atasnya dalam urutan tertentu.

Dokter bedah dan asistennya berganti pakaian dan merawat tangan mereka dengan cara yang sama. Setelah itu, salah satu dari mereka menerima dari tangan saudarinya sebuah alat panjang (biasanya tang) dengan serbet yang dibasahi dengan antiseptik, dan merawat area bedah, mengganti serbet dengan antiseptik beberapa kali. Perawat kemudian mendandani ahli bedah dan asistennya dengan pakaian steril, menutupi lengan steril mereka yang terentang dan mengikatkan tali di pergelangan tangan. Yang tertib mengikat gaun di bagian belakang.

Setelah mengenakan gaun steril, ahli bedah membatasi bidang bedah menjadi steril pakaian dalam bedah(seprai, seprai atau handuk), kencangkan dengan klip atau klip pakaian khusus. Perawat mengenakan sarung tangan steril di tangan ahli bedah. Sekali lagi, kulit dirawat dan sayatan dibuat, yaitu operasi bedah dimulai.

Metode pengendalian sterilitas

Segala tindakan yang berkaitan dengan pemrosesan dan sterilisasi instrumen, linen, dan hal-hal lain harus diawasi secara wajib. Mereka mengontrol efektivitas sterilisasi dan kualitas persiapan pra-sterilisasi.

Kontrol sterilitas

Metode pengendalian sterilitas dibagi menjadi langsung dan tidak langsung.

Metode langsung

Metode pengendalian sterilitas langsung - pemeriksaan bakteriologis: usap steril khusus dilewatkan pada instrumen steril (kulit tangan ahli bedah atau bidang bedah, linen bedah, dll.), setelah itu ditempatkan dalam tabung reaksi steril dan dikirim ke laboratorium bakteriologis, tempat inokulasi dilakukan keluar pada berbagai media nutrisi dan dengan demikian kontaminasi bakteri ditentukan.

Metode bakteriologis untuk mengendalikan sterilitas adalah yang paling akurat. Poin negatifnya adalah lamanya penelitian: hasil kultur baru siap setelah 3-5 hari, dan instrumen harus segera digunakan setelah sterilisasi. Oleh karena itu, penelitian bakteriologis dilakukan sesuai rencana dan berdasarkan hasilnya, kesalahan metodologis dalam pekerjaan tenaga medis atau cacat pada peralatan yang digunakan dinilai. Sesuai dengan standar yang ada, yang sedikit berbeda untuk jenis yang berbeda instrumen, pemeriksaan bakteriologis harus dilakukan setiap 7-10 hari sekali. Selain itu, penelitian serupa dilakukan 2 kali setahun di semua departemen rumah sakit oleh layanan sanitasi dan epidemiologi kabupaten dan kota.

Metode tidak langsung

Metode pengendalian tidak langsung digunakan terutama ketika metode termal sterilisasi. Dengan bantuan mereka, Anda dapat menentukan suhu di mana perawatan dilakukan, tanpa memberikan jawaban pasti atas pertanyaan tentang ada tidaknya mikroflora. Keuntungan metode tidak langsung adalah kecepatan memperoleh hasil dan kemungkinan penggunaannya pada setiap sterilisasi.

Saat diautoklaf, ampul (tabung reaksi) berisi bahan tepung yang memiliki titik leleh pada kisaran 110-120 ° C biasanya dimasukkan ke dalam bis. Setelah sterilisasi, saat membuka bix, perawat pertama-tama memperhatikan ampul ini: jika bahan sudah meleleh, maka bahan (alat) tersebut dianggap steril, tetapi jika tidak, pemanasannya tidak mencukupi dan bahan tersebut tidak dapat digunakan. , karena tidak steril. Untuk metode ini, asam benzoat (titik leleh 120 °C), resorsinol (titik leleh 119 °C), dan antipirin (titik leleh 110 °C) paling sering digunakan. Alih-alih ampul, Anda dapat menempatkan indikator suhu atau termometer maksimum di Bix, yang juga dapat digunakan untuk menentukan suhu selama pemrosesan.

Metode tidak langsung serupa digunakan untuk sterilisasi oven panas kering. Namun, zat dengan lebih banyak suhu tinggi leleh (asam askorbat - 190 °C, asam suksinat - 190 °C, tiourea - 180 °C), indikator suhu atau termometer lainnya.

Kontrol kualitas perawatan pra-sterilisasi

Untuk mengontrol kualitas perawatan pra-sterilisasi, bahan kimia digunakan untuk mendeteksi jejak darah yang tidak dicuci atau residu deterjen pada instrumen. Reagen biasanya berubah warna dengan adanya zat yang sesuai (darah, deterjen alkali). Metode tersebut digunakan setelah perawatan sebelum sterilisasi.

Untuk mendeteksi apa yang disebut darah gaib, tes benzidine paling sering digunakan.

Untuk mendeteksi jejak deterjen digunakan indikator asam basa, yang paling umum adalah uji fenolftalein.

Pencegahan infeksi implantasi

Implantasi adalah memasukkan bahan dan perangkat asing buatan ke dalam tubuh pasien untuk tujuan terapeutik tertentu.

Fitur mencegah infeksi implantasi

Pencegahan infeksi implantasi - memastikan sterilitas yang ketat dari semua benda yang dimasukkan ke dalam tubuh pasien. Berbeda dengan jalur infeksi kontak, dengan implantasi, hampir 100% penularan terjadi. Tetap berada di dalam tubuh pasien, di mana terdapat kondisi yang menguntungkan (suhu, kelembaban, nutrisi), mikroorganisme tidak mati dalam waktu lama dan seringkali mulai berkembang biak sehingga menyebabkan nanah. Sekaligus dimasukkan ke dalam tubuh lembaga asing selanjutnya mempertahankan proses inflamasi untuk waktu yang lama. Dalam beberapa kasus, terjadi enkapsulasi koloni mikroorganisme yang tidak mati dan dapat menjadi sumber berjangkitnya proses purulen dalam beberapa bulan atau tahun. Oleh karena itu, setiap organ yang ditanamkan kemungkinan merupakan sumber infeksi yang tidak aktif.

Sumber infeksi implantasi

Apa yang “ditinggalkan” oleh ahli bedah di tubuh pasien? Pertama-tama, bahan jahitannya. Hampir tidak ada intervensi yang dapat dilakukan tanpa hal ini. Rata-rata, selama operasi perut, dokter bedah memasang sekitar 50-100 jahitan.

Kemungkinan sumber infeksi implantasi adalah drainase - tabung khusus yang dirancang untuk keluarnya cairan, lebih jarang udara (drainase pleura) atau dimaksudkan untuk pemberian obat (kateter). Mengingat jalur penyebaran infeksi ini, bahkan terdapat konsep “sepsis kateter” (sepsis adalah penyakit menular umum yang parah, lihat Bab 12).

Selain bahan jahitan dan drainase, tubuh pasien juga mengandung katup jantung prostetik, pembuluh darah, sendi, dll, berbagai struktur logam (staples, staples dari alat jahitan, sekrup, jarum rajut, sekrup dan pelat untuk osteosintesis), perangkat khusus ( cava- filter, koil, stent, dll.), jaring sintetis, homofascia, dan terkadang organ transplantasi.

Semua implan tentunya harus steril. Metode sterilisasi tergantung pada bahan pembuatannya. Banyak prostesis memiliki desain yang rumit dan ketat aturan khusus sterilisasi. Meskipun saluran pembuangan karet dan kateter dapat disterilkan dalam autoklaf atau dengan cara direbus, beberapa produk plastik, serta bahan lain, harus disterilkan menggunakan metode kimia(dalam larutan antiseptik atau alat sterilisasi gas).

Pada saat yang sama, sterilisasi pabrik dengan sinar- kini diakui sebagai metode utama, paling andal, dan nyaman.

Kemungkinan sumber utama infeksi implantasi adalah bahan jahitan yang terus-menerus digunakan oleh ahli bedah.

Sterilisasi bahan jahitan

Jenis bahan jahitan

Bahan jahitannya heterogen, karena fungsinya yang berbeda. Dalam satu kasus, kekuatan benang adalah yang paling penting, dalam kasus lain - resorpsinya seiring waktu, dalam kasus ketiga - kelembaman dalam kaitannya dengan jaringan di sekitarnya, dll. Selama operasi, dokter bedah memilih jenis benang yang paling cocok untuk setiap jahitan tertentu. Jenis bahan jahitannya cukup beragam.

Bahan jahitan yang berasal dari alam dan buatan

Bahan jahitan yang berasal dari alam antara lain sutra, benang katun dan catgut. Asal usul dua spesies pertama sudah diketahui. Catgut terbuat dari lapisan submukosa usus besar. ternak. Bahan jahitan asal buatan saat ini diwakili oleh sejumlah besar benang yang dibuat dari bahan kimia sintetis: nilon, lavsan, fluorolone, poliester, dacron, dll.

Bahan jahitan yang dapat diserap dan tidak dapat diserap

Jahitan yang dapat diserap digunakan untuk menjahit jaringan yang mengalami penyembuhan cepat jika kekuatan mekanik yang tinggi tidak diperlukan. Bahan ini digunakan untuk menjahit otot, serat, dan selaput lendir saluran cerna, saluran empedu, dan saluran kemih. Dalam kasus terakhir, penerapan jahitan yang dapat diserap menghindari pembentukan batu karena pengendapan garam pada pengikat. Contoh klasik dari bahan jahitan yang dapat diserap adalah catgut. Benang catgut terserap sempurna di dalam tubuh setelah 2-3 minggu. Perpanjangan waktu resorpsi, serta peningkatan kekuatan catgut, dicapai dengan impregnasi benang dengan logam (catgut berlapis krom, lebih jarang - catgut perak), dalam hal ini waktu resorpsi meningkat menjadi 1-2 bulan .

Bahan sintetis yang dapat diserap antara lain dexon, vicryl, oxylon. Waktu resorpsinya kira-kira sama dengan catgut berlapis krom, namun kekuatannya meningkat, sehingga memungkinkan penggunaan benang yang lebih tipis.

Semua benang lainnya (sutra, nilon, lavsan, poliester, fluor, dll.) disebut tidak dapat diserap - benang tersebut tetap berada di tubuh pasien seumur hidup (kecuali jahitan kulit yang dapat dilepas).

Bahan jahitan dengan struktur benang berbeda

Ada bahan jahitan yang dikepang dan dipelintir. Anyaman lebih sulit dibuat, namun lebih tahan lama. Kemajuan ilmu kimia akhir-akhir ini membuka kemungkinan untuk digunakannya benang berbentuk monofilamen yang memiliki kekuatan mekanik tinggi dengan diameter kecil. Monofilamen digunakan dalam bedah mikro, bedah kosmetik, dan operasi pada jantung dan pembuluh darah.

Bahan jahitan traumatis dan atraumatik

Selama bertahun-tahun, selama operasi pembedahan, perawat operasi, segera sebelum menjahit, memasukkan benang yang sesuai ke dalam lubang jarum bedah yang dapat dilepas. Bahan jahitan seperti itu saat ini disebut traumatis.

Dalam beberapa dekade terakhir, bahan jahitan atraumatik telah tersebar luas. Di pabrik, benang terhubung erat ke jarum dan dimaksudkan untuk menerapkan satu jahitan. Keuntungan utama dari bahan jahitan atraumatik adalah perkiraan kesesuaian diameter benang dengan diameter jarum (saat menggunakan bahan traumatis, ketebalan benang jauh lebih kecil daripada diameter lubang jarum), sehingga, benang hampir seluruhnya menutupi cacat pada jaringan setelah melewati jarum. Dalam hal ini, bahan jahitan atraumatiklah yang harus digunakan untuk jahitan vaskular dan kosmetik. Dengan mempertimbangkan juga ketajaman jarum sekali pakai dan kemudahan penggunaan, harus diasumsikan bahwa dalam waktu dekat bahan jahitan atraumatik akan secara bertahap menggantikan bahan jahitan traumatis.

Ketebalan benang

Untuk kemudahan penggunaan, semua utas diberi nomor tergantung pada ketebalannya. Benang yang paling tipis adalah No. 0, yang paling tebal adalah No. 10. Dalam operasi bedah umum, benang dari No. 1 hingga No. 5 biasanya digunakan. Benang No. 1, misalnya, dapat digunakan untuk menjahit atau mengikat pembuluh darah kecil, memasang jahitan serosa abu-abu pada dinding usus. Benang No. 2 dan 3 - untuk mengikat pembuluh darah berukuran sedang, menerapkan jahitan serosa-otot pada usus, menjahit peritoneum, dll. Benang No. 5 biasanya digunakan untuk menjahit aponeurosis.

Saat melakukan operasi vaskular, khususnya intervensi bedah mikro, diperlukan benang yang lebih tipis lagi daripada benang No. 0. Utas seperti itu mulai diberi No. 1/0, 2/0, 3/0, dll. Benang tertipis yang saat ini digunakan dalam oftalmologi dan operasi pembuluh limfatik adalah No. 10/0. Perlu dicatat bahwa benang juga berbeda dalam sifat lainnya: beberapa meluncur lebih baik dan cenderung terurai, yang lain muncul kembali saat dikencangkan, kurang lebih lembam dibandingkan dengan kain, lebih atau kurang tahan lama, dll.

Baru-baru ini, benang dengan aktivitas antimikroba telah tersebar luas karena masuknya antiseptik dan antibiotik ke dalam komposisinya (letilan-lavsan, fluorlon, dll.).

Klip logam, terminal, dan klip yang terbuat dari baja tahan karat, titanium, tantalum, dan paduan lainnya berdiri agak terpisah.

Bahan jahitan jenis ini digunakan pada mesin jahitan khusus.

Metode mensterilkan bahan jahitan

Saat ini metode utama sterilisasi bahan jahitan adalah sterilisasi radiasi di pabrik. Hal ini sepenuhnya berlaku untuk bahan jahitan atraumatik: jarum dan benang ditempatkan dalam kemasan tertutup terpisah, yang menunjukkan ukuran, kelengkungan dan jenis (menusuk atau memotong) jarum, bahan, panjang dan nomor benang. Bahan jahitan disterilkan, kemudian dikirim dalam kemasan ke institusi medis.

Anda juga bisa mensterilkan benang saja. Selain itu, potongan benang dapat ditempatkan dalam ampul kaca tertutup dengan larutan antiseptik khusus, dan gulungan benang dapat ditempatkan dalam wadah tertutup khusus dengan larutan yang sama.

Metode klasik sterilisasi sutra (metode Kocher) dan catgut (metode Sitkovsky dalam uap yodium, metode Gubarev dan Claudius dalam alkohol dan larutan Lugol berair) saat ini dilarang untuk digunakan karena durasinya, kompleksitasnya dan tidak selalu cukup efektif.

Sterilisasi struktur, prostesis, transplantasi

Metode mensterilkan implan bergantung sepenuhnya pada bahan pembuatannya.

Struktur logam untuk osteosintesis (pelat, sekrup, sekrup, jarum rajut) disterilkan bersama dengan instrumen logam non-pemotongan dalam autoklaf atau oven panas kering.

Prostesis yang lebih kompleks (prostesis katup jantung, sambungan), tidak hanya terdiri dari logam, tetapi juga bagian plastik, paling baik disterilkan. dengan cara kimia- dalam alat sterilisasi gas atau dengan merendamnya dalam larutan antiseptik.

Baru-baru ini, produsen prostesis terkemuka telah memproduksinya dalam kemasan tertutup, disterilkan dengan radiasi.

Selain berbagai struktur dan prostesis, organ alogenik yang diambil dari organisme lain selama operasi transplantasi dapat menjadi sumber infeksi implantasi. Sterilisasi transplantasi tidak mungkin dilakukan, oleh karena itu, saat mengambil organ, sterilitas yang paling ketat harus diperhatikan: operasi pengumpulan dilakukan sesuai dengan aturan aseptik yang sama seperti intervensi bedah konvensional. Setelah dikeluarkan dari tubuh donor dan dicuci dengan larutan steril, organ tersebut ditempatkan dalam wadah tertutup khusus, di mana organ tersebut tetap dalam kondisi steril sampai transplantasi.

Tahap 1– persiapan bahan sebelum sterilisasi. Bahan pembalut antara lain bola kasa, serbet, tampon, turundas, perban, serta gaun bedah, sprei, handuk, masker, topi, penutup sepatu. Mereka digunakan selama operasi dan pembalutan untuk mengeringkan luka, menghentikan pendarahan, dan untuk drainase atau pembalutan luka. Bahan pembalut dibuat dari kain kasa dan kapas, lebih jarang dari viscose dan lignin, dari kain kasa, yang sebelumnya dipotong-potong. Kain kasa dilipat sedemikian rupa sehingga ujung-ujungnya masuk ke dalam dan tidak ada tepi bebas yang dapat membuat serat kain terlepas. Bahan tersebut disimpan untuk digunakan di masa depan, mengisi kembali cadangannya saat dikonsumsi. Untuk memudahkan penghitungan bahan yang digunakan selama operasi, bahan tersebut ditempatkan sebelum sterilisasi dengan urutan tertentu: bola dalam kantong kain kasa, serbet diikat menjadi 10 buah. Bahan pembalut, kecuali pembalut yang tidak terkontaminasi darah, dibakar setelah digunakan.

Tahap II– meletakkan dan menyiapkan bahan untuk sterilisasi. Bahan pembalut dan linen bedah ditempatkan dalam kotak. Jika tidak ada bixes, sterilisasi dalam kantong linen diperbolehkan. Pada saat mensterilkan di dalam tas, bahan pembalut dan linen tidak diletakkan rapat, tas diikat dengan kepang. Tas diturunkan ke dalam tas lain yang identik dan diikat. Jika perlu menggunakan bahan, tas diletakkan di atas bangku, perawat melepaskan ikatan tas bagian atas, merentangkan tepinya dan melepasnya ke bawah. Perawat operasi mengambil kantong bagian dalam dengan tangan steril, membukanya, dan mengeluarkan bahannya. Dengan penempatan universal, bahan yang ditujukan untuk satu operasi standar kecil (usus buntu, herniotomi, proses mengeluarkan darah, dll.) ditempatkan di dalam bixes.

Tahap III– sterilisasi.

Bahan pembalut dan linen bedah disterilkan dalam autoklaf selama 20 menit pada tekanan 2 atm. dan suhu 132,9°C atau selama 45 menit pada tekanan 1,1 atm. dan suhu 122 °C.

Pengendalian sterilitas bahan dan cara sterilisasi dalam autoklaf dilakukan dengan cara langsung dan tidak langsung. Metode langsung adalah kultur bakteriologis dari dressing dan linen atau penggunaan uji bakteriologis. Penaburan dilakukan sebagai berikut: di ruang operasi, bix dibuka, potongan kecil kain kasa yang dibasahi dengan larutan natrium klorida isotonik dilewatkan di atas linen beberapa kali, setelah itu potongan kain kasa direndam dalam tabung reaksi. dan dikirim ke laboratorium bakteriologi. Untuk pengujian bakteriologis, digunakan tabung reaksi dengan kultur mikroorganisme non-patogen yang diketahui mengandung spora dan mati pada suhu tertentu. Tabung ditempatkan dalam wadah, setelah sterilisasi selesai dikeluarkan dan dikirim ke laboratorium. Tidak adanya pertumbuhan mikroba menunjukkan sterilitas bahan. Kultur dari dressing dan linen diperiksa setiap 10 hari sekali.

Metode tidak langsung untuk memantau sterilitas bahan terus digunakan selama setiap sterilisasi. Untuk ini, zat dengan titik leleh tertentu digunakan: asam benzoat (120 °C), resorsinol (119 °C), antipirin (110 °C). Zat-zat ini diproduksi dalam ampul dalam bentuk indikator khusus. Mereka juga digunakan dalam tabung reaksi (masing-masing 0,5 g), ditutup dengan penutup kain kasa. 1-2 ampul ditempatkan di bix di antara lapisan bahan. Melelehnya serbuk dan transformasinya menjadi massa padat menunjukkan bahwa suhu dalam campuran sama dengan atau lebih tinggi dari titik leleh zat pengatur. Untuk mengontrol rezim sterilisasi dalam alat sterilisasi panas kering, bahan bubuk dengan titik leleh lebih tinggi digunakan: asam askorbat (187-192 °C), asam suksinat (180-184 °C), pilocarpine hidroklorida (200 °C), urea ( 180 °C) dan indikator yang diproduksi dalam kondisi industri.