Sterilisasi dressing: metode dan peralatan. Asepsis, definisi. Hukum dasar asepsis. Metode dasar mensterilkan instrumen, dressing, dan linen. Kontrol sterilitas Cara mensterilkan bola kasa

STERILISASI BAHAN DAN LINEN PAKAIAN a) Jenis bahan pembalut dan linen bedah Bahan pembalut meliputi bola kasa, tampon, serbet, perban, turundas, kapas kasa. Bahan pembalut biasanya disiapkan segera sebelum sterilisasi, dengan menggunakan teknik khusus untuk mencegah lunturnya utas individu kain kasa. Untuk memudahkan penghitungan, bola-bola tersebut dimasukkan ke dalam kain kasa secara berkelompok 50-100 buah, kemudian serbet dan tampon diikat masing-masing sebanyak 10 buah.Bahan pembalut tidak digunakan kembali dan dibakar setelah digunakan. Linen operasi meliputi gaun bedah, seprai, handuk, dan linen. Bahan pembuatannya adalah kain katun. Setelah digunakan, linen bedah yang dapat digunakan kembali dicuci secara terpisah dari jenis linen lainnya. b) Sterilisasi Dressing dan linen disterilkan dengan autoklaf dalam kondisi standar. Sebelum sterilisasi berpakaian dan cucian dimasukkan ke tempat sampah. Ada tiga jenis utama gaya bix: Gaya universal Biasanya digunakan di ruang ganti dan operasi kecil. Bix secara konvensional dibagi menjadi beberapa sektor, dan masing-masing sektor diisi dengan jenis bahan ganti atau linen tertentu: serbet ditempatkan di satu sektor, serbet ditempatkan di sektor lain. - bola, yang ketiga - tampon, dll. Gaya yang ditargetkan Dirancang untuk melakukan manipulasi, prosedur, dan operasi kecil yang khas. Misalnya, kotak untuk trakeostomi, untuk kateterisasi vena subklavia, untuk anestesi epidural, dll. Semua instrumen, pembalut, dan linen yang diperlukan untuk prosedur ini ditempatkan di dalam kotak. Ketik gaya Biasanya digunakan di ruang operasi yang jumlahnya banyak bahan steril.. Dalam hal ini, misalnya gaun bedah ditempatkan di satu kotak, seprai di kotak lain, serbet di kotak ketiga, dan seterusnya. Dalam jumlah kecil, digunakan bahan pembalut dalam kemasan yang telah mengalami sterilisasi radiasi. Ada juga yang khusus set linen bedah sekali pakai (jubah dan seprai), terbuat dari kain sintetis yang juga telah mengalami sterilisasi radiasi METODE KONTROL STERILITAS Semua tindakan yang berkaitan dengan pemrosesan dan sterilisasi instrumen, linen, dll., harus dikontrol secara wajib. Baik efektivitasnya sterilisasi dan kualitas persiapan pra-sterilisasi dipantau. a) Pengendalian sterilitas Semua metode pengendalian sterilitas dibagi menjadi langsung dan tidak langsung. ~ Metode langsung pengendalian sterilitas adalah pemeriksaan bakteriologis: tongkat steril khusus digunakan untuk melewati instrumen steril (kulit tangan ahli bedah atau bidang bedah, linen bedah, dll.), setelah itu ditempatkan dalam tabung steril dan dikirim ke laboratorium bakteriologis, di mana ia diinokulasi pada berbagai media nutrisi dan kontaminasi bakteri ditentukan. Metode bakteriologis untuk mengendalikan sterilitas adalah yang paling akurat. Sisi negatifnya adalah lamanya penelitian: hasil kultur baru akan siap setelah 3-5 hari, dan instrumen harus segera digunakan setelah sterilisasi. Oleh karena itu, penelitian bakteriologis dilakukan sesuai rencana dan berdasarkan hasil-hasilnya kesalahan metodologis dalam pekerjaan tenaga medis atau cacat pada peralatan yang digunakan. Sesuai dengan standar yang ada, yang sedikit berbeda untuk jenis yang berbeda instrumen, pemeriksaan bakteriologis harus dilakukan setiap 7-10 hari sekali. Metode tidak langsung kontrol digunakan terutama dalam metode sterilisasi termal dan memungkinkan seseorang untuk menentukan suhu di mana perawatan dilakukan, tanpa memberikan jawaban akurat terhadap ada tidaknya mikroflora. Keuntungan dari metode tidak langsung adalah kecepatan memperoleh hasil dan kemungkinan penggunaan pada setiap sterilisasi.Pada autoklaf, biasanya ditempatkan ampul (tabung reaksi) berisi bahan tepung yang memiliki titik leleh pada kisaran 110-120 ° C. sebuah bis. Setelah sterilisasi, saat membuka bix, perawat pertama-tama memperhatikan ampul ini: jika bahan sudah meleleh, maka bahan (alat) tersebut dianggap steril. Jika tidak, berarti pemanasannya tidak mencukupi dan bahan tersebut tidak dapat digunakan karena tidak steril. Untuk metode ini, yang paling umum digunakan adalah: asam benzoat ((° titik leleh - 120°C), resorsinol (<; ° плавл. - 119°С), антипирин (1° meleleh - 110°C). Alih-alih ampul, indikator suhu atau termometer maksimum dapat ditempatkan di Bix, yang juga dapat digunakan untuk menentukan apakah suhu yang diperlukan telah tercapai selama proses pemrosesan.

9. Alat autoklaf Teknik sterilisasi.

Pada prinsipnya setiap autoklaf mempunyai ruang kerja, pembangkit uap dengan pengukur tekanan, elemen pemanas, sistem penyediaan uap, katup pelepas uap dan katup pengaman. Teknik autoklaf mencakup tindakan berikut:1. Menuangkan air ke dalam pembuat uap.2. Penempatan bixes ke dalam ruang autoklaf.3. Memanaskan air hingga terbentuk uap.4. Menaikkan tekanan di ruang kerja menjadi 1 atm. dan pelepasan udara sisa.5. Menaikkan tekanan ke mode sterilisasi.6. Selama proses sterilisasi, parameter berikut harus diperhatikan: 1,1 atm. - 121,2°C - 60 menit, 1,5 atm. - 126,8°C - 45 menit, 2 atm. - 132, 9°C - 30 menit, 2, 2" - 135, HS - 20 menit, 2, 4" - 137, 2°C - 15 menit.7. Mematikan autoklaf.8. Pelepasan uap, mengurangi tekanannya di dalam ruangan menjadi nol,9. Mengeringkan cucian selama 5 menit. dengan tutupnya tertutup.10. Membuka tutupnya, mengeluarkan tempat sampah, menutup cincin pada drum.11. Pembuangan air dari pembangkit uap.12. Mengeringkan autoklaf. Wadah tertutup menjaga sterilitas barang yang dikandungnya selama 72 jam.

10. Metode sterilisasi instrumen optik.Sterilisasi instrumen optik Metode utama sterilisasi instrumen optik yang memerlukan perawatan paling lembut kecuali pemanasan adalah sterilisasi gas. Semua instrumen untuk intervensi laparoskopi dan torakoskopi diproses menggunakan metode ini, karena desainnya yang rumit dan biayanya yang tinggi. Saat mensterilkan serat gastroskop, koledokoskop, kolonoskop Dimungkinkan juga untuk menggunakan sterilisasi dingin menggunakan antiseptik kimia (etil alkohol, klorheksidin, Sidex - sediaan dua komponen berdasarkan glutaraldehid) Perlu dicatat secara khusus bahwa cara terbaik untuk mencegah infeksi kontak adalah dengan menggunakan instrumen sekali pakai yang telah menjalani sterilisasi pabrik radiasi.

11. Bahan jahitan, klasifikasi. Sterilisasi sutra, nilon.

STERILISASI BAHAN JAHIT a) Jenis bahan jahitan Jenis bahan jahitannya cukup beragam. Bahan jahitan yang berasal dari alam dan buatan Bahan jahitan yang berasal dari alam antara lain sutra, benang katun dan catgut. Catgut terbuat dari lapisan submukosa usus sapi. Bahan jahitan asal buatan saat ini diwakili oleh sejumlah besar benang yang dibuat dari bahan kimia sintetis: nilon, lavsan, fluorolone, poliester, dacron, dll. Bahan jahitan yang dapat diserap dan tidak dapat diserap Jahitan yang dapat diserap digunakan untuk menjahit jaringan yang mengalami penyembuhan cepat jika kekuatan mekanik yang tinggi tidak diperlukan. Bahan ini digunakan untuk menjahit otot, serat, dan selaput lendir saluran cerna, saluran empedu, dan saluran kemih. Contoh klasik dari bahan jahitan yang dapat diserap adalah catgut. Benang catgut terserap sempurna di dalam tubuh setelah 2-3 minggu. Bahan sintetis yang dapat diserap antara lain Dexon, Vicryl, Oxcylon. Tenggat waktu milik mereka resorpsinya kira-kira sama dengan catgut berlapis krom, namun memiliki kekuatan yang meningkat, sehingga memungkinkan penggunaan benang yang lebih tipis. Semua benang lainnya (sutra, nilon, lavsan, poliester, fluor, klip logam, dll.) tidak dapat diserap - benang tersebut tetap berada di tubuh pasien sepanjang hidupnya. Bahan jahitan traumatis dan atraumatik Selama bertahun-tahun, selama operasi pembedahan, perawat operasi, segera sebelum memasang jahitan, memasukkan benang yang sesuai ke dalam lubang jarum bedah yang dapat dilepas. Bahan jahitan seperti itu saat ini disebut traumatis. Dalam beberapa dekade terakhir, bahan jahitan atraumatik telah tersebar luas.Benang tersebut dihubungkan erat ke jarum di pabrik dan dimaksudkan untuk menerapkan satu jahitan. Keuntungan utama dari bahan jahitan atraumatik adalah diameter benang kira-kira sama dengan diameter jarum (bila menggunakan bahan jahitan traumatis, ketebalan benang jauh lebih kecil daripada diameter lubang jarum), sehingga benang hampir seluruhnya menutupi cacat pada jaringan setelah melewati jarum. Klip logam, terminal, dan klip yang terbuat dari baja tahan karat, titanium, tantalum, dan paduan lainnya berdiri agak terpisah. b) Metode sterilisasi bahan jahitan Saat ini metode utama sterilisasi bahan jahitan adalah sterilisasi radiasi di pabrik. Hal ini sepenuhnya berlaku untuk bahan jahitan atraumatik: jarum dan benang ditempatkan dalam kemasan tertutup terpisah, yang menunjukkan ukuran dan jenis jarum (menusuk atau memotong), bahan, panjang dan nomor benang. Bahan jahitan disterilkan dan dikirim dalam kemasan ke institusi medis. Metode klasik sterilisasi sutra (metode Kocher), catgut (metode Sitkovsky dalam uap yodium, Gubarev dan Claudius dalam alkohol dan larutan Lugol dalam air) sekarang praktis ditinggalkan karena milik mereka durasi, kerumitan dan efektivitas tidak selalu memadai.Di lingkungan rumah sakit, hanya klip nilon, lavsan, dan logam yang sekarang disterilkan. Mereka disterilkan dengan cara direbus atau diautoklaf. Setelah sterilisasi atau pembukaan kemasan setelah sterilisasi radiasi, bahan jahitan hanya dapat disimpan dalam etil alkohol 96°.

2. Peran Pirogov dalam pengembangan bedah domestik.

Nikolai Ivanovich Pirogov (1810-1881) lulus pada tahun 1828 fa medis kultus Universitas Moskow dan dikirim ke Dorpat ke Institut Profesor untuk mempersiapkan pengajaran. DI DALAM 1832_. N. I. Pirogov mempertahankan disertasi doktoralnya “Tentang ligasi aorta perut.” 1836 NI Pirogov mengepalai klinik bedah di Universitas Dorpat. Pada tahun 1841, ia pindah ke St. Petersburg ke Akademi Medis-Bedah, atas sarannya sebuah klinik baru bedah rumah sakit dan anatomi patologis didirikan; dia tetap di departemen ini sampai tahun 1856. N.I.Pirotov menulis: “...Tidak ada seorang pun yang pernah menyajikan gambaran selengkap itu. gambar posisi normal organ, seperti saya.” Posisi banyak organ (jantung, lambung, usus) ternyata sama sekali tidak sama seperti yang biasa terlihat saat otopsi, karena tekanan udara dan pelanggaran integritas. rongga yang tertutup rapat, posisi ini berubah secara ekstrim.” Pentingnya aktivitas ilmiah N. I. Pirogov terletak pada penciptaan dasar ilmiah alami untuk pembedahan dan dalam mengatasi, sebagian besar, empirisme. NI Pirogov meletakkan dasar bagi ilmu baru anatomi bedah. Ia mengembangkan metode pemanjangan osteoplastik tulang tungkai bawah selama enukleasi kaki (1851), menulis tentang reseksi sendi lutut, tentang pemotongan vena Achilles dan tentang proses plastik yang terjadi selama peleburan ujung-ujungnya. potong vena, tentang operasi hidung. Manfaat besar N. I. Pirogov area pereda nyeri. Salah satu orang pertama di Eropa yang menggunakan eter selama operasi, N.I. Pirogov adalah orang pertama di dunia yang menggunakan anestesi eter saat memberikan bantuan luka di medan perang di Salty. Peran luar biasa I. I. Pirogov dalam penciptaan bedah lapangan militer dan pengembangannya masalah organisasi medis militer hal yang harus dilakukan. N.I. Pirogov mendukung pembedahan lubang masuk dan keluar “jika terjadi ketidaknyamanan dalam mengangkut korban luka” dan jika tidak ada pengawasan yang cermat terhadap mereka, ia menolak lebih awal amputasi akibat kebakaran luka tembak di anggota badan dengan kerusakan tulang direkomendasikan " operasi tabungan", dikembangkan dan memperkenalkan metode ini ke dalam praktik luas Metode imobilisasi anggota badan(kanji, gips). N. I. Pirogov adalah orang pertama di Rusia yang memperkenalkan gips. Banyak aspek aktivitas ilmiah dan klinis N. I. Pirogov memiliki dampak signifikan pada perkembangan kedokteran selanjutnya dan mempertahankan pentingnya bagi pengobatan modern: penciptaan anatomi topografi dan bedah, pengenalan anestesi eter ke dalam praktik bedah, interpretasi peradangan. sebagai reaksi tubuh secara keseluruhan, perkembangan ajaran tentang sifat menular dari proses luka, tentang kerja antiseptik.

12. Sterilisasi instrumen bedah.

STERILISASI INSTRUMEN BEDAH a) Persiapan pra-sterilisasi Persiapan pra-sterilisasi terdiri dari desinfeksi, pencucian dan pengeringan. Semua jenis instrumen terkena dampaknya.Jenis dan volume perlakuan pra-sterilisasi di masa lalu ditentukan oleh tingkat infeksi pada instrumen. Semua prosedur pra-sterilisasi harus dilakukan dengan sarung tangan! Disinfeksi Segera setelah digunakan, instrumen direndam dalam wadah yang berisi desinfektan (akumulator). Dalam hal ini, mereka harus benar-benar terendam dalam larutan. Larutan kloramin 3% (paparan 40-6,0 menit) atau larutan hidrogen peroksida 6% (paparan 90 menit) digunakan sebagai disinfektan. Setelah disinfeksi, instrumen dicuci dengan air mengalir. Mencuci e Alat direndam dalam larutan pencuci khusus (basa), yang meliputi deterjen (bubuk pencuci), hidrogen peroksida dan air. Suhu larutan 50-60°C, pemaparan 20 menit, setelah itu instrumen dicuci dengan sikat dalam larutan yang sama, kemudian dalam air mengalir. Pengeringan Pengeringan bisa dilakukan secara alami. Baru-baru ini, terutama selama sterilisasi selanjutnya dengan udara panas, instrumen dikeringkan dalam oven panas kering pada suhu 80°C selama 30 menit. Setelah kering, instrumen siap untuk disterilkan. Pilihan metode sterilisasi terutama bergantung pada jenis instrumen bedah. b) Sebenarnya sterilisasi Semua instrumen bedah, menurut karakteristik bahan yang digunakan dan kualitas lainnya, dapat dibagi menjadi tiga kelompok: logam (pemotongan dan non-pemotongan), karet dan plastik, dan optik. Sterilisasi instrumen logam non-pemotongan. Metode utama sterilisasi adalah sterilisasi dengan udara panas dalam oven panas kering atau autoklaf dalam kondisi standar. Dimungkinkan juga untuk menggunakan perebusan. Namun, tidak disarankan untuk merebus instrumen setelah operasi untuk infeksi anaerobik dan kelompok risiko hepatitis.Beberapa jenis instrumen sederhana (pinset, klem, probe, dll.) yang dimaksudkan untuk sekali pakai dapat disterilkan dengan radiasi. Sterilisasi alat pemotong logam Sterilisasi instrumen pemotongan menggunakan metode termal menyebabkan milik mereka kebodohan dan hilangnya sifat-sifat yang diperlukan oleh ahli bedah. Metode utama mensterilkan alat pemotong adalah metode kimia dingin dengan menggunakan larutan antiseptik. Baru-baru ini, di ruang ganti, instrumen pemotongan, seperti instrumen non-pemotongan, disterilkan dalam oven panas kering, yang menyebabkan sedikit penurunan ketajamannya, tetapi menjamin sterilitas mutlak. Metode sterilisasi terbaik adalah sterilisasi gas dan khususnya sterilisasi radiasi dalam kondisi pabrik. Metode terakhir ini banyak digunakan saat menggunakan pisau bedah sekali pakai dan jarum bedah (bahan jahitan atraumatik). Sterilisasi instrumen karet dan plastik Metode utama sterilisasi produk karet adalah autoklaf. Dengan sterilisasi berulang kali, karet kehilangan sifat elastisnya dan retak, yang merupakan kelemahan metode ini. Merebus produk karet selama 15 menit juga diperbolehkan. Produk plastik sekali pakai, serta kateter dan probe, harus menjalani sterilisasi pabrik radiasi. Perhatian khusus harus diberikan tentang sterilisasi sarung tangan. Baru-baru ini, sarung tangan sekali pakai yang telah menjalani sterilisasi pabrik radiasi paling sering digunakan. Untuk penggunaan berulang, metode utama sterilisasi adalah autoklaf dalam mode lembut: setelah perawatan pra-sterilisasi, sarung tangan dikeringkan, ditaburi bedak talk (mencegah lengket), dibungkus dengan kain kasa, dimasukkan ke dalam kantong dan diautoklaf pada 1,1 atm. selama 30-40 menit atau pada 1,5 atm - 15-20 menit.

9. Gagal jantung.Gagal jantung. Komplikasi serius yang dapat terjadi secara tiba-tiba: denyut nadi hilang, bunyi jantung tidak terdengar, pernapasan terhenti, dan muncul pucat parah. Pupil melebar, otot rileks, luka berhenti mengeluarkan darah. Hal ini diperlukan, sambil melanjutkan pernapasan buatan dan memastikan pasokan oksigen yang cukup ke tubuh, untuk segera memulai pijat jantung dalam 4 menit pertama. Ada dua metode: tertutup (tidak langsung) dan terbuka. Pijat jantung tertutup, metode pemulihan aktivitas jantung yang cepat dan efektif, dilakukan dengan tekanan ritmis seperti sentakan pada sepertiga bagian bawah tulang dada hingga 60 kali per menit. Saat memberikan bantuan oleh dua dokter, 5 tekanan seperti sentakan diterapkan pada tulang dada per satu suntikan ke paru-paru; saat memberikan bantuan oleh satu dokter, 15 tekanan seperti sentakan diterapkan pada tulang dada setelah setiap dua inflasi cepat ke dalam paru-paru. Dengan setiap dorongan, tulang dada harus mendekati tulang belakang sekitar 3-4 cm, jantung berkontraksi dan darah memasuki pembuluh sirkulasi paru dan sistemik. Ketika tekanan pada tulang dada berhenti, rongga jantung terisi darah. Selama pijat jantung tertutup, pasien harus dibaringkan pada permukaan yang keras. Jika pijat jantung tertutup efektif, denyut nadi muncul di pembuluh perifer, pupil menyempit, dan kulit menjadi merah muda. Pijat jantung terbuka dapat dilakukan melalui jalur subdiafragma transthoracic dan transdiaphragmatic.

7. Metode pengolahan bidang bedah. Dalam beberapa tahun terakhir, persiapan antiseptik lainnya telah mulai digunakan untuk merawat bidang bedah: larutan degmin 1%, yang dengannya tampon banyak dibasahi dan kulit dirawat dua kali; Larutan klorheksidin (air-alkohol) 05% digunakan untuk merawat kulit dua kali dengan selang waktu 2 menit.
Pengganti rasional untuk larutan alkohol yodium adalah iodonat - larutan kompleks surfaktan dengan yodium. Obat tersebut mengandung 45% yodium. Untuk merawat bidang bedah, gunakan larutan 1%, yang iodonate aslinya diencerkan 45 kali dengan air suling. Kulit dilumasi dengan larutan ini dua kali sebelum operasi. Sebelum dijahit, kulit diproses kembali. Lihat (4).

10. Komplikasi selama anestesi endotrakeal. KOMPLIKASI NARCOSIS ENDOTRACHEAL Sebelum menjelaskan komplikasi anestesi endotrakeal, perlu diingat jenis-jenis hipoksia: Hipoksia hipoksia. Namanya sendiri menunjukkan bahwa hanya ada sedikit oksigen di udara yang dihirup. Paling sering ini terjadi ketika kita menambahkan sedikit oksigen ke dalam campuran. Paling sering, situasi ini terjadi ketika menggunakan nitrous oxide (rasio maksimum ideal adalah 3 banding 1), jika anestesi tidak mencukupi dan ahli anestesi meningkatkan proporsi nitrous oxide hingga lebih dari 80%, maka hipoksia hipoksia akan terjadi. Dalam kehidupan, hipoksia hipoksia terjadi saat mendaki gunung. Hipoksia hemik. Lebih sering terjadi dengan kehilangan banyak darah, bila hemoglobinnya sedikit. Biasanya diobati dengan transfusi darah dan ventilasi mekanis. Hipoksia peredaran darah. Paling sering terjadi pada gagal jantung, ketika darah tidak mencapai dasar mikrosirkulasi. Paling sering hal ini terjadi dengan hipotensi, ketika tekanan kapiler normal tidak dipertahankan dan secara alami oksigen tidak mencapai sel. Hipoksia histotoksik terjadi pada berbagai keracunan. Dalam praktik anestesi, hal ini dikaitkan dengan overdosis zat narkotika tertentu. KOMPLIKASI: Komplikasi yang berhubungan dengan intubasi: Tampaknya intubasi adalah prosedur yang sederhana, namun sayangnya, ada sejumlah orang dengan kekhasan struktur anatomi dan fisiologis: kepala tidak lurus dengan baik, rahang tidak menonjol dengan baik, epiglotis pendek, dan selama intubasi, bahkan di tangan yang terampil, glotis tidak terlihat. Dan sayangnya, beberapa pasien masih meninggal karena intubasi yang gagal. Dalam kasus seperti itu, perlu menghubungi dokter yang lebih berpengalaman untuk meminta bantuan. Jika gagal, maka perlu dilakukan trakeostomi, atau Anda dapat menyelamatkan orang tersebut dengan pernapasan difusi: trakea ditusuk dengan jarum sederhana, selang dihubungkan ke jarum dan aliran oksigen. Artinya, meskipun seseorang tidak bernapas, kami memberinya difusi oksigen, yang aman selama setengah jam. Karena oksigenasi terjadi dengan baik, tetapi karbon dioksida terakumulasi dalam dosis yang mematikan setelah 30-40 menit. Kerusakan pada lidah, bagian belakang tenggorokan, gigi. Ketegaran di dalam tabung. Laringospasme merupakan komplikasi dari semua jenis anestesi. Laringospasme berbahaya selama induksi anestesi; terkadang pita suara menutup begitu rapat sehingga selang tidak dapat dilewati. Dalam kasus seperti itu, yang paling efektif adalah penggunaan pelemas otot karena... Otot rangkalah yang terlibat dalam laringospasme. Laringospasme apa pun dapat diatasi dengan pemberian pelemas otot, namun harus diingat bahwa pasien harus segera dipindahkan ke ventilasi mekanis segera setelah intubasi. Bronkospasme terjadi ketika otot polos berkontraksi, yang tidak dipengaruhi oleh pelemas otot, sehingga digunakan bronkodilator, dimulai dengan aminofilin. Fluorotan memiliki efek bronkodilator yang kuat, bahkan dapat digunakan dalam pengobatan asma bronkial.

2. Pengawetan dan penyimpanan darah.

PENYIMPANAN DARAH Pengawetan darah adalah suatu tindakan kompleks yang bertujuan untuk menciptakan kondisi penyimpanan darah jangka panjang di luar tubuh dalam keadaan steril dengan pelestarian maksimal sifat biologisnya (baik unsur pembentuk maupun bagian cair darah). Ada dua metode yang digunakan untuk pengawetan darah: pengalengan pada suhu positif; pengalengan pada suhu negatif. Penyimpanan darah pada suhu positif biasanya dilakukan di lemari es ruang rumah tangga, yang memastikan pemeliharaan kondisi suhu berkisar antara +2 hingga +4°C. Darah utuh kalengan, sel darah merah, dan plasma asli dapat disimpan pada suhu ini.Komponen darah yang berbeda memiliki umur simpan yang berbeda. Misalnya, sel darah merah dapat mempertahankan khasiatnya selama beberapa minggu, namun sel darah putih dan trombosit hanya dapat mempertahankan khasiatnya selama beberapa hari. Hal ini dijelaskan oleh fakta bahwa leukosit dan trombosit merupakan sel inti dengan fungsi yang lebih kompleks, dan selama penyimpanan jangka panjang, perubahan terutama mempengaruhi inti sel. Umur simpan plasma asli dibatasi hingga tiga hari. Hal ini disebabkan fakta bahwa selama ini sebagian besar zat aktif biologis yang termasuk dalam komposisinya tidak aktif.Untuk menghindari konsekuensi yang tidak diinginkan selama penyimpanan darah jangka panjang, pengawetannya pada suhu di bawah nol digunakan. Hal ini memungkinkan Anda untuk meningkatkan umur simpan darah karena fakta bahwa proses metabolisme dalam sel ditekan secara signifikan, dan ini mencegah “penuaan” dini. Kondisi suhu berikut digunakan untuk kriopreservasi: suhu cukup rendah (–40.. .–60°C), suhu sangat rendah (–196°C). Suhu menentukan berapa lama sel darah merah dapat mempertahankan sifat-sifatnya. Pada suhu yang cukup rendah mereka dapat disimpan selama beberapa bulan, dan pada suhu yang sangat rendah - 10 tahun atau lebih. Solusi pengawet. Untuk meningkatkan umur simpan darah di luar tubuh, solusi khusus - hemopreservatif - digunakan. Sebagai komponen wajib, semua larutan pengawet mengandung bahan kimia khusus - stabilisator. Stabilisator seperti asam lemon Dan natrium sitrat. Mereka mengikat ion kalsium, yang membantu menekan salah satu tahapan proses hemostasis - pembentukan trombin. Sifat penting natrium sitrat adalah 20-30 menit setelah transfusi darah distabilkan dengan bantuannya, natrium sitrat hampir seluruhnya (setidaknya 90%) dikeluarkan dari tubuh. Harus diingat bahwa jika terjadi kehilangan darah akut atau kondisi lain (hipotermia), akibat pemberian darah yang distabilkan dengan natrium sitrat, dapat terjadi kekurangan ion kalsium (lihat Bab 9), oleh karena itu, setelah transfusi darah dari 500 ml, 10 ml larutan 10% harus diberikan secara intravena kalsium klorida atau glukonat. Ini cukup untuk mengkompensasi kekurangan kalsium yang diakibatkannya. Termasuk jenis stabilizer lainnya heparin. Ini mencegah pembekuan darah dengan mengikat dan menonaktifkan trombin secara langsung. Kerugian yang signifikan dari heparin bila digunakan sebagai penstabil adalah tidak memungkinkan darah yang diawetkan dalam waktu lama, karena seiring bertambahnya umur penyimpanan, terjadi inaktivasi heparin. Akibatnya, gumpalan darah kecil terbentuk dalam sehari, dan setelah dua hari, gumpalan darah besar. Heparin sebagai pengawet, selain heparin itu sendiri (50 mg), mengandung glukosa (5 g), larutan natrium klorida isotonik (hingga 100 ml). Campuran ini memiliki pH 7,3. Rasio larutan terhadap darah selama pengawetan harus 1:9. Metode stabilisasi darah ini digunakan jika sangat diperlukan. Jadi, darah yang diheparinisasi digunakan selama operasi menggunakan mesin sirkulasi darah buatan - perangkat diisi dengannya.

6. Transfusi darah tidak langsung, uji kompatibilitas.

Uji kompatibilitas individu darah donor dan penerima. Konsep dasar Tes kecocokan golongan darah AB0 dan Rh dilakukan secara terpisah. Tes ini dilakukan dengan menggunakan metode yang berbeda karena fakta bahwa antibodi sistem AB0 dan Rh memiliki sifat yang berbeda dan menunjukkan efeknya dalam kondisi yang berbeda.Tujuan dari tes kompatibilitas individu adalah untuk mencegah transfusi sel darah merah yang tidak kompatibel. Uji kecocokan dilakukan dengan dokter yang mentransfusikan darah segera sebelum transfusi. Untuk melakukan ini, gunakan serum pasien dan darah donor dari botol yang disiapkan untuk transfusi.Menguji serum penerima dengan eritrosit donor yang dituju adalah cara paling andal untuk mengidentifikasi antibodi yang dapat menyebabkan kerusakan pada eritrosit yang ditransfusikan dan reaksi pasca transfusi. , termasuk yang hemolitik. Melakukan tes semacam itu memungkinkan Anda untuk: memastikan kompatibilitas AB0 antara donor dan penerima; mengidentifikasi hampir semua antibodi dalam serum penerima yang ditujukan terhadap sel darah merah donor. Teknik melakukan uji kompatibilitas individu Dalam semua kasus, kecuali transfusi mendesak, pengujian dilakukan dalam dua tahap (yang pertama - tanpa menggunakan reagen antiglobulin, yang kedua - dengan reagen antiglobulin). Tahap pertama: Tempatkan 2 tetes serum penerima dalam tabung berlabel. Tambahkan 1 tetes suspensi 5% sel darah merah donor yang telah dicuci tiga kali dalam larutan garam (fiksasi antibodi terjadi lebih baik dalam larutan kekuatan ionik rendah (LISS), jadi lebih disukai timbang sel darah merah dalam larutan LISS, biasanya disediakan oleh produsen bersama dengan reagen antiglobulin). Segera sentrifugasi pada kecepatan 2000 rpm selama 15-20 detik. Periksa supernatan untuk mengetahui adanya hemolisis dengan mengocok tabung secara perlahan, pisahkan sel sedimen dari dasar tabung dan menentukan adanya aglutinat. Adanya hemolisis dan/atau aglutinasi pada tahap ini dapat berarti: ketidakcocokan menurut sistem AB0; adanya antibodi dingin lengkap dalam serum penerima menurut spesifisitas AB0 (anti-S, anti-P1, dll.). Fase kedua: Jika tidak terjadi hemolisis, dan setelah tabung dikocok sel darah merah membentuk suspensi homogen, inkubasi tabung selama 30–40 menit (bila menggunakan LISS, waktu inkubasi 10–15 menit) pada suhu +37°C. Sentrifugasi tabung (lihat langkah 3) dan periksa supernatan untuk mengetahui adanya hemolisis dan aglutinasi. Adanya hemolisis dan/atau aglutinat (setelah tabung dikocok) menunjukkan adanya antibodi hangat lengkap terhadap sel darah merah donor pada penerima.Jika tidak ada aglutinasi dan hemolisis, cuci sel darah merah 3-4 kali dengan air besar. volume (setidaknya 5 ml) larutan fisiologis (pencucian yang tidak memadai dapat menyebabkan inaktivasi reagen antiglobulin dan hasil tes negatif palsu, karena serum, bahkan pada pengenceran 1:4.000, menonaktifkan reagen antiglobulin dengan volume yang sama) ; hilangkan seluruh larutan garam setelah pencucian terakhir. Tambahkan 1-2 tetes serum antiglobulin dan aduk rata. Sentrifugasi tabung (lihat langkah 3), pecahkan endapan secara perlahan dan periksa tabung untuk mengetahui adanya aglutinasi. Jika transfusi segera diperlukan, Anda dapat membatasi diri hanya pada tahap 1-4 dari uji kompatibilitas. Dalam hal ini, uji kompatibilitas individu juga dapat dilakukan di pesawat dengan mencampurkan 1 tetes serum penerima dengan setetes kecil darah donor (perbandingan serum dan darah harus sekitar 10:1). Dalam formulasi ini, uji kompatibilitas individu sebenarnya direduksi menjadi identifikasi ketidakcocokan hanya menurut sistem AB0.Interpretasi hasil tes Donor dianggap kompatibel jika tidak ada hemolisis atau aglutinasi yang diamati pada setiap tahap pengujian kompatibilitas individu. Aglutinasi menunjukkan adanya aloantibodi dalam serum penerima, yang spesifisitasnya dapat ditentukan di laboratorium serologi khusus dengan pengujian menggunakan panel sel darah merah yang diketik. Penerima tersebut memerlukan seleksi donor yang khusus.Kualitas reagen antiglobulin dijamin oleh produsen. Jangan menggunakan reagen yang sudah kadaluwarsa atau telah berulang kali dibekukan dan dicairkan. Berguna sebagai kontrol (jika Anda ragu tentang kualitas reagen) untuk melakukan tes antiglobulin dengan eritrosit Rh-positif yang disensitisasi dengan antibodi anti-0 yang tidak lengkap. Transfusi tidak langsung Transfusi darah tidak langsung merupakan metode utama transfusi darah. Hal ini ditandai dengan kemudahan pelaksanaan dan peralatan teknis yang sederhana, menghilangkan risiko infeksi pada donor dan dampak psikologis negatif dari kehadiran donor selama transfusi. Penting agar metode ini memungkinkan diperolehnya darah donor dalam jumlah besar, yang dapat digunakan baik secara rutin maupun dalam keadaan darurat. Dalam hal transfusi tidak langsung, darah dikumpulkan ke dalam botol (kemasan) khusus dengan bahan pengawet yang dilakukan sesuai rencana di stasiun (departemen) transfusi darah. Darah yang dikumpulkan, disimpan dalam kondisi tertentu, disebut bank darah dan digunakan sesuai kebutuhan. Pada saat yang sama, metode ini juga memiliki sejumlah aspek negatif: selama penyimpanan, darah dan komponennya kehilangan beberapa khasiat penyembuhan yang berharga, dan adanya bahan pengawet dapat menyebabkan reaksi merugikan pada penerimanya.

1. Memar.

gegar otak adalah kerusakan mekanis tertutup pada jaringan lunak dan organ tanpa pelanggaran yang terlihat terhadap integritas anatominya. Jaringan lunak yang terletak di permukaan - kulit dan jaringan subkutan - paling sering rentan terhadap memar. Namun, memar pada organ dalam (memar otak, jantung, paru-paru) juga mungkin terjadi. Cedera tersebut diklasifikasikan sebagai cedera pada organ dalam dan memerlukan pembedahan pribadi. DIAGNOSTIK Manifestasi klinis utama dari memar adalah nyeri, bengkak, hematoma dan disfungsi organ yang rusak. Nyeri terjadi segera pada saat cedera dan bisa sangat signifikan, yang berhubungan dengan kerusakan sejumlah besar reseptor nyeri di area yang terkena. Memar sangat menyakitkan ketika periosteum rusak. Dalam beberapa jam, rasa sakitnya mereda, dan kemunculannya lebih lanjut biasanya dikaitkan dengan pertumbuhan hematoma. Hampir segera setelah kerusakan, hal itu menjadi nyata pembengkakan, nyeri pada palpasi, tanpa batas yang jelas, lambat laun berubah menjadi jaringan utuh. Pembengkakan meningkat selama beberapa jam (sampai akhir hari pertama), yang berhubungan dengan perkembangan edema traumatis dan perubahan inflamasi. Waktu pengembangan hematoma(perdarahan) tergantung pada kedalamannya. Ketika kulit dan jaringan subkutan memar, hematoma segera terlihat (imbibisi, penetrasi kulit - hematoma intradermal). Dengan lokasi yang lebih dalam, hematoma mungkin muncul secara eksternal berupa memar hanya setelah 2-3 hari. Warna memar berubah karena pemecahan hemoglobin. Memar segar berwarna merah, kemudian warnanya menjadi ungu, dan setelah 3-4 hari berubah menjadi biru. Setelah 5-6 hari, memar berubah menjadi hijau dan kemudian kuning, setelah itu berangsur-angsur hilang. Jadi, berdasarkan warna memar, seseorang dapat menentukan durasi kerusakan dan simultanitasnya milik mereka perolehan, yang sangat penting dalam urusan pemeriksaan kedokteran forensik. Penyelewengan fungsi Jika terjadi memar, biasanya tidak terjadi segera, tetapi seiring dengan bertambahnya hematoma dan pembengkakan. Dalam hal ini, timbul pembatasan pada gerakan aktif, yang berhubungan dengan rasa sakit yang parah.Gerakan pasif dapat dipertahankan, meskipun juga sangat menyakitkan. Hal ini membedakan memar dari patah tulang dan dislokasi, di mana pelanggaran rentang gerak terjadi segera setelah cedera dan mempengaruhi gerakan aktif dan pasif. PENGOBATAN Pengobatan memar cukup sederhana. Untuk mengurangi perkembangan hematoma dan edema traumatis, istirahat dingin harus diberikan secara topikal sedini mungkin. Untuk melakukan ini, oleskan kompres es ke lokasi cedera, yang disarankan untuk disimpan selama 12-24 jam dengan istirahat setiap 2 jam selama 30-40 menit. menit. Untuk mengurangi pergerakan jika terjadi memar, perban tekanan diterapkan pada area sendi (sesegera mungkin setelah cedera). Untuk mengurangi pembengkakan, digunakan posisi anggota badan yang ditinggikan. Mulai dari 2-3 hari, prosedur termal (bantalan pemanas, iradiasi ultraviolet, terapi UVD) digunakan untuk mempercepat resorpsi hematoma dan meredakan edema. Dalam beberapa kasus, ketika hematoma besar terbentuk, terutama yang dalam, mereka ditusuk, setelah itu perban tekanan diterapkan. Tusukan - dalam beberapa kasus, harus diulang. Evakuasi hematoma tersebut diperlukan karena risiko berkembangnya infeksi (hematoma bernanah) atau organisasinya (hematoma terorganisir).

Tahap 1—mempersiapkan materi.

Bahan pembalut harus mudah disterilkan dan tidak kehilangan sifat-sifatnya. Itu dibuat dari kain kasa dan kapas, lebih jarang dari viscose dan lignin. Untuk pekerjaan, bola, serbet, tampon, turundas, dan perban disiapkan darinya. Kain kasa harus dilipat sedemikian rupa sehingga tidak ada tepi bebas yang dapat membuat serat kain terlepas. Bahan disimpan untuk digunakan di masa depan, diisi ulang saat digunakan. Sebelum sterilisasi ditempatkan sebagai berikut: bola - dalam kantong kain kasa berisi 50-100 lembar, serbet diikat menjadi 10 buah.

Digunakan sebagai linen bedah bedah jubah mandi, seprai, popok, handuk, topi, penutup sepatu. Mereka terbuat dari kain katun. Jubah, sprei, popok, handuk untuk sterilisasi dilipat dalam bentuk gulungan, sehingga mudah dibuka saat digunakan.

Bahan pembalut dibakar setelah digunakan. Cucian yang dapat digunakan kembali dapat dicuci, tetapi terpisah dari jenis cucian lainnya.

Tahap 2 – meletakkan material.

Bahan pembalut dan linen bedah disterilkan dalam wadah. Tiga jenis gaya bix digunakan:

Gaya universal

Gaya yang ditargetkan

Ketik gaya

Universal – mereka menumpuk bahan dan linen untuk satu pengoperasian kecil dan umum. Jenis instalasi ini digunakan saat bekerja di ruang ganti dan dalam operasi kecil. Peletakan dilakukan secara sektoral. Bixes dibagi menjadi beberapa sektor yang diisi dengan jenis bahan atau linen tertentu: serbet ditempatkan di satu sektor, bola di sektor lain, tampon di sektor ketiga, dll.

Bertujuan – bahan dan linen ditata untuk operasi tertentu. Misalnya untuk operasi usus buntu, reseksi lambung. Kotak itu berisi satu set pembalut dan linen yang diperlukan untuk operasi.

Spesies - letakkan jenis bahan atau linen tertentu.

Jenis instalasi ini digunakan di ruang operasi dimana sejumlah besar berbagai operasi. Peletakan dilakukan sebagai berikut - gaun bedah di satu wadah, seprai di wadah lain, serbet di wadah ketiga, dll.

Bix diletakkan sebagai berikut.

Periksa kemudahan servis bix. Lap bagian bawah, dinding, dan tutup tempat sampah, pertama dari dalam lalu dari luar dengan amonia 0,5%. Pada dinding samping bix, pelat melingkar (sabuk pengaman) digerakkan sehingga membuka lubang samping. Bix dilapisi dengan lembaran yang dilipat dua, ujungnya menggantung ke luar. Indikator pengatur sterilitas ditempatkan di bagian bawah bix. Bahan ganti dan linen ditempatkan secara longgar di tempat sampah, secara vertikal, dalam sektor atau berlapis-lapis. Setiap barang ditempatkan sedemikian rupa sehingga mudah dijangkau tanpa mengganggu penataannya. Indikator pengatur sterilitas juga ditempatkan di tengah bix. Tepi lembaran yang melapisi bix dilipat satu di atas yang lain. Indikator kontrol lainnya ditempatkan di atas, lebih dekat ke kunci bix. Tutup penutup kotak dengan kunci. Label - paspor - dipasang pada pegangan bix.

Tahap 3 – sterilisasi. Dressing dan linen disterilkan dengan autoklaf dalam kondisi standar.

Tahap 4 – penyimpanan bahan steril. Bukaan samping bix yang disterilkan harus ditutup. Kotak dengan bahan steril disimpan terpisah dengan kotak dengan bahan tidak steril. Setelah sterilisasi, biskuit yang belum dibuka dapat disimpan selama 3 hari, setelah dibuka selama 1 hari. Tempat sampah yang tidak terpakai disterilkan ulang.

MEMERIKSA KUALITAS STERILISASI

Pengendalian sterilitas dapat dilakukan dengan cara langsung dan tidak langsung (indirect). Cara langsung bersifat bakteriologis, inokulasi dilakukan dari benda steril. Ini dilakukan sebagai berikut: di ruang operasi, bix dibuka, potongan kecil kain kasa yang dibasahi dengan larutan natrium klorida isotonik dilewatkan di atas linen beberapa kali, setelah itu diturunkan ke dalam tabung reaksi. Bahan yang diambil dengan cara ini dikirim untuk pemeriksaan bakteriologis. Pengendalian bakteriologis dilakukan setiap 10 hari sekali. Ini adalah metode pengendalian sterilitas yang paling dapat diandalkan.

Metode tidak langsung digunakan untuk mengontrol sterilitas bahan secara langsung. Berkat mereka, Anda dapat mengevaluasi kualitas sterilisasi setiap bix. Metode tidak langsung didasarkan pada penempatan indikator termal ke dalam wadah yang disterilkan, yang menunjukkan apakah bahan yang disterilkan telah melewati suhu tertentu. Untuk indikator digunakan zat dengan titik leleh tertentu: asam benzoat (120°C), urea (132°C), tiourea (180°C). Mereka ditempatkan di ampul. Indikator ditempatkan bersama dengan barang yang disterilkan. Mencairnya bubuk dan transformasinya menjadi massa padat menunjukkan bahwa suhu sterilisasi sama dengan atau lebih tinggi dari titik leleh bahan kontrol.

PERAWATAN TANGAN

Tujuan dari desinfeksi tangan bedah adalah untuk membebaskan tangan dari mikroorganisme secara andal untuk waktu yang lama. Mempersiapkan tangan Anda ahli bedah dan asisten operasinya menghadapi kesulitan besar, karena ketidakmampuan menggunakan suhu tinggi dan larutan antiseptik pekat untuk ini. Sangat sulit untuk mendisinfeksi tangan dari mikroba yang menumpuk di saluran ekskresi kelenjar sebaceous dan keringat serta di folikel rambut. Dalam hal ini, selain membersihkan bakteri dan menghancurkannya di permukaan kulit dengan antiseptik, semua metode menyertakan penyamakan kulit sebagai komponen wajib untuk mempersempit pori-pori dan mencegah penetrasi mikroba ke permukaannya selama operasi.

Prinsip desinfeksi tangan bedah adalah pembersihan mekanis terlebih dahulu dan kemudian disinfeksi. Tangan dan lengan diolah terlebih dahulu selama 2-5 menit dengan sabun dan sikat. Perhatian khusus diberikan pada perawatan dasar kuku dan lipatan kulit, ruang interdigital. Setelah itu, tangan dibilas dan dikeringkan dengan tisu steril. Pada tahap akhir, disinfektan digunakan. Yang harus memenuhi persyaratan sebagai berikut:

• dengan cepat membunuh mikroflora patogen.
• secara andal membunuh kuman dalam cairan sarung tangan sehingga tangan tetap didesinfeksi selama pengoperasian.
• memiliki efek kumulatif sehingga tangan ahli bedah tetap bebas dari mikroorganisme bahkan di sela-sela prosedur desinfeksi.
• jangan mengiritasi kulit.

Metode Spasokukotsky – Kochergin.

Pertama, tangan dicuci di bawah keran dengan air panas, membersihkan “kotoran trem” (ungkapan Akademisi S.I. Spasokukotsky). Setelah mencuci dengan sabun dan air hangat, cuci tangan selama 6 menit (2 kali selama 3 menit) dalam dua baskom dengan larutan amonia 0,5%, menggunakan waslap dan kain kasa steril. Sebelum menuangkan larutan, baskom dibakar dengan alkohol. Setelah mencuci seperti itu, tangan dikeringkan dengan handuk steril dan diseka dengan bola kasa atau serbet kecil, yang banyak dibasahi dengan etil alkohol 96%. Kemudian, banyak ahli bedah melumasi dasar kuku dari lipatan kulit di punggung jari dengan larutan alkohol 5% yodium (iodonat). Meskipun penulis metode ini sendiri tidak merekomendasikan hal ini. Namun, pengalaman menunjukkan bahwa penambahan seperti itu tidak membahayakan, tetapi menambah kepercayaan diri dalam penyamakan kulit.

Metode Alfeld adalah salah satu metode tertua yang diusulkan untuk perawatan tangan. Tangan dicuci dengan sabun dan sikat di bawah keran selama 10 menit. Mereka mulai dengan mencuci tangan seperti biasa dengan sabun dan air hangat, setelah itu mereka mengambil sikat steril dengan tang dan, setelah menyabuninya, mulai merawat tangan dan lengan mereka secara sistematis. Secara konsisten, dimulai dengan 1 jari, usap jari dengan kuas, tanpa melewatkan satu milimeter pun permukaan kulit, rawat sela-sela kuku, lipatan kuku, dan lipatan kulit tangan dengan hati-hati, lalu lanjutkan ke lengan bawah. Proses hingga siku tertekuk. Tangan dipegang agar air mengalir dari tangan ke lengan bawah. Habiskan 2 menit pada masing-masing tangan, setelah itu sabun dicuci dengan air hangat yang mengalir, dan, dengan mengambil sikat steril kedua yang disediakan oleh perawat atau petugas, ulangi prosedur untuk perawatan berurutan; ulangi prosedur untuk perawatan jari secara berurutan, tangan dan sepertiga bagian bawah lengan bawah, luangkan waktu 5 menit lagi. Bilas sabun dengan air hangat mengalir dan keringkan tangan Anda dengan handuk atau serbet steril. Tangan kering diseka dengan serbet yang banyak dibasahi dengan alkohol 96% selama 3 menit dan dasar kuku dilumasi dengan larutan alkohol yodium.

Perawatan tangan dengan larutan hidrogen peroksida dan asam format. Resep "S-4" disiapkan pada hari operasi dari jumlah yang dibutuhkan 30-33% hidrogen peroksida (perhydrol) dan 85-100% asam format, yang dicampur dalam wadah steril dengan perbandingan 1: 2.4 dan disimpan tidak lebih dari sehari dalam wadah tertutup rapat di tempat sejuk. Untuk merawat tangan, gunakan larutan 2,4% formulasi “C-4”.

Sebelum merawat tangan dengan larutan resep “S-4”, cuci tangan dengan sabun dan air (tanpa sikat) selama 1 menit, lap kering dengan kain steril, kemudian rawat tangan dengan resep “C-4” untuk 1 menit dalam baskom enamel. Lap dengan kain steril dan kenakan sarung tangan steril.

Perawatan tangan dengan klorheksidin diglukonat. Untuk merawat tangan, gunakan larutan obat alkohol 0,5% (obat diencerkan dalam alkohol 70% dengan perbandingan 1:40). Setelah mencuci tangan terlebih dahulu dengan sabun dan selanjutnya menyeka dengan kain kasa steril, tangan diolah dengan dua kapas yang direndam dalam larutan alkohol klorheksidin 0,5% selama 2-3 menit.

Perawatan tangan dengan degmin dan degmicide. Sebelum mengobati dengan degmin atau degmicide, cuci tangan Anda dengan air hangat dan sabun selama 2-3 menit, bilas hingga bersih dan bersihkan dengan dua kapas, yang banyak dibasahi dengan larutan obat 1%, masing-masing selama 3 menit. Setelah itu, keringkan tangan Anda dengan tisu steril dan kenakan sarung tangan steril.

Perawatan tangan dengan cerigel. Obat tersebut mengandung cetylpyridinium klorida, deterjen kationik dengan aktivitas permukaan tinggi. Cairan Zerigel yang tidak berwarna dan tidak berwarna yang dioleskan pada kulit membentuk lapisan polimer aseptik tipis setelah alkohol menguap (efek polivinil butiral).

Setelah tangan diolah terlebih dahulu dengan sabun, oleskan 3-4 g cerigel pada kulit kering dan gosok secara menyeluruh selama 8-10 detik hingga sediaan menutupi permukaan palmar dan punggung, ruang interdigital, dan sepertiga distal lengan bawah. Keringkan tangan di udara atau di bawah kipas angin selama 2-3 menit, pastikan jari-jari tidak bersentuhan dan sedikit tertekuk. Metode perawatan tangan efektif dalam situasi darurat, saat bekerja di ruang ganti, selama perawatan bedah primer luka dll., film polimer dicuci dari tangan Anda setelahnya operasi atau manipulasi dengan etil alkohol 95%.

Perawatan tangan dengan iodofor. Cara yang sangat efektif dan cepat adalah dengan mengobati dengan iodophor (1% iodopyrone-polyvinylpyrolidone, povidone-iodine-betadine) dan hexachlorophene dalam larutan sabun (sampo) selama 3-5 menit. Pada saat yang sama, pembersihan dan desinfeksi tangan dilakukan, setelah itu dikeringkan dengan serbet dan mengenakan sarung tangan steril.

Perawatan USG pada tangan. Perangkat khusus dengan rendaman ultrasonik telah dirancang, di mana pencucian tangan dan desinfeksi dilakukan dalam waktu 1 menit. Tangan direndam dalam larutan antiseptik (larutan gibitan berair 0,5%), yang melaluinya gelombang ultrasonik dilewatkan, yang memastikan desinfeksi.

Perawatan tangan dengan rokkal. Rokkal adalah surfaktan dengan efek pembersihan dan desinfektan. Tersedia dalam silinder dengan kapasitas berbeda dalam larutan 10% dan 1%, cairan transparan kekuningan.

Tangan yang sebelumnya dicuci dengan sabun dibilas bersih dan direndam dalam baskom dengan larutan rokkala 1:1000 selama 2 menit. Untuk mengencerkan rokkala, gunakan air suling saja.

Perawatan tangan dengan iodopirone. Tangan dicuci dengan air mengalir dan sabun selama 1 menit dan dikeringkan dengan serbet steril, kemudian tangan direndam dalam baskom berisi larutan iodopirone 1% dan dicuci selama 4 menit dengan kain kasa steril.

Perawatan tangan dengan kembang sepatu. Tangan dibasahi dengan air sampai siku dan dioleskan 5 ml kembang sepatu, dicuci selama 1 menit. Kemudian bilas tangan hingga bersih dan oleskan kembali 5 ml Hibiscrub dan cuci tangan selama 2 menit. Disinfektan dicuci dengan larutan garam steril.

Perawatan tangan dengan SEPTOTSID R PLUS.

Cuci tangan Anda dengan sabun dan air, sebaiknya yang cair (pH netral), tanpa menggunakan sikat yang keras. Keringkan dengan serbet atau handuk steril sekali pakai. Rawat dasar kuku dan lipatan periungual dengan tongkat kayu steril sekali pakai yang dibasahi dengan antiseptik. Durasi: minimal 1 menit. Oleskan antiseptik pada tangan dan lengan dalam porsi 2,5-3 ml. Konsumsi per perawatan – 10 ml.

Gosokkan antiseptik ke kulit tangan Anda, cegah agar tidak mengering. Waktu pemrosesan 5 menit.

MEMAKAI PAKAIAN OPERASI

Medis staf (ahli bedah, asisten, perawat operasi) setelahnya bedah Saat mendisinfeksi tangan, kenakan pakaian steril (bebas dari mikroorganisme). Bahan tekstil longgar yang telah digunakan berkali-kali tidak cocok untuk gaun operasi, karena dapat menyerap keringat dan bakteri yang terdapat pada kulit anggota tim operasi (muncul pada gaun tersebut setelah 30 menit bekerja). Sebaiknya gunakan pakaian dalam dan jubah yang terbuat dari bahan katun tebal yang diresapi.Manset dan dasi harus elastis dan tidak menekan pergelangan tangan dan tangan. Masker harus menutupi mulut dan hidung Anda dengan rapat.

Setelah desinfeksi tangan bedah, tidak ada mikroorganisme pada kulit. Namun tak lama kemudian mikroorganisme muncul kembali dari saluran kelenjar keringat, folikel rambut, dan retakan mikro pada permukaan kulit, oleh karena itu untuk melakukan operasi secara aseptik perlu dilakukan isolasi tangan dengan sarung tangan karet steril.

Saat mengenakan sarung tangan, jangan menyentuh permukaan luarnya dengan tangan kosong.

Saat bekerja dengan sarung tangan, tangan Anda menjadi basah, apa yang disebut sari sarung tangan menumpuk di sana, yang mengandung konsentrat mikroflora yang mematikan, oleh karena itu, sebelum dan selama pengoperasian, keutuhan sarung tangan perlu diperhatikan. Sarung tangan yang rusak harus segera diganti. Jika pengoperasiannya lama, selama bekerja setiap 45-60 menit sarung tangan diberi pervomur 2,4% dan dilap dengan etil alkohol 96%. Sarung tangan juga harus dirawat setelah setiap tahap operasi, yang melibatkan pembukaan organ berongga.

PENGOBATAN BIDANG BEDAH

Persiapan bidang bedah dimulai pada masa pra operasi (mandi higienis, membersihkan kontaminan dengan eter atau bensin, merawat kulit dengan sabun hijau atau kalium, mencukur rambut di area bidang bedah). Menjelang operasi, pasien mandi dan pakaian dalamnya diganti. Di pagi hari, pada hari operasi, rambut di area bekas operasi dicukur dengan hati-hati. Untuk mencukur, gunakan pisau cukur yang tajam dan tidak menyebabkan iritasi kulit. Setelah bercukur, bersihkan kulit dengan alkohol. Rambut di area intervensi bedah yang akan datang juga dapat dihilangkan menggunakan krim obat menghilangkan rambut khusus. Hal ini memberikan kemudahan saat mengolah kulit di area lipatan dan mengurangi risiko kerusakan mikro yang terjadi saat mengolah dengan silet.

Metode klasik merawat bidang bedah menggunakan metode Grossikh-Filonchikov - pelumasan dengan larutan alkohol yodium 5% - saat ini tidak digunakan. Untuk merawat kulit di bidang bedah, iodonate, iodopyrone, dan larutan alkohol 0,5% dari chlorhexidine biglkionate saat ini paling sering digunakan.

Aturan dasar untuk memproses bidang bedah:

1. Proses secara luas.
2. Pengolahan dilakukan dari pusat hingga pinggiran.
3. Rawat area yang lebih terkontaminasi pada tahap terakhir.
4. Pemrosesan dilakukan berulang kali.

Bidang bedah dilumasi pertama kali sebelum penjahitan linen steril, kedua setelah penjahitan linen, ketiga sebelum penjahitan kulit, dan keempat setelah penjahitan kulit. Seperti yang ditunjukkan oleh banyak penelitian, yodium membuat kulit menjadi kecokelatan dan, menembus jauh ke dalam lipatan dan pori-pori, mendisinfeksi kulit.

Zat antiseptik lainnya juga digunakan untuk merawat bidang bedah (larutan degmicide 1%, larutan Rokcal atau Katamine A-B 1%, larutan Pervomura 2,4%). Untuk mendisinfeksi selaput lendir, mereka dilumasi dengan larutan hijau cemerlang 1%, larutan hidrogen peroksida 3%, larutan iodonate atau iodopirone 1%, serta larutan alkohol hibitan 0,5%.

Film steril khusus (pelindung) dapat digunakan untuk mengisolasi kulit pada area bedah.

PENCEGAHAN INFEKSI IMPLAN

Pencegahan infeksi tanaman dicapai dengan memastikan sterilitas yang ketat dari semua benda yang dimasukkan ke dalam tubuh pasien.

Ciri dari rute implantasi adalah bahwa dalam 100% kasus, infeksi menyebabkan perkembangan proses inflamasi bernanah. Benda asing yang tertinggal di jaringan mendukung proses inflamasi dalam waktu lama. Dalam beberapa kasus, enkapsulasi implan yang terinfeksi dapat terjadi, sementara mikroorganisme tidak mati, dan dapat menjadi sumber berjangkitnya proses purulen pada akhir periode pasca operasi. Sumber infeksi yang tidak aktif terbentuk.

Sumber infeksi implantasi.

• bahan jahitan
• endoprostesis
• struktur logam (staples staples, sekrup, jarum rajut, sekrup, pelat untuk osteosintesis),
• perangkat khusus (filter vasa, koil, stent, dll.)
• transplantasi organ dan jaringan.

STERILISASI BAHAN JAHIT

Bahan jahitan bedah harus steril, tahan sobek dan dapat ditoleransi dengan baik oleh jaringan, dan setelah melakukan fungsi pengikatannya, bahan tersebut harus diserap jika memungkinkan. Saat ini bahan jahitan ada banyak sekali jenisnya. Biasanya dibagi menjadi bahan yang berasal dari alam dan buatan. Bahan jahitan asal alami: sutra, benang katun dan catgut. Bahan jahitan tiruan terbuat dari bahan kimia sintetik: nilon, lavsan, fluorlon, poliester, dakron, dll.

Sterilisasi bahan jahitan dicapai dengan berbagai cara: termal, kimia, iradiasi gamma.

Sterilisasi sutra.

metode Kocher. Gulungan sutra dicuci dengan air hangat dan sabun, lalu dikeringkan. Luka sutra pada gulungan diangin-anginkan selama 12-24 jam untuk menghilangkan lemaknya. Setelah sutra dikeluarkan dari eter dengan alat steril, sutra direndam dalam etanol 70% untuk periode yang sama. Setelah diekstraksi dari alkohol, sutera direbus selama 10-20 menit dalam larutan sublimasi 1:1000. Simpan sutra steril dalam stoples tertutup rapat dengan etil alkohol 95%. Setelah dua hari, pengendalian bakteriologis dilakukan. Jika kulturnya steril, sutra dapat digunakan. Dalam stoples tertutup, alkohol diganti setiap 7 hari.

Sterilisasi catgut. Catgut adalah bahan asal organik. Catgut terbuat dari lapisan submukosa usus halus sapi atau babi. Sebagai protein heterogen, ia dapat menyebabkan reaksi jaringan yang kuat. Keunggulan catgut adalah setelah 6-12 hari diserap kembali di dalam tubuh. Berkat pelapisan krom (chrome-plated catgut), resorpsi catgut di dalam tubuh dapat diperpanjang hingga 15-40 hari. Catgut yang disamak tidak beracun. Catgut berlapis krom diproduksi dalam bentuk ampul atau kemasan aluminium foil dengan larutan pengawet (alkohol rektifikasi 96% - 89 ml, gliserin 6 ml, bensin penerbangan 1 ml, air suling 4 ml), disterilkan dengan iradiasi gamma

Metode kering mensterilkan benang catgut dalam uap yodium (menurut Sitkovsky). Catgut direndam di udara selama 12-24 jam. Benang catgut standar dipotong menjadi tiga bagian dan diseka secara menyeluruh dengan kain kasa yang direndam dalam larutan merkuri diklorida 1:1000. Benang yang diolah dengan sublimat dicelupkan ke dalam larutan kalium iodida 2%. Hal ini membuat catgut rentan terhadap uap yodium. Paparan dalam larutan ini ditentukan oleh ketebalan utas (semua angka nol - selama 30 detik, dan sisanya - untuk jumlah menit yang sesuai dengan nomor utas). Catgut digulung menjadi cincin, digantung pada benang panjang dan digantung dalam dua baris dalam toples kaca steril dengan penutup tanah. Jarak catgut dari dasar toples 60-70 mm. Kristal yodium pertama-tama dituangkan ke dasar toples, dengan mempertimbangkan ukuran toples dan menjaga konsentrasi uap yodium yang diperlukan. Perhitungan 20 bungkus catgut kering: dalam toples berkapasitas 3 liter - 40 g yodium, dalam toples berkapasitas 5 liter - 60 g yodium. Tutup toples diisi dengan parafin (di atas kain kasa steril). Stoples dikocok setiap hari untuk memastikan akses bebas uap yodium ke semua ruang di antara catgut. Catgut tipis (No. 0-1) siap setelah 3 hari, No. 2,3, 4 – setelah 4 hari, No. 5 dan 6 – setelah 5 hari. Setelah masa sterilisasi berakhir, catgut dipindahkan ke toples steril yang kering, kemudian kultur diambil untuk sterilitas.

Jalan sterilisasi benang catgut dengan larutan alkohol Lugol (menurut Gubarev). Benang catgut kering dengan panjang tidak lebih dari 1 m digulung menjadi cincin dan diisi dengan eter selama 12-24 jam. Eternya terkuras. Catgut dituangkan ke dalam larutan alkohol Lugol selama 8-10 hari (alkohol 96% - 1000 g, kalium iodida - 10 g, yodium murni - 10 g). Catgut diisi kembali dengan larutan Lugol segar selama 8-10 hari. Pada hari ke 16-20 sejak dimulainya sterilisasi, catgut dilakukan pengujian bakteriologis dan jika hasilnya baik, diperbolehkan untuk digunakan. Simpan catgut dalam larutan Lugol, ganti setiap 7-10 hari.

Metode mensterilkan benang catgut dalam larutan Lugol berair (menurut Heinaz-Claudius). Benang catgut kering dengan panjang tidak lebih dari 1 m digulung menjadi cincin dan diisi dengan eter selama 12-24 jam. Eter dikeringkan, dan catgut dituangkan ke dalam larutan Lugol berair selama 8-10 hari (air suling - 1000 g, kalium iodida - 20 g, yodium murni - 10 g). Setelah 8-10 hari, larutan Lugol encer diganti dengan yang baru dan catgut dibiarkan di dalamnya lagi selama 8-10 hari. Setelah 16-20 hari sejak dimulainya sterilisasi, larutan ditiriskan dan catgut diisi dengan etil alkohol 96% selama 4-6 hari, setelah itu diambil biakan untuk sterilitas. Simpan catgut dalam alkohol 96%, yang diganti setiap 7-10 hari.

Setiap porsi catgut harus menjalani pengendalian bakteriologis wajib. Inokulasi diambil dari setiap toples benang catgut yang berbeda ke dalam 6 tabung reaksi: 3 untuk kaldu dan 3 untuk media Tarozzi. Hasil pemeriksaan laboratorium disimpan dengan cermat. Label yang mencantumkan nomor catgut, tanggal mulai dan berakhir sterilisasi, tanggal dan nomor analisis bakteriologis ditempelkan pada toples catgut yang disetujui untuk digunakan.

Sterilisasi nilon. Nilon dapat disterilkan dengan cara direbus selama 20 menit.

Sterilisasi lavsan. Benang mylar dapat disterilkan dengan autoklaf, perebusan, dan larutan diosida (1:1000-1:5000).

Sebagian besar jenis bahan jahitan modern disterilkan di pabrik dengan iradiasi gamma.

Sterilitas bahan jahitan dikontrol dengan metode bakteriologis.

STERILISASI KONSTRUKSI, PROSTES, TRANSPLANTASI

Metode sterilisasi berbagai struktur dan prostesis bergantung pada jenis bahan pembuatnya.

Struktur logam disterilkan dalam autoklaf, oven panas kering atau dengan cara direbus.

Prostesis kain disterilkan dengan cara direbus atau dalam alat sterilisasi gas.

Prostesis dengan desain rumit disterilkan dengan metode kimia dalam alat sterilisasi gas atau dengan antiseptik kimia.

Saat ini, sebagian besar prostesis diproduksi melalui sterilisasi pabrik dengan iradiasi gamma.

Tidak mungkin mensterilkan transplantasi biologis, oleh karena itu jaminan pencegahan infeksi adalah kepatuhan terhadap aturan asepsis saat mengambil organ atau jaringan.

Jenis dressing dan linen bedah

Bahan pembalut antara lain bola kasa, tampon, serbet, perban, turundas, kapas kasa. Bahan pembalut biasanya disiapkan segera sebelum sterilisasi, menggunakan teknik khusus untuk mencegah setiap helai kain kasa berjumbai. Untuk memudahkan penghitungan, bola ditempatkan sebanyak 50-100 buah per tisu kasa, serbet dan tampon diikat menjadi 10 buah. Bahan pembalut tidak digunakan kembali, setelah digunakan dimusnahkan.

Linen operasi meliputi gaun bedah, seprai, handuk, dan linen. Bahan pembuatannya adalah kain katun. Linen bedah yang dapat digunakan kembali dicuci setelah digunakan, dan terpisah dari jenis linen lainnya.

Sterilisasi

Bahan ganti dan linen disterilkan dengan autoklaf dalam kondisi standar. Sebelum sterilisasi, dressing dan linen ditempatkan dalam wadah. Ada tiga jenis utama gaya bix: gaya universal, bertarget, dan spesifik.

Gaya universal. Biasanya digunakan saat bekerja di ruang ganti dan untuk operasi kecil. Bix secara konvensional dibagi menjadi beberapa sektor, yang masing-masing diisi dengan jenis bahan ganti atau linen tertentu: serbet ditempatkan di satu sektor, bola di sektor lain, tampon di sektor ketiga, dll.

Gaya yang ditargetkan. Dirancang untuk melakukan manipulasi, prosedur, dan operasi kecil yang khas. Misalnya penempatan untuk trakeostomi, kateterisasi vena subklavia, anestesi epidural, dll. Semua instrumen, pembalut dan linen yang diperlukan untuk prosedur ditempatkan di bix.

Jenis gaya. Biasanya digunakan di ruang operasi yang memerlukan bahan steril dalam jumlah besar. Dalam hal ini, misalnya, gaun bedah ditempatkan di satu wadah, seprai di wadah lain, serbet di wadah ketiga, dan seterusnya.

Bahan pembalut dalam jumlah kecil dalam kemasan yang telah mengalami sterilisasi radiasi digunakan. Ada juga set khusus linen bedah sekali pakai (gaun dan seprai) yang terbuat dari kain sintetis yang juga telah disterilkan secara radiasi.

Perawatan tangan ahli bedah

Membersihkan (mencuci) tangan ahli bedah merupakan prosedur yang sangat penting. Ada aturan tertentu dalam mencuci tangan.

Metode klasik perawatan tangan oleh Spasokukotsky-Kochergin, Alfeld, Furbringer dan lain-lain hanya memiliki kepentingan sejarah; saat ini metode tersebut tidak digunakan.

Metode modern dalam merawat tangan ahli bedah

Perawatan tangan ahli bedah terdiri dari dua tahap: mencuci tangan dan paparan agen antiseptik.

Cuci tangan

Penggunaan metode modern melibatkan mencuci tangan awal dengan sabun atau deterjen cair (tanpa adanya kontaminasi rumah tangga pada tangan).

Dampak antiseptik

Antiseptik kimia yang digunakan untuk merawat tangan harus memiliki sifat sebagai berikut:

Memiliki efek antiseptik yang kuat;

Tidak berbahaya bagi kulit tangan dokter bedah;

Mudah diakses dan murah (karena digunakan dalam jumlah banyak).

Metode perawatan tangan modern tidak memerlukan penyamakan khusus (mereka menggunakan antiseptik pembentuk film atau antiseptik dengan unsur penyamakan).

Tangan dirawat dengan hati-hati mulai dari ujung jari hingga sepertiga bagian atas lengan bawah. Pada saat yang sama, urutan tertentu diikuti, yang didasarkan pada prinsip tidak menyentuh kulit dan benda yang kurang bersih dengan area tangan yang dirawat.

Sarana perawatan tangan modern yang utama adalah Pervomur, chlorhexidine, degmin (degmicide), Cerigel, AHD, Eurosept, dll.

Perawatan tangan pertama

Pervomur (diusulkan pada tahun 1967 oleh F.Yu. Rachinsky dan V.T. Ovsipyan) adalah campuran asam format, hidrogen peroksida dan air. Ketika komponen-komponen tersebut digabungkan, asam kinerja terbentuk - antiseptik kuat yang menyebabkan pembentukan lapisan tipis pada permukaan kulit, menutup pori-pori dan menghilangkan kebutuhan akan penyamakan. Gunakan larutan 2,4% yang sudah disiapkan ex temporo.

Metodologi: Pencucian tangan dilakukan dalam baskom selama 1 menit, setelah itu tangan dikeringkan dengan serbet steril. Keuntungan dari metode ini adalah kecepatannya. Kerugian: kemungkinan berkembangnya dermatitis di tangan ahli bedah.

Perawatan tangan dengan klorheksidin

Larutan klorheksidin alkohol 0,5% digunakan, yang menghilangkan kebutuhan paparan tambahan terhadap alkohol untuk tujuan penyamakan, serta pengeringan karena penguapan larutan alkohol yang cepat.

Metodologi: tangan dirawat dua kali dengan kapas yang dibasahi antiseptik selama 2-3 menit. Kerugian relatif dari metode ini adalah durasinya.

Pengobatan dengan degmin dan degmicide

Antiseptik ini termasuk dalam kelompok surfaktan (deterjen).

Metodologi: perawatan dilakukan di baskom selama 5-7 menit, setelah itu tangan dikeringkan dengan serbet steril. Kerugian dari metode ini adalah durasinya.

Perawatan dengan AHD, AHD-khusus, Eurosept

Prinsip aktif dari kombinasi antiseptik ini adalah etanol, ester asam lemak poliol, dan klorheksidin.

Metodologi: obat-obatan ada dalam botol khusus, yang ketika Anda menekan tuas khusus, dosis obat tertentu dituangkan ke tangan ahli bedah, dan ia menggosokkan larutan ke kulit tangannya selama 2-3 menit. Prosedur ini diulangi dua kali. Tidak perlu penyamakan atau pengeringan tambahan. Metode ini praktis bebas dari kekurangan, saat ini dianggap paling progresif dan tersebar luas.

Meskipun metode perawatan tangan sudah ada, saat ini Ahli bedah harus melakukan semua operasi dan manipulasi yang bersentuhan dengan darah pasien hanya dengan mengenakan sarung tangan steril!

Jika manipulasi kecil diperlukan atau dalam situasi kritis, sarung tangan steril dapat dipakai tanpa perawatan tangan terlebih dahulu. Saat melakukan operasi bedah rutin, hal ini tidak boleh dilakukan, karena kerusakan pada sarung tangan dapat menyebabkan infeksi pada luka bedah.

Perawatan bidang bedah

Perawatan sanitasi dan higienis dilakukan terlebih dahulu (mencuci di bak mandi atau pancuran, mengganti tempat tidur dan pakaian dalam). Pada hari operasi, rambut di area bekas operasi dicukur (cukur kering). Di meja operasi, bidang bedah dirawat dengan antiseptik kimia (sediaan organik yang mengandung yodium, klorheksidin, pervomur, AHD, film perekat steril). Dalam hal ini, aturan berikut dipatuhi:

Pemrosesan yang luas;

Urutannya adalah “dari pusat ke pinggiran”;

Daerah yang terkontaminasi ditangani terakhir;

Perawatan berulang selama operasi (aturan Filonchikov-Grossikh): perawatan kulit dilakukan sebelum pembatasan

pakaian dalam yang steril, segera sebelum sayatan, serta sebelum dan sesudah penjahitan kulit.

Aturan untuk mempersiapkan operasi

Selain mengetahui dasar-dasar membersihkan tangan ahli bedah, bidang bedah, mensterilkan instrumen, dll., perlu mengikuti serangkaian tindakan tertentu sebelum memulai operasi bedah apa pun. Biasanya persiapan pembedahan dilakukan sebagai berikut.

Perawat operasi adalah orang pertama yang mempersiapkan operasi. Dia berganti pakaian operasi khusus, mengenakan penutup sepatu, topi, dan masker. Kemudian di ruang pra operasi, dia membersihkan tangannya sesuai dengan salah satu cara di atas, setelah itu dia masuk ke ruang operasi, membuka tas berisi linen steril (menggunakan pedal kaki khusus untuk membuka tutup kotak) dan memakainya. gaun steril, sekaligus memasukkan kedua tangan ke dalam lengan baju, tanpa menyentuh benda asing baik dengan gaun maupun tangan, yang dapat mengakibatkan pelanggaran sterilitas. Setelah itu, suster mengikat tali pada lengan jubah, dan perawat mengikat jubah di bagian belakang, tangannya tidak steril, sehingga dia hanya dapat menyentuh permukaan dalam jubah dan bagian yang menempel di atasnya. punggung saudarinya dan selanjutnya dianggap tidak steril.

Secara umum, selama seluruh operasi, pakaian perawat dan ahli bedah dianggap steril dari depan hingga pinggang. Tangan yang steril tidak boleh diangkat di atas bahu dan diturunkan di bawah pinggang, karena kemungkinan melanggar kemandulan karena gerakan yang ceroboh.

Setelah mengenakan pakaian steril, perawat mengenakan sarung tangan steril dan menyiapkan meja steril untuk melakukan intervensi: meja operasi kecil (atau besar) ditutup dengan empat lapis linen steril, kemudian instrumen dan pembalut steril yang diperlukan untuk operasi adalah diletakkan di atasnya dalam urutan tertentu.

Dokter bedah dan asistennya berganti pakaian dan merawat tangan mereka dengan cara yang sama. Setelah itu, salah satu dari mereka menerima dari tangan saudarinya sebuah alat panjang (biasanya tang) dengan serbet yang dibasahi dengan antiseptik, dan merawat area bedah, mengganti serbet dengan antiseptik beberapa kali. Perawat kemudian mendandani ahli bedah dan asistennya dengan pakaian steril, menutupi lengan steril mereka yang terentang dan mengikatkan tali di pergelangan tangan. Yang tertib mengikat gaun di bagian belakang.

Setelah mengenakan gaun steril, ahli bedah membatasi area operasi dengan linen bedah steril (seprai, linen atau handuk), mengamankannya dengan klip atau klip linen khusus. Perawat mengenakan sarung tangan steril di tangan ahli bedah. Sekali lagi, kulit dirawat dan sayatan dibuat, yaitu operasi bedah dimulai.

Metode pengendalian sterilitas

Segala tindakan yang berkaitan dengan pemrosesan dan sterilisasi instrumen, linen, dan hal-hal lain harus diawasi secara wajib. Mereka mengontrol efektivitas sterilisasi dan kualitas persiapan pra-sterilisasi.

Kontrol sterilitas

Metode pengendalian sterilitas dibagi menjadi langsung dan tidak langsung.

Metode langsung

Metode langsung pengendalian sterilitas adalah pemeriksaan bakteriologis: tongkat steril khusus dilakukan pada instrumen steril (kulit tangan ahli bedah atau bidang bedah, linen bedah, dll.), setelah itu ditempatkan dalam tabung reaksi steril dan dikirim ke laboratorium bakteriologis, di mana inokulasi dilakukan pada berbagai media nutrisi dan dengan demikian menentukan kontaminasi bakteri.

Metode bakteriologis untuk mengendalikan sterilitas adalah yang paling akurat. Poin negatifnya adalah lamanya penelitian: hasil kultur baru siap setelah 3-5 hari, dan instrumen harus segera digunakan setelah sterilisasi. Oleh karena itu, penelitian bakteriologis dilakukan sesuai rencana dan berdasarkan hasilnya, kesalahan metodologis dalam pekerjaan dinilai tenaga medis atau cacat pada peralatan yang digunakan. Menurut standar yang ada, yang sedikit berbeda untuk jenis instrumen yang berbeda, pemeriksaan bakteriologis harus dilakukan setiap 7-10 hari sekali. Selain itu, penelitian serupa dilakukan 2 kali setahun di semua departemen rumah sakit oleh layanan sanitasi dan epidemiologi kabupaten dan kota.

Metode tidak langsung

Metode pengendalian tidak langsung digunakan terutama ketika metode termal sterilisasi. Dengan bantuan mereka, Anda dapat menentukan suhu di mana perawatan dilakukan, tanpa memberikan jawaban pasti atas pertanyaan tentang ada tidaknya mikroflora. Keuntungan metode tidak langsung adalah kecepatan memperoleh hasil dan kemungkinan penggunaannya pada setiap sterilisasi.

Saat diautoklaf, ampul (tabung reaksi) berisi bahan tepung yang memiliki titik leleh pada kisaran 110-120 ° C biasanya dimasukkan ke dalam bis. Setelah sterilisasi, saat membuka bix, perawat pertama-tama memperhatikan ampul ini: jika bahan sudah meleleh, maka bahan (alat) tersebut dianggap steril, tetapi jika tidak, pemanasannya tidak mencukupi dan bahan tersebut tidak dapat digunakan. , karena tidak steril. Untuk metode ini, asam benzoat (titik leleh 120 °C), resorsinol (titik leleh 119 °C), dan antipirin (titik leleh 110 °C) paling sering digunakan. Alih-alih ampul, Anda dapat menempatkan indikator suhu atau termometer maksimum di Bix, yang juga dapat digunakan untuk menentukan suhu selama pemrosesan.

Metode tidak langsung serupa juga digunakan untuk sterilisasi dalam oven panas kering. Namun, di sini mereka menggunakan zat dengan titik leleh lebih tinggi (asam askorbat - 190 °C, asam suksinat - 190 °C, tiourea - 180 °C), dan indikator suhu atau termometer lainnya.

Kontrol kualitas perawatan pra-sterilisasi

Untuk mengontrol kualitas perawatan pra-sterilisasi, bahan kimia digunakan untuk mendeteksi jejak darah yang tidak dicuci atau residu deterjen pada instrumen. Reagen biasanya berubah warna dengan adanya zat yang sesuai (darah, deterjen alkali). Metode tersebut digunakan setelah perawatan sebelum sterilisasi.

Untuk mendeteksi apa yang disebut darah gaib, tes benzidine paling sering digunakan.

Untuk mendeteksi jejak deterjen digunakan indikator asam basa, yang paling umum adalah uji fenolftalein.

Pencegahan infeksi implantasi

Implantasi adalah memasukkan bahan dan perangkat asing buatan ke dalam tubuh pasien untuk tujuan terapeutik tertentu.

Fitur mencegah infeksi implantasi

Pencegahan infeksi implantasi - memastikan sterilitas yang ketat dari semua benda yang dimasukkan ke dalam tubuh pasien. Berbeda dengan jalur infeksi kontak, dengan implantasi, hampir 100% penularan terjadi. Tetap berada di tubuh pasien, di mana terdapat kondisi yang menguntungkan (suhu, kelembaban, nutrisi), mikroorganisme tidak mati dalam waktu lama dan sering mulai berkembang biak, menyebabkan nanah. Dalam hal ini, benda asing yang dimasukkan ke dalam tubuh selanjutnya mempertahankan proses inflamasi untuk waktu yang lama. Dalam beberapa kasus, terjadi enkapsulasi koloni mikroorganisme yang tidak mati dan dapat menjadi sumber berjangkitnya proses purulen dalam beberapa bulan atau tahun. Oleh karena itu, setiap organ yang ditanamkan kemungkinan merupakan sumber infeksi yang tidak aktif.

Sumber infeksi implantasi

Apa yang “ditinggalkan” oleh ahli bedah di tubuh pasien? Pertama-tama, bahan jahitannya. Hampir tidak ada intervensi yang dapat dilakukan tanpa hal ini. Rata-rata, selama operasi perut, dokter bedah memasang sekitar 50-100 jahitan.

Kemungkinan sumber infeksi implantasi adalah drainase - tabung khusus yang dirancang untuk keluarnya cairan, lebih jarang udara (drainase pleura) atau dimaksudkan untuk pemberian obat (kateter). Mengingat jalur penyebaran infeksi ini, bahkan terdapat konsep “sepsis kateter” (sepsis adalah penyakit menular umum yang parah, lihat Bab 12).

Selain bahan jahitan dan drainase, tubuh pasien juga mengandung katup jantung prostetik, pembuluh darah, sendi, dll, berbagai struktur logam (staples, staples dari alat jahitan, sekrup, jarum rajut, sekrup dan pelat untuk osteosintesis), perangkat khusus ( cava- filter, koil, stent, dll.), jaring sintetis, homofascia, dan terkadang organ transplantasi.

Semua implan tentunya harus steril. Metode sterilisasi tergantung pada bahan pembuatannya. Banyak prostesis memiliki desain yang rumit dan aturan sterilisasi khusus yang ketat. Jika saluran karet dan kateter dapat disterilkan dalam autoklaf atau direbus, maka beberapa produk plastik, serta bahan heterogen, harus disterilkan menggunakan metode kimia (dalam larutan antiseptik atau alat sterilisasi gas).

Pada saat yang sama, sterilisasi pabrik dengan sinar- kini diakui sebagai metode utama, paling andal, dan nyaman.

Kemungkinan sumber utama infeksi implantasi adalah bahan jahitan yang terus-menerus digunakan oleh ahli bedah.

Sterilisasi bahan jahitan

Jenis bahan jahitan

Bahan jahitannya heterogen, karena fungsinya yang berbeda. Dalam satu kasus, kekuatan benang adalah yang paling penting, dalam kasus lain - resorpsinya seiring waktu, dalam kasus ketiga - kelembaman dalam kaitannya dengan jaringan di sekitarnya, dll. Selama operasi, dokter bedah memilih jenis benang yang paling cocok untuk setiap jahitan tertentu. Jenis bahan jahitannya cukup beragam.

Bahan jahitan yang berasal dari alam dan buatan

Bahan jahitan yang berasal dari alam antara lain sutra, benang katun dan catgut. Asal usul dua spesies pertama sudah diketahui. Catgut terbuat dari lapisan submukosa usus sapi. Bahan jahitan asal buatan saat ini diwakili oleh sejumlah besar benang yang dibuat dari bahan kimia sintetis: nilon, lavsan, fluorolone, poliester, dacron, dll.

Bahan jahitan yang dapat diserap dan tidak dapat diserap

Jahitan yang dapat diserap digunakan untuk menjahit jaringan yang mengalami penyembuhan cepat jika kekuatan mekanik yang tinggi tidak diperlukan. Bahan ini digunakan untuk menjahit otot, serat, dan selaput lendir saluran cerna, saluran empedu, dan saluran kemih. Dalam kasus terakhir, penerapan jahitan yang dapat diserap menghindari pembentukan batu karena pengendapan garam pada pengikat. Contoh klasik dari bahan jahitan yang dapat diserap adalah catgut. Benang catgut terserap sempurna di dalam tubuh setelah 2-3 minggu. Perpanjangan waktu resorpsi, serta peningkatan kekuatan catgut, dicapai dengan impregnasi benang dengan logam (catgut berlapis krom, lebih jarang - catgut perak), dalam hal ini waktu resorpsi meningkat menjadi 1-2 bulan .

Bahan sintetis yang dapat diserap antara lain dexon, vicryl, oxylon. Waktu resorpsinya kira-kira sama dengan catgut berlapis krom, namun kekuatannya meningkat, sehingga memungkinkan penggunaan benang yang lebih tipis.

Semua benang lainnya (sutra, nilon, lavsan, poliester, fluor, dll.) disebut tidak dapat diserap - benang tersebut tetap berada di tubuh pasien seumur hidup (kecuali jahitan kulit yang dapat dilepas).

Bahan jahitan dengan struktur benang berbeda

Ada bahan jahitan yang dikepang dan dipelintir. Anyaman lebih sulit dibuat, namun lebih tahan lama. Kemajuan ilmu kimia akhir-akhir ini membuka kemungkinan untuk digunakannya benang berbentuk monofilamen yang memiliki kekuatan mekanik tinggi dengan diameter kecil. Monofilamen digunakan dalam bedah mikro, bedah kosmetik, dan operasi pada jantung dan pembuluh darah.

Bahan jahitan traumatis dan atraumatik

Selama bertahun-tahun, selama operasi pembedahan, perawat operasi, segera sebelum menjahit, memasukkan benang yang sesuai ke dalam lubang jarum bedah yang dapat dilepas. Bahan jahitan seperti itu saat ini disebut traumatis.

Dalam beberapa dekade terakhir, bahan jahitan atraumatik telah tersebar luas. Di pabrik, benang terhubung erat ke jarum dan dimaksudkan untuk menerapkan satu jahitan. Keuntungan utama dari bahan jahitan atraumatik adalah perkiraan kesesuaian diameter benang dengan diameter jarum (bila menggunakan bahan traumatis, ketebalan benang jauh lebih kecil daripada diameter lubang jarum), sehingga, benang hampir seluruhnya menutupi cacat pada jaringan setelah melewati jarum. Dalam hal ini, bahan jahitan atraumatiklah yang harus digunakan untuk jahitan vaskular dan kosmetik. Dengan mempertimbangkan juga ketajaman jarum sekali pakai dan kemudahan penggunaan, harus diasumsikan bahwa dalam waktu dekat bahan jahitan atraumatik akan secara bertahap menggantikan bahan jahitan traumatis.

Ketebalan benang

Untuk kemudahan penggunaan, semua utas diberi nomor tergantung pada ketebalannya. Benang yang paling tipis adalah No. 0, yang paling tebal adalah No. 10. Dalam operasi bedah umum, benang dari No. 1 hingga No. 5 biasanya digunakan. Benang No. 1, misalnya, dapat digunakan untuk menjahit atau mengikat pembuluh darah kecil, memasang jahitan serosa abu-abu pada dinding usus. Benang No. 2 dan 3 - untuk mengikat pembuluh darah berukuran sedang, menerapkan jahitan serosa-otot pada usus, menjahit peritoneum, dll. Benang No. 5 biasanya digunakan untuk menjahit aponeurosis.

Saat melakukan operasi vaskular, terutama intervensi bedah mikro, diperlukan benang yang lebih tipis daripada benang No. 0. Utas seperti itu mulai diberi No. 1/0, 2/0, 3/0, dll. Benang tertipis yang saat ini digunakan dalam oftalmologi dan operasi pembuluh limfatik adalah No. 10/0. Perlu dicatat bahwa benang juga berbeda dalam sifat lainnya: beberapa meluncur lebih baik dan cenderung terurai, yang lain muncul kembali saat dikencangkan, kurang lebih lembam dibandingkan dengan kain, lebih atau kurang tahan lama, dll.

Baru-baru ini, benang dengan aktivitas antimikroba telah tersebar luas karena masuknya antiseptik dan antibiotik ke dalam komposisinya (letilan-lavsan, fluorlon, dll.).

Klip logam, terminal, dan klip yang terbuat dari baja tahan karat, titanium, tantalum, dan paduan lainnya berdiri agak terpisah.

Bahan jahitan jenis ini digunakan pada mesin jahitan khusus.

Metode mensterilkan bahan jahitan

Saat ini metode utama sterilisasi bahan jahitan adalah sterilisasi radiasi di pabrik. Hal ini sepenuhnya berlaku untuk bahan jahitan atraumatik: jarum dan benang ditempatkan dalam kemasan tertutup terpisah, yang menunjukkan ukuran, kelengkungan dan jenis (menusuk atau memotong) jarum, bahan, panjang dan nomor benang. Bahan jahitan disterilkan, kemudian dikirim dalam kemasan ke institusi medis.

Anda juga bisa mensterilkan benang saja. Selain itu, potongan benang dapat ditempatkan dalam ampul kaca tertutup dengan larutan antiseptik khusus, dan gulungan benang dapat ditempatkan dalam wadah tertutup khusus dengan larutan yang sama.

Metode klasik mensterilkan sutra (metode Kocher) dan catgut (metode Sitkovsky dalam uap yodium, metode Gubarev dan Claudius dalam alkohol dan larutan Lugol berair) saat ini dilarang untuk digunakan karena durasi, kompleksitas dan efektivitasnya yang tidak selalu memadai.

Sterilisasi struktur, prostesis, transplantasi

Metode mensterilkan implan bergantung sepenuhnya pada bahan pembuatannya.

Struktur logam untuk osteosintesis (pelat, sekrup, sekrup, jarum rajut) disterilkan bersama dengan instrumen logam non-pemotongan dalam autoklaf atau oven panas kering.

Prostesis yang lebih kompleks (prostesis katup jantung, sambungan), tidak hanya terdiri dari logam, tetapi juga bagian plastik, paling baik disterilkan dengan metode kimia - dalam alat sterilisasi gas atau dengan merendam dalam larutan antiseptik.

Baru-baru ini, produsen prostesis terkemuka telah memproduksinya dalam kemasan tertutup, disterilkan dengan radiasi.

Selain berbagai struktur dan prostesis, organ alogenik yang diambil dari organisme lain selama operasi transplantasi dapat menjadi sumber infeksi implantasi. Sterilisasi transplantasi tidak mungkin dilakukan, oleh karena itu, saat mengambil organ, sterilitas yang paling ketat harus diperhatikan: operasi pengumpulan dilakukan sesuai dengan aturan aseptik yang sama seperti intervensi bedah konvensional. Setelah dikeluarkan dari tubuh donor dan dicuci dengan larutan steril, organ tersebut ditempatkan dalam wadah tertutup khusus, di mana organ tersebut tetap dalam kondisi steril sampai transplantasi.

KE bahan ganti termasuk bola kasa, tampon, serbet, perban, turundas, penyeka kapas. Bahan pembalut biasanya disiapkan segera sebelum sterilisasi, menggunakan teknik khusus untuk mencegah setiap helai kain kasa berjumbai. Untuk memudahkan penghitungan, bola-bola ditempatkan sebanyak 50-100 buah di dalam kain kasa, serbet dan tampon diikat menjadi 10 buah. Bahan pembalut tidak digunakan kembali, setelah digunakan dimusnahkan.

KE linen operasi termasuk gaun bedah, seprai, handuk, pelapis. Bahan pembuatannya adalah kain katun. Linen bedah yang dapat digunakan kembali dicuci setelah digunakan, dan terpisah dari jenis linen lainnya.

2.2.2. Sterilisasi dressing dan linen bedah

Bahan ganti dan linen disterilkan dengan autoklaf dalam kondisi standar. Sebelum sterilisasi, dressing dan linen ditempatkan dalam wadah. Ada tiga jenis utama gaya bix: gaya universal, bertarget, dan spesifik.

Gaya universal

Biasanya digunakan saat bekerja di ruang ganti dan untuk operasi kecil. Bix secara konvensional dibagi menjadi beberapa sektor, yang masing-masing diisi dengan jenis bahan ganti atau linen tertentu: serbet ditempatkan di satu sektor, bola di sektor lain, tampon di sektor ketiga, dll.

Gaya yang ditargetkan

Dirancang untuk melakukan manipulasi, prosedur, dan operasi kecil yang khas. Misalnya, penempatan untuk trakeostomi, kateterisasi vena subklavia, anestesi epidural, dll., semua instrumen, pembalut dan linen yang diperlukan untuk prosedur ditempatkan di bix.

Ketik gaya

Biasanya digunakan di ruang operasi yang memerlukan bahan steril dalam jumlah besar. Dalam hal ini, misalnya, gaun bedah ditempatkan di satu wadah, seprai di wadah lain, serbet di wadah ketiga, dan seterusnya. Bahan pembalut digunakan dalam jumlah kecil dalam kemasan yang telah menjalani sterilisasi radiasi. Ada juga set khusus linen bedah sekali pakai (gaun dan seprai) yang terbuat dari kain sintetis yang juga telah disterilkan secara radiasi.

2.3 Metode pengendalian sterilitas

Segala tindakan yang berkaitan dengan pemrosesan dan sterilisasi instrumen, linen, dan hal-hal lain harus diawasi secara wajib. Mereka mengontrol efektivitas sterilisasi dan kualitas persiapan pra-sterilisasi.

Metode pengendalian sterilitas dibagi menjadi langsung dan tidak langsung.

2.3.1. Metode langsung untuk pengendalian sterilitas

Ini adalah studi bakteriologis. Metodologi : usap steril khusus dilewatkan pada instrumen steril (kulit tangan ahli bedah atau bidang bedah, linen bedah, dll.), setelah itu ditempatkan dalam tabung reaksi steril dan dikirim ke laboratorium bakteriologis, tempat inokulasi dilakukan keluar pada berbagai media nutrisi dan dengan demikian kontaminasi bakteri ditentukan. Metode bakteriologis untuk mengendalikan sterilitas adalah yang paling akurat. Poin negatifnya adalah lamanya penelitian: hasil kultur baru siap setelah 3-5 hari, dan instrumen harus segera digunakan setelah sterilisasi. Oleh karena itu, penelitian bakteriologis dilakukan sesuai rencana dan berdasarkan hasilnya, kesalahan metodologis dalam pekerjaan tenaga medis atau cacat pada peralatan yang digunakan dinilai. Menurut standar yang ada, yang sedikit berbeda untuk jenis instrumen yang berbeda, pemeriksaan bakteriologis harus dilakukan setiap 7-10 hari sekali. Selain itu, penelitian serupa dilakukan dua kali setahun di semua departemen rumah sakit oleh layanan sanitasi dan epidemiologi regional dan kota.

Bahan yang digunakan untuk mengeringkan luka dan bidang bedah, tamponade luka, membalut, dll disebut bahan pembalut. Bahan pembalut harus sangat higroskopis (menyerap cairan luka dengan baik), cepat kering, mempunyai elastisitas dan kekuatan, tidak menimbulkan reaksi alergi, tidak merusak sifat-sifatnya selama sterilisasi, mudah didapat dan murah, mengingat besarnya konsumsi bahan pembalut. Bahan yang paling umum adalah kain kasa, kapas, lignin, dan perban elastis. Perban, serbet, tampon, bola, turundas, dll terbuat dari kain kasa. Kapas putih penyerap memiliki daya isap yang besar dan melindungi luka dari pengaruh luar. Kapas dioleskan pada luka di atas kain kasa agar kapas tidak lengket dan tidak ada serabut yang tertinggal pada luka. Lignin (lembaran kertas tipis bergelombang yang terbuat dari kayu) digunakan sebagai pengganti kapas. Perban tubular elastis "Retelast" dan perban tubular rajutan banyak digunakan untuk mengamankan perban.

Dalam keadaan darurat, jika tidak ada bahan pembalut steril, kain bersih apa pun yang sebelumnya telah disetrika dengan baik dapat digunakan. Jika tidak memungkinkan untuk mensterilkan bahan pembalut dengan cara ini, maka kain kasa, linen, belacu, dll yang tidak steril harus dibasahi dengan larutan rivanol, kalium permanganat, asam borat (sepertiga sendok teh asam borat per gelas air matang) atau larutan desinfektan lainnya.
Cara paling efektif untuk mensterilkan dressing dan linen bedah adalah sterilisasi dengan uap bertekanan dalam alat sterilisasi uap (autoklaf). Ketika direbus pada tekanan normal, air mendidih dan menghasilkan uap pada suhu 100°. Ketika tekanan meningkat sebesar 0,5 atmosfer, perebusan dan penguapan dimulai pada suhu 110°, yang menciptakan kondisi kematian semua mikroba, termasuk mikroba yang tahan terhadap suhu tinggi (paparan selama 1 jam). Ketika tekanan meningkat menjadi 1 atmosfer pada suhu 120-126°, pemaparan harus 45 menit; pada tekanan uap 1,5 atmosfer pada suhu 127-133°, lama sterilisasi adalah 30 menit; uap yang dihasilkan dengan cara direbus pada tekanan 2 atmosfer memiliki suhu 134° dan membunuh mikroba dalam waktu 15-20 menit.
Jika autoklaf berfungsi dengan baik, maka Anda hanya perlu memantau pengukur tekanan dan menjaga waktu yang ditentukan untuk sterilisasi. Jika autoklaf rusak, pengujian tambahan dilakukan untuk menentukan efektivitas sterilisasi. Pengujian Mikulicz terdiri dari menuliskan kata “disterilkan” pada selembar kertas, kemudian kertas tersebut ditutup dengan lapisan pasta kanji, dan setelah kertas agak kering, dibasahi dalam larutan Lugol. Kertasnya berubah warna menjadi biru tua sehingga tulisan “sterilisasi” tidak terlihat lagi. Kertas dikeringkan kemudian dimasukkan ke dalam bahan yang akan disterilkan. Jika terkena suhu di atas 100°, warna biru tua akan hilang dan tulisan “sterilized” akan terlihat kembali. Pengendalian lebih efektif dengan sulfur, antipirin, antifibrin, resorsinol, asam benzoat, fenacetin, urea atau naftol, yang memiliki titik leleh lebih tinggi (dari 111 hingga 135°). Zat-zat yang terdaftar dalam bentuk potongan atau bubuk ditempatkan dalam tabung reaksi atau botol, ditutup dengan sumbat; ketika suhu yang sesuai tercapai dalam autoklaf, mereka meleleh, dan ketika didinginkan, mereka membentuk massa yang kompak. Lebih sering mereka menggunakan belerang atau antipirin (belerang meleleh pada suhu 126°, antipirin pada 110°). Teknik yang baik untuk memantau sterilisasi adalah penggunaan pita kasa indikator berwarna (pada suhu berbeda warnanya berubah dengan intensitas berbeda). Bahan yang disterilkan harus kering, jika tidak maka sterilitasnya dipertanyakan.
Autoklaf adalah wadah logam dengan dinding kuat ganda, di antaranya dituangkan air, tutupnya ditutup dengan sekrup, kemudian air dipanaskan dari bawah dengan alat pemanas. Pada permukaan luar autoklaf terdapat katup pengaman, pengukur tekanan, termometer, corong untuk mengisi air dan keran untuk mengalirkan air. Ketika air mendidih, uap yang dihasilkan mengisi wadah bagian dalam autoklaf, tempat pembalut, linen, dan produk lainnya ditempatkan terlebih dahulu di dalam kantong atau dalam kotak (kantong) logam sterilisasi khusus.
Bixes mempunyai penutup yang dapat ditutup, pada dinding samping terdapat lubang-lubang untuk mengalirkan uap ke dalam bixes, lubang-lubang ini ditutup setelah disterilisasi dengan pelek logam yang dapat digerakkan. Ini menyegel wadah, yang dapat disimpan di luar autoklaf selama 2 hari. Paruhnya dilapisi dari dalam dengan serbet atau linen. Saat mengisi gelas kimia, Anda perlu memastikan bahwa uap dapat dengan bebas menembus ke dalam gelas kimia. Selain itu, bahannya dilipat vertikal mungkin sehingga barang apa pun bisa dikeluarkan tanpa mengganggu orang lain. Lebih mudah untuk mengisi wadah dengan bahan yang homogen; jangan mencampur, misalnya, linen bedah dan gaun pelindung dengan bahan pembalut.
Aturan serupa berlaku untuk penempatan dressing dan linen bedah di dalam tas untuk autoklaf. Salah satu cirinya: bahan yang akan disterilkan ditempatkan dalam dua kantong, diletakkan satu di atas yang lain, dengan ikatan berbentuk kantong. Hal ini dilakukan agar setelah sterilisasi Anda dapat melepaskan ikatan kantong bagian atas dengan tangan yang tidak steril dan memindahkannya ke bawah. Dokter kemudian dapat, dengan menggunakan sarung tangan steril atau menggunakan instrumen steril, mengeluarkan kantong bagian dalam dan meletakkannya di atas tirai steril di ruang operasi atau ruang ganti.
Penggunaan kembali bahan pembalut setelah pencucian dan autoklaf hanya dapat dilakukan setelah operasi bersih berlumuran darah, tetapi tidak berlumuran nanah.