Asepsis, Definition. Das Grundgesetz der Asepsis. Grundlegende Methoden zur Sterilisation von Instrumenten, Verbänden und Wäsche. Sterilitätskontrolle. Sterilisation von Verbänden: Methoden und Ausrüstung Sterilisation von Verbänden zu Hause

STERILISATION VON VERKLEIDUNGSMATERIAL UND WÄSCHE a) Arten von Verbandsmaterial und OP-Wäsche. Zu den Verbandsmaterialien gehören Mullbällchen, Tampons, Servietten, Bandagen, Turundas, Wattestäbchen. Das Verbandmaterial wird in der Regel unmittelbar vor der Sterilisation vorbereitet, wobei spezielle Techniken angewendet werden, um ein Ablösen zu verhindern einzelne Threads Gaze. Um das Zählen zu erleichtern, werden die Kugeln in Gruppen von 50–100 in Mullservietten gelegt und Servietten und Tampons zu jeweils 10 Stück zusammengebunden. Das Verbandmaterial wird nicht wiederverwendet und nach Gebrauch verbrannt. Zur OP-Wäsche gehören OP-Kittel, Bettlaken, Handtücher und Bettwäsche. Das Material für ihre Herstellung sind Baumwollstoffe. Nach Gebrauch wird wiederverwendbare OP-Wäsche getrennt von anderen Wäschearten gewaschen. b) Sterilisation Verbände und Wäsche werden durch Autoklavieren unter Standardbedingungen sterilisiert. Vor der Sterilisation Dressing und die Wäsche wird in Behälter geworfen. Es gibt drei Haupttypen des Bix-Stylings: Universelles Styling Wird typischerweise in Umkleidekabinen und bei kleineren Operationen verwendet. Bix ist herkömmlicherweise in Sektoren unterteilt, und jeder von ihnen ist mit einer bestimmten Art von Verbandmaterial oder Leinen gefüllt: Servietten werden in einen Sektor gelegt, Servietten in einen anderen - Bälle, im dritten - Tampons usw. Gezieltes Styling Entwickelt für die Durchführung typischer Manipulationen, Verfahren und kleinerer Operationen. Zum Beispiel eine Box für die Tracheotomie, für die Katheterisierung der Vena subclavia, für die Epiduralanästhesie usw. In der Box werden alle für den Eingriff notwendigen Instrumente, Verbände und Wäsche untergebracht. Schriftstil Wird typischerweise in Operationssälen verwendet, in denen große Mengen an steriles Material.. In diesem Fall werden beispielsweise OP-Kittel in eine Schachtel gelegt, Laken in eine andere, Servietten in die dritte usw. In kleinen Mengen wird strahlensterilisiertes Verbandsmaterial in Verpackungen verwendet. Es gibt auch spezielle Sätze von Einweg-OP-Wäsche (Mäntel und Laken), hergestellt aus synthetischen Stoffen, die auch einer Strahlensterilisation unterzogen wurden. METHODEN DER STERILITÄTSKONTROLLE Alle Maßnahmen im Zusammenhang mit der Verarbeitung und Sterilisation von Instrumenten, Wäsche usw. unterliegen einer obligatorischen Kontrolle. Sowohl die Wirksamkeit als auch die Wirksamkeit Überwachung der Sterilisation und der Qualität der Vorbereitung vor der Sterilisation. a) Sterilitätskontrolle Alle Methoden der Sterilitätskontrolle werden in direkte und indirekte unterteilt. ~ Direkte Methode Sterilitätskontrolle ist bakteriologische Untersuchung: Mit einem speziellen sterilen Stab werden sterile Instrumente (die Haut der Hände des Chirurgen oder Chirurgischer Bereich Anschließend wird es in ein steriles Röhrchen gegeben und an ein bakteriologisches Labor geschickt, wo es auf verschiedenen Nährmedien beimpft und so die bakterielle Kontamination festgestellt wird. Die bakteriologische Methode zur Sterilitätskontrolle ist die genaueste. Der negative Punkt ist die Dauer der Studie: Das Kulturergebnis liegt erst nach 3-5 Tagen vor und die Instrumente müssen unmittelbar nach der Sterilisation verwendet werden. Daher wird die bakteriologische Forschung wie geplant und auf der Grundlage ihrer Ergebnisse durchgeführt methodische Fehler bei der Arbeit des medizinischen Personals oder Mängel an der verwendeten Ausrüstung. Nach bestehenden Standards, die sich geringfügig unterscheiden verschiedene Typen Instrumente sollte eine bakteriologische Untersuchung alle 7-10 Tage durchgeführt werden. Indirekte Methoden Kontrollen werden hauptsächlich bei thermischen Sterilisationsverfahren verwendet und ermöglichen die Bestimmung der Temperatur, bei der die Behandlung durchgeführt wurde, ohne eine genaue Antwort auf das Vorhandensein oder Fehlen von Mikroflora zu geben. Der Vorteil indirekter Methoden liegt in der Schnelligkeit der Ergebnisse und der Möglichkeit der Anwendung bei jeder Sterilisation. Beim Autoklavieren wird üblicherweise eine Ampulle (Reagenzglas) mit einer pulverförmigen Substanz mit einem Schmelzpunkt im Bereich von 110-120 °C eingelegt ein bis. Nach der Sterilisation achtet die Krankenschwester beim Öffnen des Bix zunächst auf diese Ampulle: Wenn die Substanz geschmolzen ist, kann das Material (Instrumente) als steril angesehen werden. Andernfalls war die Erwärmung unzureichend und das Material kann nicht verwendet werden, da es unsteril ist. Für diese Methode werden am häufigsten verwendet: Benzoesäure ((° Schmelzpunkt - 120°C), Resorcin (<; ° плавл. - 119°С), антипирин (1° geschmolzen - 110°C). Anstelle einer Ampulle kann auch ein Temperaturindikator oder ein Maximumthermometer in den Bix eingesetzt werden, mit dem sich auch feststellen lässt, ob während des Verarbeitungsprozesses die erforderliche Temperatur erreicht wurde.

9. Autoklavengerät. Sterilisationstechnik.

Grundsätzlich verfügt jeder Autoklav über eine Arbeitskammer, einen Dampferzeuger mit Manometer, ein Heizelement, ein Dampfversorgungssystem, ein Dampfablassventil und ein Sicherheitsventil. Autoklaviertechnik umfasst folgende Aktionen:1. Wasser in den Dampfgenerator gießen.2. Platzierung der Bixes in der Autoklavenkammer.3. Wasser erhitzen, bis sich Dampf bildet.4. Erhöhung des Drucks in der Arbeitskammer auf 1 atm. und Ablassen der Restluft.5. Druck auf Sterilisationsmodus erhöhen.6. Beim Sterilisationsprozess sollten folgende Parameter berücksichtigt werden: 1,1 atm. - 121,2°C - 60 Min., 1,5 atm. - 126,8°C - 45 Min., 2 atm. - 132, 9°C - 30 Min., 2, 2" - 135, HS - 20 Min., 2, 4" - 137, 2°C - 15 Min.7. Ausschalten des Autoklaven.8. Freisetzung von Dampf, wodurch der Druck in der Kammer auf Null sinkt.9. Trocknen Sie die Wäsche 5 Minuten lang. bei geschlossenem Deckel.10. Den Deckel öffnen, die Behälter herausnehmen, die Ringe an den Fässern schließen.11. Abfluss von Wasser aus dem Dampferzeuger.12. Trocknen des Autoklaven. Ein geschlossener Behälter hält die Sterilität der darin enthaltenen Gegenstände 72 Stunden lang aufrecht.

10. Methoden zur Sterilisation optischer Instrumente.Sterilisation optischer Instrumente Die Hauptmethode zur Sterilisation optischer Instrumente, die mit Ausnahme des Erhitzens die schonendste Behandlung erfordern, ist die Gassterilisation. Alle Instrumente für laparoskopische und thorakoskopische Eingriffe werden mit dieser Methode verarbeitet, was mit ihrem komplexen Design und hohen Kosten verbunden ist. Bei der Sterilisation von Fasern Gastroskope, Choledochoskope, Koloskope Es ist auch möglich, eine Kaltsterilisation mit chemischen Antiseptika (Ethylalkohol, Chlorhexidin, Sidex - ein Zweikomponentenpräparat auf Glutaraldehydbasis) durchzuführen. Es ist besonders zu beachten, dass die beste Möglichkeit zur Vorbeugung von Kontaktinfektionen die Verwendung ist Einweginstrumente, die einer Strahlensterilisation im Werk unterzogen wurden.

11. Nahtmaterial, Klassifizierung. Sterilisation von Seide, Nylon.

STERILISATION VON NAHTMATERIAL a) Arten von Nahtmaterial Es gibt eine ausreichende Vielfalt an Nahtmaterialarten. Nahtmaterial natürlichen und künstlichen Ursprungs Zu den Nahtmaterialien natürlichen Ursprungs gehören Seide, Baumwollfaden und Katgut. Catgut wird aus der submukösen Schicht des Darms von Rindern hergestellt. Nahtmaterial künstlichen Ursprungs wird derzeit durch eine große Anzahl von Fäden aus synthetischen Chemikalien repräsentiert: Nylon, Lavsan, Fluorolon, Polyester, Dacron usw. Resorbierbares und nicht resorbierbares Nahtmaterial Resorbierbares Nahtmaterial wird zum Nähen von schnell heilendem Gewebe in Fällen verwendet, in denen keine hohe mechanische Festigkeit erforderlich ist. Dieses Material wird zum Zusammennähen von Muskeln, Fasern und Schleimhäuten des Magen-Darm-Trakts, der Gallen- und Harnwege verwendet. Ein klassisches Beispiel für ein resorbierbares Nahtmaterial ist Catgut. Catgut-Fäden werden nach 2-3 Wochen vollständig vom Körper aufgenommen. Zu den synthetischen resorbierbaren Materialien gehören Dexon, Vicryl und Oxcylon. Fristen ihre Die Resorption ist ungefähr die gleiche wie bei verchromtem Katgut, sie weisen jedoch eine höhere Festigkeit auf, was die Verwendung dünnerer Fäden ermöglicht. Alle anderen Fäden (Seide, Nylon, Lavsan, Polyester, Fluor, Metallklammern usw.) sind nicht resorbierbar – sie verbleiben ein Leben lang im Körper des Patienten. Traumatisches und atraumatisches Nahtmaterial Viele Jahre lang fädelte die OP-Schwester während eines chirurgischen Eingriffs unmittelbar vor dem Anbringen einer Naht den entsprechenden Faden in das abnehmbare Öhr einer chirurgischen Nadel ein. Ein solches Nahtmaterial wird derzeit als traumatisch bezeichnet. In den letzten Jahrzehnten hat sich atraumatisches Nahtmaterial durchgesetzt. Der Faden wird werkseitig fest mit einer Nadel verbunden und ist für das Anlegen einer Naht vorgesehen. Der Hauptvorteil eines atraumatischen Nahtmaterials besteht darin, dass der Durchmesser des Fadens ungefähr dem Durchmesser der Nadel entspricht (bei Verwendung eines traumatischen Nahtmaterials ist die Dicke des Fadens deutlich geringer als der Durchmesser des Nadelöhrs). Der Faden deckt den Defekt im Gewebe nach dem Passieren der Nadel nahezu vollständig ab. Etwas abseits stehen Metallklammern, Klemmen und Klammern aus Edelstahl, Titan, Tantal und anderen Legierungen. b) Methoden zur Sterilisation von Nahtmaterial Derzeit ist die Strahlensterilisation in der Fabrik die wichtigste Methode zur Sterilisation von Nahtmaterial. Dies gilt in vollem Umfang für atraumatisches Nahtmaterial: Nadel und Faden befinden sich in einer separaten versiegelten Verpackung, auf der Größe und Art der Nadel (stechend oder schneidend), Material, Länge und Fadennummer angegeben sind. Das Nahtmaterial wird sterilisiert und verpackt an medizinische Einrichtungen geliefert. Klassische Methoden zur Sterilisation von Seide (Kocher-Methode), Catgut (Methoden von Sitkovsky in Joddampf, Gubarev und Claudius in Alkohol und wässrigen Lösungen von Lugol) werden aufgrund von inzwischen praktisch aufgegeben ihre Dauer, Komplexität und nicht immer ausreichende Wirksamkeit. In Krankenhäusern werden derzeit nur Nylon-, Lavsan- und Metallklammern sterilisiert. Sie werden durch Kochen oder Autoklavieren sterilisiert. Nach der Sterilisation oder dem Öffnen von Verpackungen nach der Strahlensterilisation kann Nahtmaterial nur in 96° Ethylalkohol gelagert werden.

2. Pirogovs Rolle bei der Entwicklung der häuslichen Chirurgie.

Nikolai Iwanowitsch Pirogow (1810-1881) schloss sein Studium 1828 ab medizinische Fa Kult der Moskauer Universität und wurde nach Dorpat an das Professoreninstitut geschickt, um sich auf den Unterricht vorzubereiten. IN 1832_. N. I. Pirogov verteidigte seine Doktorarbeit „Über die Unterbindung der Bauchaorta“. 1836 N. I. Pirogov leitete die chirurgische Klinik der Universität Dorpat. 1841 zog er nach St. Petersburg an die Medizinisch-Chirurgische Akademie, auf dessen Vorschlag eine neue Klinik für Krankenhauschirurgie und pathologische Anatomie gegründet wurde; er blieb bis 1856 in dieser Abteilung. N. I. Pirotov schrieb: „...Niemand hat jemals ein so vollständiges Bild präsentiert. Bilder der normalen Position von Organen, wie ich.“ Es stellte sich heraus, dass die Position vieler Organe (Herz, Magen, Darm) aufgrund des Luftdrucks und der Verletzung der Integrität überhaupt nicht die gleiche war, wie sie normalerweise bei Autopsien erscheint Bei hermetisch abgeschlossenen Hohlräumen verändert sich diese Position aufs Äußerste.“ Die Bedeutung der wissenschaftlichen Tätigkeit von N. I. Pirogov liegt in der Schaffung einer naturwissenschaftlichen Grundlage für die Chirurgie und in der weitgehenden Überwindung des Empirismus. N. I. Pirogov legte den Grundstein für die neue Wissenschaft der chirurgischen Anatomie. Er entwickelte eine Methode zur osteoplastischen Verlängerung der Unterschenkelknochen bei der Enukleation des Fußes (1851), schrieb über die Resektion des Kniegelenks, über das Durchtrennen der Achillessehne und über den plastischen Prozess, der bei der Verschmelzung der Enden der Vena auftritt Venenschnitt, über Nasenkorrektur. N. I. Pirogovs große Verdienste in Bereiche der Schmerzlinderung. Als einer der ersten in Europa, der während einer Operation Äther verwendete, war N. I. Pirogov der erste auf der Welt, der Äther verwendete Ätheranästhesie bei der Hilfeleistung verwundet auf dem Schlachtfeld in Salty. Die herausragende Rolle von I. I. Pirogov bei der Schaffung und Entwicklung der militärischen Feldchirurgie Fragen militärmedizinischer Organisationen Dinge die zu tun sind. N. I. Pirogov sprach sich dafür aus, die Ein- und Ausgangslöcher zu zerlegen, „im Falle von Unannehmlichkeiten beim Transport der Verwundeten“, und lehnte dies vorzeitig ab, falls der Transport der Verwundeten nicht sorgfältig überwacht werden sollte Amputationen aufgrund von Feuer Schusswunden an den Gliedmaßen mit Knochenschäden empfohlen " Sparchirurgie“ entwickelt und führte die Methode in die weitverbreitete Praxis ein Methoden zur Immobilisierung von Gliedmaßen(Stärke, Gipsbinden). N. I. Pirogov war der erste in Russland, der es einführte Gipsverband. Viele Aspekte der wissenschaftlichen und klinischen Tätigkeit von N. I. Pirogov hatten einen erheblichen Einfluss auf die spätere Entwicklung der Medizin und behielten ihre Bedeutung für die moderne Medizin: die Schaffung der topografischen und chirurgischen Anatomie, die Einführung der Ätheranästhesie in die chirurgische Praxis, die Interpretation von Entzündungen als Reaktionen des gesamten Körpers, Entwicklung Lehren über die infektiöse Natur des Wundprozesses, über die Wirkung von Antiseptika.

12. Sterilisation chirurgischer Instrumente.

STERILISATION CHIRURGISCHER INSTRUMENTE a) Vorbereitung vor der Sterilisation Die Vorbereitung vor der Sterilisation besteht aus Desinfektion, Waschen und Trocknen. Alle Arten von Instrumenten sind davon betroffen. Art und Umfang der Vorsterilisationsbehandlung wurden in der jüngeren Vergangenheit durch den Infektionsgrad der Instrumente bestimmt. Alle Vorsterilisationsverfahren müssen mit Handschuhen durchgeführt werden! Desinfektion Unmittelbar nach dem Gebrauch werden die Instrumente in einen Behälter mit Desinfektionsmitteln (Akkumulator) getaucht. In diesem Fall müssen sie vollständig in die Lösung eingetaucht sein. Als Desinfektionsmittel wird eine 3 %ige Chloraminlösung (Einwirkung 40-6,0 Minuten) oder eine 6 %ige Wasserstoffperoxidlösung (Einwirkung 90 Minuten) verwendet. Nach der Desinfektion werden die Instrumente unter fließendem Wasser gewaschen. Waschen Die Werkzeuge werden in eine spezielle Waschlösung (alkalisch) getaucht, die Reinigungsmittel (Waschpulver), Wasserstoffperoxid und Wasser enthält. Lösungstemperatur 50-60°C, Einwirkzeit 20 Minuten. Danach werden die Instrumente mit Bürsten in derselben Lösung und dann unter fließendem Wasser gewaschen. Trocknen Das Trocknen kann natürlich erfolgen. Neuerdings werden insbesondere bei der anschließenden Sterilisation mit Heißluft Instrumente im Trockenofen bei 80 °C für 30 Minuten getrocknet. Nach dem Trocknen sind die Instrumente zur Sterilisation bereit. Die Wahl der Sterilisationsmethode hängt in erster Linie von der Art der chirurgischen Instrumente ab. b) Eigentlich Sterilisation Alle chirurgischen Instrumente können je nach den Eigenschaften der verwendeten Materialien und anderen Qualitäten in drei Gruppen eingeteilt werden: Metall (schneidend und nicht schneidend), Gummi und Kunststoff sowie optisch. Sterilisation nicht schneidender Metallinstrumente. Die wichtigste Sterilisationsmethode ist die Sterilisation mit Heißluft im Trockenofen oder im Autoklaven unter Standardbedingungen. Auch Kochen ist möglich. Es wird jedoch nicht empfohlen, Instrumente nach Operationen wegen anaerober Infektion und in der Risikogruppe für Hepatitis auszukochen. Einige Arten einfacher Instrumente (Pinzetten, Klemmen, Sonden usw.), die für den einmaligen Gebrauch bestimmt sind, können durch Strahlung sterilisiert werden. Sterilisation von Metallschneideinstrumenten Die Sterilisation von Schneidinstrumenten mit thermischen Methoden führt zu ihre Stumpfheit und Verlust der für den Chirurgen notwendigen Eigenschaften. Die Hauptmethode zur Sterilisation von Schneidinstrumenten ist eine kalte chemische Methode unter Verwendung antiseptischer Lösungen. Neuerdings werden in Umkleidekabinen schneidende Instrumente ebenso wie nicht schneidende Instrumente in einem Trockenhitzeofen sterilisiert, was zu einer leichten Abnahme ihrer Schärfe führt, aber absolute Sterilität gewährleistet. Die besten Sterilisationsmethoden sind die Gassterilisation und insbesondere die Strahlensterilisation unter Fabrikbedingungen. Letztere Methode hat sich bei der Verwendung von Einmal-Skalpellklingen und chirurgischen Nadeln (atraumatisches Nahtmaterial) durchgesetzt. Sterilisation von Gummi- und Kunststoffinstrumenten Die Hauptmethode zur Sterilisation von Gummiprodukten ist das Autoklavieren. Bei wiederholter Sterilisation verliert Gummi seine elastischen Eigenschaften und reißt, was ein Nachteil der Methode ist. Es ist auch akzeptabel, Gummiprodukte 15 Minuten lang zu kochen. Einwegartikel aus Kunststoff sowie Katheter und Sonden unterliegen der werksseitigen Strahlensterilisation. Besonders hervorzuheben ist die Sterilisation von Handschuhen. In letzter Zeit werden am häufigsten Einweghandschuhe verwendet, die einer Strahlensterilisation im Werk unterzogen wurden. Bei wiederholter Verwendung ist die Hauptsterilisationsmethode das schonende Autoklavieren: Nach der Vorsterilisationsbehandlung werden die Handschuhe getrocknet, mit Talkumpuder bestreut (verhindert ein Anhaften), in Gaze eingewickelt, in einen Beutel gegeben und bei 1,1 atm autoklaviert. für 30-40 Minuten oder bei 1,5 atm. - 15-20 Minuten.

9. Herzinsuffizienz.Herzinsuffizienz. Eine schwerwiegende Komplikation, die plötzlich auftreten kann: Der Puls verschwindet, Herztöne sind nicht mehr zu hören, die Atmung setzt aus und es kommt zu starker Blässe. Die Pupillen werden erweitert, die Muskulatur entspannt, die Wunde hört auf zu bluten. Es ist notwendig, unter Fortführung der künstlichen Beatmung und Sicherstellung einer ausreichenden Sauerstoffversorgung des Körpers sofort innerhalb der ersten 4 Minuten mit der Herzmassage zu beginnen. Es gibt zwei Methoden: geschlossen (indirekt) und offen. Geschlossene Herzmassage, Eine schnelle und wirksame Methode zur Wiederherstellung der Herztätigkeit, die durch rhythmischen, ruckartigen Druck auf das untere Drittel des Brustbeins bis zu 60 Mal pro Minute erfolgt. Bei der Hilfeleistung durch zwei Ärzte werden pro Injektion in die Lunge 5 stoßartige Drücke auf das Brustbein ausgeübt; bei der Hilfeleistung durch einen Arzt werden nach jeweils zwei schnellen Aufpumpvorgängen in die Lunge 15 stoßartige Drücke auf das Brustbein ausgeübt. Bei jedem Stoß sollte sich das Brustbein der Wirbelsäule etwa 3–4 cm nähern, das Herz wird komprimiert und Blut gelangt in die Gefäße des Lungen- und Körperkreislaufs. Wenn der Druck auf das Brustbein aufhört, füllen sich die Herzhöhlen mit Blut. Bei der geschlossenen Herzmassage muss der Patient auf eine harte Unterlage gelegt werden. Wenn die geschlossene Herzmassage wirksam ist, entsteht ein Puls in den peripheren Gefäßen, die Pupillen verengen sich und die Haut nimmt einen rosa Farbton an. Massage am offenen Herzen kann auf transthorakalem, subdiaphragmatischem und transdiaphragmatischem Weg durchgeführt werden.

7. Methoden zur Bearbeitung des Operationsfeldes. In den letzten Jahren werden auch andere antiseptische Präparate zur Behandlung des Operationsfeldes eingesetzt: eine 1 %ige Degminlösung, mit der Tampons großzügig befeuchtet und die Haut damit zweimal behandelt wird; Mit einer 05 %igen Lösung von Chlorhexidin (Wasser-Alkohol) wird die Haut zweimal im Abstand von 2 Minuten behandelt.
Ein sinnvoller Ersatz für eine alkoholische Jodlösung ist Jodonat – eine wässrige Lösung eines Tensidkomplexes mit Jod. Das Medikament enthält 45 % Jod. Zur Behandlung des Operationsfeldes verwenden Sie eine 1 %ige Lösung, bei der das ursprüngliche Jodonat 45-fach mit destilliertem Wasser verdünnt wird. Vor der Operation wird die Haut zweimal mit dieser Lösung eingefettet. Vor dem Vernähen der Haut wird diese noch einmal bearbeitet. Siehe (4).

10. Komplikationen während der Endotrachealanästhesie. KOMPLIKATIONEN BEI DER ENDOTRACHEAL-NARKOSE Bevor die Komplikationen der Endotracheal-Narkose beschrieben werden, ist es notwendig, sich an die Arten der Hypoxie zu erinnern: Hypoxische Hypoxie. Der Name selbst deutet darauf hin, dass die eingeatmete Luft wenig Sauerstoff enthält. Am häufigsten tritt es auf, wenn wir der Mischung wenig Sauerstoff hinzufügen. Am häufigsten tritt diese Situation bei der Verwendung von Lachgas auf (das ideale maximale Verhältnis beträgt 3 zu 1); wenn die Anästhesie unzureichend ist und der Anästhesist den Lachgasanteil auf über 80 % erhöht, entsteht zwangsläufig eine hypoxische Hypoxie. Im Leben tritt hypoxische Hypoxie beim Bergsteigen auf. Hemische Hypoxie. Tritt häufiger bei massivem Blutverlust auf, wenn wenig Hämoglobin vorhanden ist. Die Behandlung erfolgt in der Regel mit Bluttransfusionen und mechanischer Beatmung. Kreislaufhypoxie. Am häufigsten tritt es bei Herz-Kreislauf-Versagen auf, wenn das Blut das Mikrozirkulationsbett nicht erreicht. Dies geschieht am häufigsten bei Hypotonie, wenn der normale Kapillardruck nicht aufrechterhalten wird und der natürliche Sauerstoff die Zellen nicht erreicht. Histotoxische Hypoxie tritt bei verschiedenen Vergiftungen auf. In der anästhesiologischen Praxis ist damit eine Überdosierung eines bestimmten Betäubungsmittels verbunden. KOMPLIKATIONEN: Komplikationen im Zusammenhang mit der Intubation: Es scheint, dass die Intubation ein einfacher Eingriff ist, aber leider gibt es eine Reihe von Menschen mit Besonderheiten der anatomischen und physiologischen Struktur: Der Kopf ist schlecht gerade, der Kiefer ist schlecht hervorstehend, die Epiglottis ist kurz, und während der Intubation ist die Stimmritze selbst in geschickten Händen nicht sichtbar. Und leider sterben immer noch einige Patienten an einer erfolglosen Intubation. In solchen Fällen ist es notwendig, einen erfahreneren Arzt um Hilfe zu bitten. Wenn dies nicht gelingt, muss eine Tracheotomie durchgeführt werden, oder Sie können die Person durch Diffusionsatmung retten: Die Luftröhre wird mit einer einfachen Nadel durchstochen, ein Schlauch wird an die Nadel angeschlossen und Sauerstoff zugeführt. Das bedeutet, dass wir eine Person auch dann mit Sauerstoff versorgen, wenn sie nicht atmet, was für eine halbe Stunde sicher ist. Da die Sauerstoffanreicherung gut erfolgt, sammelt sich Kohlendioxid nach 30-40 Minuten in einer tödlichen Dosis an. Schäden an der Zunge, im Rachenraum und an den Zähnen. Knick im Schlauch. Laryngospasmus ist eine Komplikation jeder Art von Anästhesie. Ein Laryngospasmus ist während der Narkoseeinleitung gefährlich; manchmal verschließen sich die Stimmbänder so stark, dass der Schlauch nicht passieren kann. In solchen Fällen ist der Einsatz von Muskelrelaxantien am effektivsten, weil... Es sind die Skelettmuskeln, die am Laryngospasmus beteiligt sind. Etwaige Laryngospasmen werden durch die Gabe von Muskelrelaxantien gelindert, allerdings muss bedacht werden, dass der Patient unmittelbar nach der Intubation zügig auf eine maschinelle Beatmung umgestellt werden muss. Bronchospasmus tritt auf, wenn sich die glatte Muskulatur zusammenzieht, was durch Muskelrelaxantien nicht beeinträchtigt wird. Daher werden Bronchodilatatoren verwendet, beginnend mit Aminophyllin. Ftorotan hat eine starke bronchodilatatorische Wirkung, die sogar bei der Behandlung von Asthma bronchiale eingesetzt werden kann.

2. Konservierung und Lagerung von Blut.

BLUTSPEICHERUNG Die Blutkonservierung ist ein Wirkungskomplex, der darauf abzielt, Bedingungen für die langfristige Lagerung von Blut außerhalb des Körpers in einem sterilen Zustand zu schaffen, wobei seine biologischen Eigenschaften (sowohl die gebildeten Elemente als auch der flüssige Teil des Blutes) maximal erhalten bleiben. Zur Blutkonservierung werden zwei Methoden angewendet: Einmachen bei positiven Temperaturen und Einmachen bei negativen Temperaturen. Die Lagerung von Blut bei positiven Temperaturen erfolgt üblicherweise in Haushaltskühlschränken. Sie gewährleisten die Aufrechterhaltung von Temperaturbedingungen im Bereich von +2 bis +4 °C. Bei diesen Temperaturen können Vollblutkonserven, rote Blutkörperchen und natives Plasma gelagert werden. Verschiedene Blutbestandteile haben unterschiedliche Haltbarkeitsdauern. Beispielsweise können rote Blutkörperchen ihre Eigenschaften mehrere Wochen lang behalten, weiße Blutkörperchen und Blutplättchen können ihre Eigenschaften jedoch nur mehrere Tage lang behalten. Dies erklärt sich dadurch, dass es sich bei Leukozyten und Blutplättchen um Kernzellen mit komplexeren Funktionen handelt und bei längerer Lagerung Veränderungen vor allem den Zellkern betreffen. Die Haltbarkeit von nativem Plasma ist auf drei Tage begrenzt. Dies ist auf die Tatsache zurückzuführen, dass während dieser Zeit die meisten biologisch aktiven Substanzen, aus denen es besteht, inaktiviert werden. Um solche unerwünschten Folgen bei der Langzeitlagerung von Blut zu vermeiden, wird seine Konservierung bei Temperaturen unter Null durchgeführt. Dadurch kann die Haltbarkeit des Blutes erhöht werden, da Stoffwechselprozesse in den Zellen deutlich unterdrückt werden und so deren vorzeitige „Alterung“ verhindert wird. Für die Kryokonservierung werden folgende Temperaturbedingungen verwendet: mäßig niedrige Temperaturen (–40 °C). .–60°C), extrem niedrige Temperaturen (–196°C). Die Temperatur bestimmt den Zeitraum, in dem rote Blutkörperchen ihre Eigenschaften behalten können. Bei mäßig niedrigen Temperaturen können sie mehrere Monate und bei extrem niedrigen Temperaturen 10 oder mehr Jahre gelagert werden. Konservierungslösungen. Um die Haltbarkeit von Blut außerhalb des Körpers zu erhöhen, werden spezielle Lösungen – Hämokonservierungsmittel – eingesetzt. Als obligatorischer Bestandteil enthalten alle Konservierungslösungen spezielle Chemikalien – Stabilisatoren. Solche Stabilisatoren wie Zitronensäure Und Natriumcitrat. Sie binden Kalziumionen, was dazu beiträgt, eine der Phasen des Blutstillungsprozesses – die Bildung von Thrombin – zu unterdrücken. Eine wichtige Eigenschaft von Natriumcitrat besteht darin, dass es 20 bis 30 Minuten nach der mit seiner Hilfe stabilisierten Bluttransfusion fast vollständig (mindestens 90 %) aus dem Körper ausgeschieden wird. Es ist zu beachten, dass es bei akutem Blutverlust oder anderen Erkrankungen (Hypothermie) durch die Gabe von mit Natriumcitrat stabilisiertem Blut zu einem Mangel an Calciumionen kommen kann (siehe Kapitel 9), also nach einer Bluttransfusion Von 500 ml müssen 10 ml einer 10 %igen Calciumchlorid- oder Gluconatlösung intravenös verabreicht werden. Dies reicht völlig aus, um den daraus resultierenden Kalziummangel auszugleichen. Eine andere Art von Stabilisator umfasst Heparin. Es verhindert die Blutgerinnung, indem es Thrombin direkt bindet und inaktiviert. Ein wesentlicher Nachteil von Heparin bei der Verwendung als Stabilisator besteht darin, dass damit konserviertes Blut nicht über einen längeren Zeitraum haltbar gemacht werden kann, da es mit zunehmender Lagerzeit zu einer Inaktivierung des Heparins kommt. Dadurch bilden sich innerhalb eines Tages kleine Blutgerinnsel und nach zwei Tagen große Blutgerinnsel. Heparin als Konservierungsmittel enthält neben Heparin selbst (50 mg) Glucose (5 g) und isotonische Natriumchloridlösung (bis zu 100 ml). Diese Mischung hat einen pH-Wert von 7,3. Das Verhältnis von Lösung zu Blut während der Konservierung sollte 1:9 betragen. Diese Methode der Blutstabilisierung kommt dann zum Einsatz, wenn sie dringend erforderlich ist. So wird bei Operationen mit künstlichen Blutkreislaufgeräten heparinisiertes Blut verwendet – das Gerät wird damit gefüllt.

6. Indirekte Bluttransfusion, Verträglichkeitstest.

Testen Sie die individuelle Verträglichkeit von Spender- und Empfängerblut. Grundkonzepte Tests zur Kompatibilität der Blutgruppen AB0 und Rh werden getrennt durchgeführt. Diese Tests werden mit unterschiedlichen Methoden durchgeführt, da Antikörper des AB0- und Rh-Systems unterschiedliche Eigenschaften haben und unter unterschiedlichen Bedingungen ihre Wirkung entfalten. Der Zweck des individuellen Kompatibilitätstests besteht darin, Transfusionen inkompatibler roter Blutkörperchen zu verhindern. Unmittelbar vor der Transfusion wird vom transfundierenden Arzt ein Verträglichkeitstest durchgeführt. Hierzu werden das Serum des Patienten und das Blut des Spenders aus einem für die Transfusion vorbereiteten Fläschchen verwendet. Der Test des Empfängerserums mit den Erythrozyten des vorgesehenen Spenders ist die zuverlässigste Methode, um Antikörper zu identifizieren, die zu Schäden an transfundierten Erythrozyten und zu Reaktionen nach der Transfusion führen können , einschließlich hämolytischer. Durch die Durchführung eines solchen Tests können Sie: die AB0-Kompatibilität von Spender und Empfänger bestätigen; identifizieren fast alle Antikörper im Serum des Empfängers, die gegen die roten Blutkörperchen des Spenders gerichtet sind. Technik zur Durchführung eines individuellen Kompatibilitätstests In allen Fällen, außer bei dringenden Transfusionen, wird der Test in zwei Schritten durchgeführt (der erste – ohne Verwendung eines Antiglobulin-Reagenzes, der zweite – mit einem Antiglobulin-Reagenz). Erste Stufe: Geben Sie 2 Tropfen des Serums des Empfängers in ein beschriftetes Röhrchen. Fügen Sie 1 Tropfen einer 5 %igen Suspension dreimal gewaschener roter Blutkörperchen des Spenders in Kochsalzlösung hinzu (die Antikörperfixierung erfolgt besser in einer Lösung mit niedriger Ionenstärke (LISS), daher ist dies vorzuziehen). Wiegen Sie die roten Blutkörperchen in einer LISS-Lösung, die normalerweise vom Hersteller zusammen mit dem Antiglobulinreagenz geliefert wird.) Sofort 15–20 s lang bei 2000 U/min zentrifugieren. Untersuchen Sie den Überstand durch leichtes Schütteln des Röhrchens auf das Vorhandensein von Hämolyse und trennen Sie die Zelle ab Sediment vom Boden des Röhrchens entfernen und das Vorhandensein von Agglutinaten feststellen. Das Vorhandensein von Hämolyse und/oder Agglutinaten in diesem Stadium kann Folgendes bedeuten: Inkompatibilität gemäß dem AB0-System; das Vorhandensein vollständiger Erkältungsantikörper gemäß AB0-Spezifität (Anti-S, Anti-P1 usw.) im Serum des Empfängers. Zweite Phase: Wenn keine Hämolyse stattgefunden hat und die roten Blutkörperchen nach dem Schütteln des Röhrchens eine homogene Suspension gebildet haben, inkubieren Sie das Röhrchen 30–40 Minuten lang (bei Verwendung von LISS beträgt die Inkubationszeit 10–15 Minuten) bei +37 °C. Zentrifugieren Sie das Röhrchen (siehe Schritt 3) und untersuchen Sie den Überstand auf Hämolyse und Agglutinate. Das Vorhandensein von Hämolyse und/oder Agglutinaten (nach dem Schütteln des Röhrchens) weist auf das Vorhandensein vollständig warmer Antikörper gegen die roten Blutkörperchen des Spenders im Empfänger hin. Wenn Agglutination und Hämolyse nicht vorliegen, waschen Sie die roten Blutkörperchen 3-4 Mal mit einem großen Spülmittel Volumen (mindestens 5 ml) physiologischer Lösung (unzureichendes Waschen kann zur Inaktivierung des Antiglobulin-Reagenzes und zu einem falsch negativen Testergebnis führen, da Serum selbst bei einer Verdünnung von 1:4.000 ein gleiches Volumen des Antiglobulin-Reagenzes inaktiviert) ; Entfernen Sie die Kochsalzlösung nach dem letzten Waschen vollständig. Fügen Sie 1–2 Tropfen Antiglobulin-Serum hinzu und mischen Sie gründlich. Zentrifugieren Sie das Röhrchen (siehe Schritt 3), brechen Sie das Sediment vorsichtig auf und untersuchen Sie das Röhrchen auf das Vorhandensein von Agglutinaten. Wenn eine dringende Transfusion erforderlich ist, können Sie sich auf die Stufen 1–4 des Verträglichkeitstests beschränken. In diesem Fall ist es auch möglich, einen individuellen Verträglichkeitstest im Flugzeug durchzuführen, indem man 1 Tropfen des Serums des Empfängers mit einem kleinen Tropfen Spenderblut mischt (das Verhältnis von Serum zu Blut sollte etwa 10:1 betragen). In dieser Formulierung reduziert sich der Test auf individuelle Kompatibilität tatsächlich auf die Identifizierung von Inkompatibilitäten nur nach dem AB0-System. Interpretation der Testergebnisse Der Spender gilt als kompatibel, wenn zu keinem Zeitpunkt des Tests auf individuelle Kompatibilität Hämolyse oder Agglutination beobachtet wird. Agglutination weist auf das Vorhandensein von Alloantikörpern im Serum des Empfängers hin, deren Spezifität in einem speziellen serologischen Labor durch Tests mit einer Reihe typisierter roter Blutkörperchen bestimmt werden kann. Solche Empfänger erfordern eine besondere Auswahl eines Spenders. Die Qualität des Antiglobulin-Reagenzes wird vom Hersteller garantiert. Verwenden Sie kein Reagenz, das abgelaufen ist oder wiederholt eingefroren und aufgetaut wurde. Als Kontrolle (bei Zweifeln an der Qualität des Reagenzes) ist es sinnvoll, einen Antiglobulintest mit Rh-positiven Erythrozyten durchzuführen, die mit unvollständigen Anti-0-Antikörpern sensibilisiert sind. Indirekte Transfusion Die indirekte Bluttransfusion ist die wichtigste Methode der Bluttransfusion. Es zeichnet sich durch einfache Durchführung und einfache technische Ausstattung aus; es eliminiert das Infektionsrisiko des Spenders und die negativen psychologischen Auswirkungen der Anwesenheit des Spenders während der Transfusion. Wichtig ist, dass diese Methode die Beschaffung großer Mengen an Spenderblut ermöglicht, das sowohl routinemäßig als auch im Notfall eingesetzt werden kann. Bei einer indirekten Transfusion wird das Blut in speziellen Flaschen (Verpackungen) mit einer Konservierung gesammelt, die wie geplant an Bluttransfusionsstationen (Abteilungen) durchgeführt wird. Das unter bestimmten Bedingungen gesammelte Blut stellt eine sogenannte Blutbank dar und wird bei Bedarf verwendet. Gleichzeitig hat diese Methode auch eine Reihe negativer Aspekte: Während der Lagerung verlieren Blut und seine Bestandteile einige wertvolle Heileigenschaften und die Anwesenheit von Konservierungsmitteln kann beim Empfänger unerwünschte Reaktionen hervorrufen.

1. Prellungen.

Eine Gehirnerschütterung ist eine geschlossene mechanische Schädigung von Weichteilen und Organen ohne sichtbare Verletzung ihrer anatomischen Integrität. Oberflächlich gelegene Weichteile – Haut und Unterhautgewebe – sind am häufigsten anfällig für Blutergüsse. Allerdings ist auch eine Prellung innerer Organe (Gehirn-, Herz-, Lungenprellung) möglich. Solche Verletzungen werden als Verletzungen innerer Organe eingestuft und sind Gegenstand privater Operationen. DIAGNOSTIK Die wichtigsten klinischen Manifestationen einer Prellung sind Schmerzen, Schwellung, Hämatom und Funktionsstörung des geschädigten Organs. Schmerz tritt unmittelbar zum Zeitpunkt der Verletzung auf und kann sehr schwerwiegend sein, was mit einer Schädigung einer Vielzahl von Schmerzrezeptoren im betroffenen Bereich einhergeht. Prellungen sind besonders schmerzhaft, wenn die Knochenhaut beschädigt ist. Innerhalb weniger Stunden lässt der Schmerz nach und sein weiteres Auftreten ist meist mit dem Wachstum des Hämatoms verbunden. Fast unmittelbar nach dem Schaden macht es sich bemerkbar Schwellung, beim Abtasten schmerzhaft, ohne klare Grenzen, allmählich in intaktes Gewebe übergehend. Die Schwellung nimmt über mehrere Stunden (bis zum Ende des ersten Tages) zu, was mit der Entstehung traumatischer Ödeme und entzündlicher Veränderungen einhergeht. Entwicklungszeit Hämatome(Blutung) hängt von ihrer Tiefe ab. Bei einer Verletzung der Haut und des Unterhautgewebes wird das Hämatom fast sofort sichtbar (Imbibition, Penetration der Haut – intradermales Hämatom). Bei einer tieferen Lage kann das Hämatom nur an 2-3 Tagen äußerlich in Form eines blauen Flecks auftreten. Durch den Abbau von Hämoglobin verändert sich die Farbe des blauen Flecks. Ein frischer Bluterguss ist rot, dann wird seine Farbe violett und nach 3-4 Tagen wird er blau. Nach 5-6 Tagen werden die blauen Flecken grün und dann gelb, danach verschwinden sie allmählich. So kann man anhand der Farbe des blauen Flecks die Dauer der Schädigung und die Gleichzeitigkeit bestimmen ihre Erlangung, was insbesondere in Fragen der forensischen medizinischen Untersuchung wichtig ist. Funktionsstörung Im Falle eines blauen Flecks tritt dieser meist nicht sofort auf, sondern erst, wenn das Hämatom und die Schwellung zunehmen. Dabei kommt es zu Einschränkungen aktiver Bewegungen, die mit starken Schmerzen verbunden sind. Passive Bewegungen können erhalten bleiben, sind allerdings ebenfalls sehr schmerzhaft. Dies unterscheidet Prellungen von Frakturen und Luxationen, bei denen unmittelbar nach der Verletzung eine Beeinträchtigung des Bewegungsumfangs auftritt und sowohl aktive als auch passive Bewegungen betrifft. BEHANDLUNG Die Behandlung von Prellungen ist ganz einfach. Um die Entwicklung von Hämatomen und traumatischen Ödemen zu reduzieren, sollte Kälteruhe so früh wie möglich äußerlich angewendet werden. Legen Sie dazu einen Eisbeutel auf die Verletzungsstelle, den Sie vorzugsweise 12 bis 24 Stunden lang aufbewahren, mit Pausen alle 2 Stunden für 30 bis 40 Minuten. Protokoll. Um die Bewegung bei Prellungen zu reduzieren, wird (so bald wie möglich ab dem Moment der Verletzung) ein Druckverband im Gelenkbereich angelegt. Um Schwellungen zu reduzieren, wird eine erhöhte Position der Extremität verwendet. Ab 2-3 Tagen werden thermische Verfahren (Heizkissen, UV-Bestrahlung, UVD-Therapie) eingesetzt, um die Resorption des Hämatoms zu beschleunigen und Ödeme zu lindern. In einigen Fällen werden bei der Bildung großer, insbesondere tiefer Hämatome diese punktiert und anschließend ein Druckverband angelegt. Punktionen müssen in manchen Fällen wiederholt werden. Die Evakuierung solcher Hämatome ist aufgrund des Risikos einer Infektion (eitriges Hämatom) oder deren Organisation (organisiertes Hämatom) erforderlich.

STERILISATION VON INSTRUMENTEN, NAHT- UND VERBANDSMATERIALIEN

Nahtmaterial zur Sterilisation von Instrumenten

Sterilisation von Instrumenten. Instrumente werden durch Kochen (die Hauptmethode), Brennen (Flammen), trockene Hitze, antiseptische Lösungen (chemische Behandlung), Strahlen (Gammastrahlen, ultraviolette Strahlen) und Ultraschall sterilisiert.

Sterilisation durch Kochen. Vor der Operation werden die Instrumente durch Auskochen in einem herkömmlichen oder elektrischen Sterilisator sterilisiert. Wenn kein Sterilisator vorhanden ist, verwenden Sie Emaillegeschirr mit Deckel. Die Wärmequelle kann ein Elektroherd, Gasherd, Primus-Herd usw. sein.

Der Sterilisator ist eine Metallbox mit Deckel und Metallgitter, die mithilfe von Metall- oder Kunststoffhaltern abgesenkt und aus der kochenden Flüssigkeit entfernt wird.

Nehmen Sie das Netz aus dem Sterilisator und gießen Sie klares Wasser hinein. Um Instrumente vor Korrosion und Schwärzung zu schützen, wird dem Wasser Alkali zugesetzt und die Flüssigkeit gekocht. Alkalilösungen fördern die Ausfällung von Calcium- und Magnesiumsalzen und Vorkochen fördert die Freisetzung von Sauerstoff.

Geben Sie dem Wasser normalerweise 2 % Natriumcarbonat (Kohlendioxid) und 0,1 % Natriumhydroxid (Natriumlauge) hinzu und kochen Sie es 3–5 Minuten lang. Anschließend wird mithilfe von Haltern ein Metallgitter mit zuvor darauf gelegten Werkzeugen in die kochende Flüssigkeit abgesenkt.

Komplexe Instrumente (Scheren, Nadelhalter, blutstillende Pinzetten etc.) werden halb geöffnet oder zerlegt sterilisiert. Schneidende und stechende Gegenstände werden in Gaze eingewickelt, Nadeln (chirurgisch, Injektion) werden gestochen oder in Gaze eingewickelt.

Die Instrumente im Behälter werden 15–20 Minuten nach dem Kochen der Lösung sterilisiert. Nach Ablauf der angegebenen Zeit wird das Netz aus dem Sterilisator entfernt und die Instrumente auf einer sterilen Serviette auf dem Instrumententisch ausgelegt oder nach dem Ablassen des Wassers im Sterilisator belassen.

Glasinstrumente (Spritzen, Bechergläser, Reagenzgläser usw.) werden getrennt von Metallinstrumenten in destilliertem, Regen- oder abgekochtem Wasser ohne Zusatz von Alkalien sterilisiert. Spritzen müssen zerlegt ausgekocht werden, da sie aufgrund des unterschiedlichen Ausdehnungskoeffizienten beim Erhitzen von Glaszylinder und Metallkolben platzen können. Vor dem Kochen werden die Bestandteile der Spritze und andere Glasgegenstände zunächst in Gaze eingewickelt und in noch nicht erhitztes Wasser getaucht. Glasgegenstände werden 15 Minuten lang sterilisiert. Janet-Spritzen können außerdem im Autoklaven sterilisiert werden.

Gummigegenstände (Katheter, Drainagen etc.) werden 30 Minuten in destilliertem Wasser gekocht oder im Autoklaven sterilisiert.

Sterilisation durch Verbrennen (Flambieren). Das Brennen wird in einer chirurgischen Klinik praktisch nicht zum Sterilisieren von Instrumenten eingesetzt. Es kann verwendet werden, wenn andere Methoden nicht möglich sind. Diese Methode wird üblicherweise zur Desinfektion großer Instrumente (Zahnzangen, Geburtsgehstützen usw.) und Emaillegeschirrs (Becken für Instrumente usw.) verwendet. Andere Instrumente werden selten durch Verbrennen sterilisiert, vor allem bei Notoperationen, wenn keine Zeit zum Auskochen bleibt. Das Instrument wird in eine Emailleschüssel oder einen Sterilisator gelegt, mit einer kleinen Menge (5-10 ml) Alkohol übergossen und gleichmäßig gebrannt. Diese Methode ist nicht zuverlässig genug (Bakterien können in Schleusen und engen Öffnungen verbleiben). Darüber hinaus verschlechtern sich Werkzeuge, insbesondere Schneidwerkzeuge, beim Abfeuern stark.

Chemische Sterilisation. Die Sterilisation mit Lösungen chemischer Antiseptika ist eine Kaltsterilisationsmethode und führt nicht zur Abstumpfung der Instrumente. Bei der Kaltsterilisation werden die Instrumente vollständig und offen in eine der Lösungen eingetaucht: Dreifachlösung (Formalin – 20 g, Karbolsäure-10, Natriumcarbonat – 30 g, Wasser bis zu 1 l) – für 2–3 Stunden; 96 % Ethylalkohol – für 2-3 Stunden; 6 % Wasserstoffperoxid – für 6 Stunden. Andere Medikamente werden seltener verwendet, gelten aber als weniger wirksam: 3–5 %ige Karbolsäurelösung – für 30–60 Minuten; Bakterizidlösung 1:3000 – für 10 Minuten; 0,5 % alkoholische Formaldehydlösung; Furatsilinlösung 1:5000 usw.

Auch die Gassterilisation ist eine Form der chemischen Sterilisation. Es wird in speziellen, versiegelten Kammern durchgeführt. Das Sterilisationsmittel ist normalerweise Formalindampf (Formaldehydtabletten werden auf den Boden der Kammer gelegt). Auf ein Netz gelegte Instrumente gelten nach 6-48 Stunden als steril. Die Methode wird zur Sterilisation optischer, besonders präziser und teurer Instrumente eingesetzt, da sie nur minimale negative Auswirkungen auf die Instrumente hat.

Sterilisation mit Heißluft (trockene Hitze). Die Durchführung erfolgt in speziellen Trockenhitze-Sterilisatoren (Schränken). Die Instrumente werden auf Schrankregalen platziert und zunächst 30 Minuten lang bei einer Temperatur von 80 °C bei geöffneter Tür getrocknet und anschließend bei geschlossener Tür 1 Stunde lang bei einer Temperatur von 180 °C sterilisiert. Nachdem der Schrank auf 50–70 °C abgekühlt ist, wird die Tür leicht geöffnet und die sterilen Instrumente werden nach dem endgültigen Abkühlen entnommen.

Strahlensterilisation. Die antimikrobielle Behandlung kann mittels ionisierender Strahlung (Gammastrahlen), ultravioletter Strahlung und Ultraschall erfolgen. Gammastrahlen werden am häufigsten verwendet. Hierzu werden die Isotope 60Co und 137C verwendet. Die Dosis der durchdringenden Strahlung beträgt 20-25 MikroGy. Die Gammastrahlensterilisation ist eine Fabrikmethode und wird in speziellen Räumen unter Einhaltung strenger Sicherheitsmaßnahmen durchgeführt.

Die Sterilisation von Instrumenten und anderen Materialien mit Gammastrahlen erfolgt in hermetisch verschlossenen Verpackungen, die bei Unversehrtheit bis zu 5 Jahre steril bleiben. Die hermetische Verpackung ist praktisch für die Lagerung, den Transport und die Verwendung von Werkzeugen (öffnen Sie einfach die Verpackung vor dem Gebrauch).

Die Methode eignet sich für die Sterilisation einfacher Einmalinstrumente (Spritzen, Katheter, Sonden, Handschuhe, Bluttransfusionssysteme etc.) und findet zunehmende Verbreitung.

Werkzeuge aufbewahren und pflegen. Nach der Operation werden die Instrumente mit warmem Wasser gewaschen und anschließend trocken gewischt. Mit Eiter kontaminierte Instrumente werden gewaschen und 30-40 Minuten in einer 3%igen Karbolsäurelösung (Lysol) gekocht. Injektionsnadeln werden mit Mandrins gereinigt und mit Alkoholether gewaschen. Getrocknete Instrumente werden in speziellen Schränken in einem trockenen Raum aufbewahrt. Selten genutzte Instrumente werden mit Vaseline geschmiert. Gummiartikel sollten an einem kühlen, dunklen Ort gelagert werden, da sie durch Sonneneinstrahlung und Luft aushärten. Gehärtete Gummigegenstände werden 15 Minuten lang in eine 5 %ige warme Ammoniaklösung und anschließend gleichzeitig in eine 5 %ige wässrige Glycerinlösung getaucht, anschließend getrocknet und an einem kühlen, dunklen Ort gelagert.

Sterilisation von Verbänden und OP-Wäsche. Verbände (Verbände, Servietten, Tampons, Watte etc.) und OP-Wäsche (Kittel, Mützen, Handtücher, Laken etc.) werden im Autoklaven (Druckdampf), Bügeln und Kochen sterilisiert.

Sterilisation durch Autoklavieren. Vor dem Autoklavieren werden Material und Wäsche in speziellen Metallboxen – Schimmelbusch-Boxen – ausgelegt. Die Löcher an der Seitenwand des Behälters werden vor dem Einlegen in den Autoklaven geöffnet und nach der Sterilisation bei der Entnahme aus dem Autoklaven verschlossen. Je nach Größe der Behälter passen mehrere davon in den Autoklaven. Die Reihenfolge beim Einlegen der Wäsche in den Behälter richtet sich nach der weiteren Verwendung. Bei geringem Verbrauch an Verbandmaterial wird dieses in kleinen Tüten oder Leinensäckchen sterilisiert.

Die Sterilisation erfolgt streng nach den mit dem Autoklaven gelieferten Anweisungen. Im Allgemeinen ist der Betriebsablauf wie folgt. Durch den Trichter wird heißes Wasser bis zu dem auf dem Autoklavengehäuse angegebenen Füllstand gegossen oder bis das Wassermessrohr zu 3/4 der Höhe gefüllt ist. Nachdem Sie die geladenen Schnäbel in den Autoklaven gelegt haben, schließen Sie den Deckel fest mit Schrauben und stellen Sie den Rest des Sicherheitsventils auf 15–20 kPa ein. Schließen Sie dann alle Hähne bis auf den Dampfauslass und den Glashahn des Wasserzählers und erhitzen Sie das Wasser in einem Autoklaven (mit einem dreiflammigen Petroleumkocher, einem Gasbrenner oder einem Elektroherd). Wenn aus dem Dampfhahn ein gleichmäßiger Trockendampfstrom austritt, wird der Hahn geschlossen. Wenn der Druck im Autoklaven 100 kPa erreicht, wird der gesamte Dampf zusammen mit der restlichen Luft durch das Dampfventil abgelassen. Anschließend wird durch Schließen des Dampfventils der Druck im Autoklaven auf einen bestimmten Wert gebracht.

Die Sterilisationszeit hängt vom Druck im Autoklaven ab. So beträgt beispielsweise bei einem Druck von YukPa die Sterilisationsdauer 1 Stunde; bei 15 kPa - 30 (45) Minuten; bei 20 kPa - 20 (30) Min. Bei einem Druck von 15 kPa erreicht die Temperatur im Autoklaven 126 °C und bei 20 kPa - 134 °C. Besser ist es, Verbandsmaterialien im Autoklaven bei einem Druck von 15-20 kPa zu sterilisieren. Die Sterilisationszeit wird ab dem Erreichen des angegebenen Drucks gezählt.

Während der Sterilisation müssen Sie den Wasserstand und den Druck im Autoklaven sowie die Funktion des Sicherheitsventils überwachen, da bei einer Fehlfunktion der Autoklav explodieren kann.

Nach Ablauf der Sterilisationszeit beenden Sie das Erhitzen des Autoklaven und lassen Dampf durch einen Gummischlauch ab, dessen eines Ende auf das Dampfventil gesteckt und das andere Ende in einen Eimer mit kaltem Wasser abgesenkt wird. Diese Dampfabgabe schützt den Sterilisationsraum vor Feuchtigkeit. Wenn kein Dampf mehr austritt und die Nadel des Manometers Null erreicht, schrauben Sie den Deckel des Autoklaven ab und öffnen Sie ihn.

Um Verbrennungen beim Öffnen des Autoklaven zu vermeiden, müssen Sie sich auf die Seite gegenüber dem freien Rand des Deckels stellen und den Deckel zu sich hin öffnen.

Die Bixes werden aus dem Autoklaven entnommen, nachdem die Löcher in ihren Wänden verschlossen wurden; Um das zu sterilisierende Material zu trocknen, werden die Bixes manchmal 20 bis 30 Minuten im Autoklaven belassen.

Die Zuverlässigkeit der Sterilisation wird mit chemisch reinem Schwefel kontrolliert, dessen Schmelzpunkt bei 117 °C liegt. Dazu wird vor der Sterilisation ein Reagenzglas mit Schwefelpulver in die Mitte des Bix gestellt. Wenn sich der Schwefel nach der Sterilisation in eine homogene Masse verwandelt (schmilzt), deutet dies darauf hin, dass das zu sterilisierende Material Temperaturen über 117 °C ausgesetzt war und steril ist.

Sterilisation durch Kochen. Es wird relativ selten verwendet, da das Verbandmaterial nach einer solchen Sterilisation feucht bleibt, was seine Aufnahmefähigkeit verringert.

Das zu sterilisierende Material wird in ein Mulltuch gewickelt, in einen Sterilisator oder einen anderen Behälter gegeben und mit Wasser oder einer Lösung von Ethacridinlactat (1:1000) gefüllt. Wasser (Lösung) wird mit einem beliebigen Heizgerät (Primuskocher, Gasbrenner usw.) erhitzt. Ab dem Zeitpunkt des Kochens 2 Stunden lang in Wasser und 1 Stunde lang in einer Ethacridinlactatlösung sterilisieren. Nach Abschluss der Sterilisation wird das Wasser bzw. die Lösung abgelassen, das abgekühlte Verbandmaterial mit desinfizierten Händen ausgewrungen und in denselben Behälter gegeben, in dem es sterilisiert wurde.

Sterilisation von Nahtmaterial. Für chirurgische Nähte und Ligaturen werden Seide, Leinen, Baumwolle, synthetische Fäden, Katgut, Metallklammern und Draht verwendet.

Nahtmaterial kann natürlichen oder künstlichen Ursprungs sein. Zu den Nahtmaterialien natürlichen Ursprungs gehören Seide, Baumwollfäden und Katgut. Catgut ist ein Faden unterschiedlicher Dicke, der aus der submukösen Schicht des Schafsdarms hergestellt wird. Je nach Dicke gibt es 11 Fadennummern – von Nr. 000 bis Nr. 8. Die Länge des Fadens beträgt in der Regel nicht mehr als 1 m.

Derzeit wird häufig künstliches Nahtmaterial aus synthetischen Chemikalien verwendet: Nylon, Lavsan, Fluorolon, Polyester, Dacron usw.

Es gibt resorbierbare und nicht resorbierbare Nahtmaterialien. Resorbierbares Nahtmaterial wird zum Nähen von schnell heilendem Gewebe in Fällen verwendet, in denen keine hohe mechanische Festigkeit erforderlich ist. Dieses Material wird zum Zusammennähen von Muskeln, Fasern und Schleimhäuten des Magen-Darm-Trakts und der Harnwege verwendet.

Ein klassisches Beispiel für ein resorbierbares Nahtmaterial ist Catgut. Catgut-Fäden werden nach 2-3 Wochen vollständig vom Körper aufgenommen. Eine Verlängerung der Resorptionszeit auf 1-2 Monate sowie eine Erhöhung der Festigkeit des Katguts wird durch die Imprägnierung der Fäden mit Metallen (verchromt, seltener - Silberkatgut) erreicht.

Synthetische resorbierbare Materialien – Dexon, Vicryl, Oxycylon. Ihre Resorptionszeit entspricht in etwa der von verchromtem Katgut, sie weisen jedoch eine höhere Festigkeit auf, was die Verwendung dünnerer Fäden ermöglicht.

Alle anderen Fäden (Seide, Nylon, Lavsan, Polyester, Fluor, Metallklammern) sind nicht resorbierbar. Sie verbleiben zusätzlich zu den entfernten Hautnähten im Körper des Tieres.

Es gibt geflochtene und gedrehte Nahtmaterialien. Korbgeflecht ist schwieriger herzustellen, aber haltbarer.

In letzter Zeit wird Monofilament verwendet, das eine hohe mechanische Festigkeit bei kleinem Durchmesser aufweist. Dieses Material wird bei Operationen an Augen und Blutgefäßen (Mikrochirurgie) eingesetzt.

Atraumatisches Nahtmaterial findet in der chirurgischen Praxis zunehmende Verbreitung. Bei der klassischen Nahtmethode wird der Faden in das abnehmbare Öhr einer chirurgischen Nadel eingefädelt und der Durchmesser des Fadens ist immer kleiner als der Durchmesser des Nadelöhrs (traumatisches Nahtmaterial). Bei atraumatischem Nahtmaterial ist der Faden werkseitig fest mit der Nadel verbunden und für das Anlegen einer Naht vorgesehen. Der Hauptvorteil von atraumatischem Nahtmaterial besteht in der ungefähren Übereinstimmung des Fadendurchmessers mit dem Nadeldurchmesser. Nach dem Passieren einer solchen Nadel deckt der Faden den Defekt im Gewebe nahezu vollständig ab.

Am häufigsten werden Seidenfäden verwendet. Sie sind in unterschiedlichen Stärken erhältlich und werden entweder in 8-m-Strängen (unsteril) oder in Ampullen (steril) hergestellt. Abhängig von der Dicke des Fadens gibt es 13 Seidennummern – von Nr. 000 bis Nr. 10. In der Veterinärpraxis ist die am häufigsten verwendete Seide Nr. 1 – dünn (0,01 cm), Nr. 4 – mittel (0,1). cm), Nr. 8 - dick (0,14 cm).

Seidensterilisation. Die Seide wird zunächst in heißem Wasser und Seife gewaschen, mit einem sterilen Handtuch getrocknet und auf Glasspulen, Stäbe oder Glasobjektträger mit abgerundeten Kanten aufgewickelt. Anschließend wird es mit einer der folgenden Methoden sterilisiert.

Sadovskys Methode. Die Seide wird 15 Minuten lang in eine 0,5 %ige Ammoniaklösung getaucht und mit einer sterilen Pinzette in eine 2 %ige Formalinlösung in 65 % Alkohol (Formalin – 2 ml, 96 % Alkohol – 68, Wasser 32 ml) überführt Bis zur Verwendung in dieser Lösung aufbewahren, mindestens jedoch 15 Minuten.

Dönitz-Methode. Seide wird 15 Minuten lang in einer Lösung von Quecksilberdichlorid 1:1000 gekocht. Vor Gebrauch in 96 %igem Alkohol aufbewahren. Vor dem Gebrauch wird empfohlen, Seide 15 Minuten lang in einer Lösung von Quecksilberdichlorid 1:1000 zu kochen.

Kochers Methode. Zum Entfetten wird Seide 12 Stunden lang in Ether gelegt, 12 Stunden lang in 70 %igen Alkohol überführt und dann 10 Minuten lang in einer Lösung von Quecksilberdichlorid 1:1000 gekocht. Bis zur Verwendung in 96 %igem Alkohol gelagert. Vor der Operation wird die Seide noch einmal für 2 Minuten in einer Lösung von Quecksilberdichlorid 1:1000 gekocht.

Sterilisation von Baumwoll- und Leinenfäden. Diese Fäden sind weniger haltbar als Seiden- und Synthetikfäden. Normalerweise werden Fäden Nr. 10 und Nr. 20 verwendet. Baumwoll- und Leinenfäden werden wie Seide nach der Sadovsky-Methode sterilisiert oder 24 Stunden lang in eine 4% ige wässrige Formaldehydlösung getaucht. Es ist auch darin gespeichert.

Sterilisation von Katgut. Es ist nicht möglich, Katgut durch Kochen oder auf andere Weise bei hohen Temperaturen zu verarbeiten. Vor der Sterilisation wird es zu Ringen gerollt oder auf Glasspulen aufgewickelt. Es gibt verschiedene Möglichkeiten, es zu sterilisieren.

Gubarevs Methode. Catgut wird 12 Stunden lang in Benzin entfettet, getrocknet und 14 Tage lang eingetaucht. in einem Glas mit einer 1-2%igen alkoholischen Jodlösung (kristallines Jod - 2 g, Kaliumjodid - 3, Glycerin - 4, Ethylalkohol - 100 g). Nach 14 Tagen. Das Katgut wird in ein anderes Gefäß mit der gleichen Lösung umgefüllt und darin aufbewahrt.

Methode gerollt. Ohne vorherige Entfettung wird Katgut 72 Stunden lang in eine 4 %ige Formaldehydlösung getaucht.

Sadovsky-Kotylev-Methode. Catgut wird 30 Minuten lang in eine 0,5 %ige Ammoniaklösung getaucht und in eine 2 %ige Formaldehydlösung in 65 % Alkohol überführt, in der es bis zur Verwendung, jedoch nicht weniger als 30 Minuten, gelagert wird.

Sterilisation von synthetischen Fäden. Synthetische Fäden (Nylon, Lavsan) werden durch Kochen sterilisiert und in 96 % Alkohol gelagert.

Klassische Methoden zur Sterilisation von Nahtmaterial sind relativ zeitaufwändig und aufwendig. Derzeit ist die Strahlensterilisation in der Fabrik die wichtigste Methode zur Sterilisation von Nahtmaterial. Auf diese Weise wird traumatisches Nahtmaterial, das in einer versiegelten Verpackung geliefert wird, sterilisiert. Catgut wird mit einem Antiseptikum in spezielle Glasampullen gegeben. Nach dem Öffnen der Packungen bzw. Ampullen ist Nahtmaterial nur in 96 %igem Ethylalkohol aufzubewahren.

Das Material, das bei Operationen und Verbänden verwendet wird, um Wunden und das Operationsfeld zu entwässern, Wunden zu tamponieren und verschiedene Verbände anzulegen, wird als Verband bezeichnet. Das Verbandmaterial muss eine gute Hygroskopizität aufweisen, schnell trocknen, elastisch und leicht zu sterilisieren sein.

Von den vielen verschiedenen Verbandmaterialien werden am häufigsten Gaze, Watte und Lignin verwendet. Gaze ist ein Baumwollstoff, der Blut, Eiter und andere Flüssigkeiten gut aufnehmen kann. Mull ist elastisch, weich, verstopft die Wunde nicht und ist daher das Material, aus dem Bandagen, Binden, Tampons und Tücher hergestellt werden. Watte sind die Fasern der Baumwollsamenkapsel. In der Medizin wird Saugwatte verwendet, die über eine hohe Saugfähigkeit verfügt. Über Gaze wird Watte auf die Wunde aufgetragen, was die Saugfähigkeit des Verbandes erhöht und die Wunde vor äußeren Einflüssen schützt. Lignin – gewellte Blätter aus dünnstem Papier, die anstelle von saugfähiger Watte verwendet werden.

Das Verbandsmaterial wird sowohl unsteril in großen Rollen und Beuteln (die Vorbereitung des Verbandsmaterials in der erforderlichen Größe und dessen Sterilisation erfolgt durch medizinisches Personal vor Ort) als auch steril in kleinen, hermetisch verschlossenen Pergamentbeuteln hergestellt. Um Erste Hilfe außerhalb einer medizinischen Einrichtung zu leisten (am Arbeitsplatz, im Feld, zu Hause), ist es am bequemsten, sterile Beutel zu verwenden. Steriles Verbandmaterial gibt es in Form von Binden oder Servietten in verschiedenen Größen und Breiten sowie Einzelbeuteln. Sie stellen spezielle Bandagen und Beutel her, die mit antiseptischen Lösungen imprägniert sind: Jodoform, Brillantgrün, Syntomycin und andere Lösungen, die die Blutgerinnung erhöhen – hämostatische Gaze.

Die Erste Hilfe in Betrieben und Institutionen wird von medizinischem Personal in Gesundheitszentren oder Sanitätsposten geleistet, also von in Erster Hilfe geschulten Betriebsmitarbeitern, die über einen Erste-Hilfe-Kasten, Krankentragen und Schienen verfügen. Gesundheitszentren und Sanitätsstationen müssen mit der notwendigen Versorgung mit sterilem Verbandmaterial ausgestattet sein. Am bequemsten für die Aufbewahrung und Verwendung sind vorgefertigte Standardbeutel mit sterilen Verbänden, Servietten und Watte. Es ist ein individuelles Verbandspaket erforderlich, mit dessen Hilfe Sie die Wunde schnell und zuverlässig vor Kontamination schützen können.

Wenn kein fertiges steriles Material vorhanden ist, kann das Verbandmaterial selbst aus unsterilen großen Mullstücken hergestellt werden (Abb. 1). Servietten und Tampons werden in Packungen zu je 10 Stück verpackt, in Behälter gegeben und autoklaviert. Sterile Verbände werden in geschlossenen Behältern aufbewahrt. In Ermangelung standardisierter Einzelpakete werden improvisierte Einzelpakete angefertigt. Nehmen Sie dazu ein Stück Gaze mit den Maßen 6 x 9 cm, legen Sie eine gleichmäßige Schicht Watte in die Mitte fast bis zum Rand, falten Sie es mit der Gaze nach außen in zwei Hälften und wickeln Sie es in Pergamentpapier mit den Maßen 16 x 16 cm ein. Einzelne Beutel werden platziert in einer Tüte verpackt und sterilisiert.

Reis. 1. Vorbereitung des Verbandmaterials.
a - eine große Serviette; b – mittlere Serviette; c – Verband (die gestrichelte Linie markiert die Faltlinien der Gaze).

Die Sterilisation von Wäsche und Verbänden erfolgt meist mit Dampf unter Druck in Autoklaven. Daher ein anderer Name für diese Art der Sterilisation – Autoklavieren. Der Autoklav ist ein doppelwandiger Metallkessel (Abb. 2) mit hermetisch verschraubtem Deckel. Wasser wird zwischen die Außen- und Innenwände gegossen, bis der auf dem Wasserstandsglas angezeigte Füllstand erreicht ist. Im Inneren des Autoklaven befindet sich eine Sterilisationskammer, in die die zu sterilisierenden Gegenstände eingelegt werden. Das Erhitzen von Wasser in einem Autoklaven erfolgt mit elektrischen Heizgeräten oder Öfen, Gasbrennern. Wenn Wasser kocht, verdampft es, aber da es keinen Auslass für Dampf gibt, steigen Druck und Temperatur im Autoklaven. Bei bestimmten Temperaturen und Drücken sterben Mikroben. Der Druck im Autoklaven wird mit einem Manometer ermittelt. Die rote Linie zeigt die Druckgrenze an, die in einem bestimmten Autoklaven erzeugt werden kann. Der Druck wird über ein Sicherheitsventil reguliert.

Arten von Verbänden und OP-Wäsche

Zu den Verbandmaterialien gehören Mullbällchen, Tampons, Servietten, Bandagen, Turundas und Wattestäbchen. Das Verbandmaterial wird in der Regel unmittelbar vor der Sterilisation vorbereitet, wobei mit speziellen Techniken ein Ausfransen einzelner Mullstränge verhindert wird. Um das Zählen zu erleichtern, werden die Kugeln in 50-100 Stück pro Stück gelegt Mulltücher, Servietten und Tampons werden zu 10 Stück zusammengebunden. Das Verbandmaterial wird nicht wiederverwendet, sondern nach Gebrauch vernichtet.

Zur OP-Wäsche gehören OP-Kittel, Bettlaken, Handtücher und Bettwäsche. Das Material für ihre Herstellung sind Baumwollstoffe. Wiederverwendbare OP-Wäsche wird nach Gebrauch getrennt von anderen Wäschearten gewaschen.

Sterilisation

Verbandsmaterial und Wäsche werden durch Autoklavieren unter Standardbedingungen sterilisiert. Vor der Sterilisation werden Verbände und Wäsche in Behälter gegeben. Es gibt drei Haupttypen des Bix-Stylings: universelles, gezieltes und spezifisches Styling.

Universelles Styling. Wird typischerweise bei Arbeiten in der Umkleidekabine und bei kleineren Operationen verwendet. Bixes werden herkömmlicherweise in Sektoren unterteilt, von denen jeder mit einer bestimmten Art von Verbandmaterial oder Leinen gefüllt ist: In einen Sektor werden Servietten gelegt, in einen anderen Bälle, in den dritten Tampons usw.

Gezieltes Styling. Entwickelt für die Durchführung typischer Manipulationen, Verfahren und kleinerer Operationen. Zum Beispiel Platzierung bei Tracheotomie, Katheterisierung der Vena subclavia, Epiduralanästhesie usw. Alle für den Eingriff notwendigen Instrumente, Verbände und Wäsche werden im Bix untergebracht.

Art des Stylings. Wird normalerweise bei Bedarf in Operationssälen eingesetzt große Menge steriles Material. In diesem Fall werden beispielsweise OP-Kittel in einen Behälter gelegt, Laken in einen anderen, Servietten in einen dritten usw.

Es werden kleine Mengen Verbandmaterial in strahlensterilisierten Verpackungen verwendet. Es gibt auch spezielle Einweg-OP-Wäschesets (Kittel und Laken) aus synthetischen Stoffen, die ebenfalls einer Strahlensterilisation unterzogen wurden.

Behandlung der Hände des Chirurgen

Das Reinigen (Waschen) der Hände des Chirurgen ist ein sehr wichtiger Vorgang. Für das Händewaschen gelten bestimmte Regeln.

Die klassischen Methoden der Handbehandlung von Spasokukotsky-Kochergin, Alfeld, Furbringer und anderen sind nur von historischem Interesse und werden derzeit nicht angewendet.

Moderne Methoden zur Behandlung der Hände von Chirurgen

Die Behandlung der Hände des Chirurgen besteht aus zwei Phasen: Händewaschen und Einwirkung von Antiseptika.

Händewaschen

Der Einsatz moderner Methoden beinhaltet das anfängliche Händewaschen mit Seife oder flüssigen Reinigungsmitteln (sofern keine Haushaltskontamination der Hände vorliegt).

Wirkung von Antiseptika

Chemische Antiseptika zur Behandlung der Hände müssen folgende Eigenschaften aufweisen:

Haben eine starke antiseptische Wirkung;

Unschädlich für die Haut der Hände des Chirurgen sein;

Zugänglich und günstig sein (da sie in großen Mengen verwendet werden).

Moderne Methoden der Handbehandlung erfordern keine spezielle Bräunung (sie verwenden filmbildende Antiseptika oder Antiseptika mit Bräunungselement).

Die Hände werden von den Fingerspitzen bis zum oberen Drittel des Unterarms sorgfältig behandelt. Dabei wird eine bestimmte Reihenfolge eingehalten, die auf dem Prinzip basiert, weniger saubere Haut und Gegenstände mit den behandelten Bereichen der Hände nicht zu berühren.

Die wichtigsten modernen Mittel zur Handbehandlung sind Pervomur, Chlorhexidin, Degmin (Degmizid), Cerigel, AHD, Eurosept usw.

Erste Behandlung der Hände

Pervomur (vorgeschlagen 1967 von F.Yu. Rachinsky und V.T. Ovsipyan) ist eine Mischung aus Ameisensäure, Wasserstoffperoxid und Wasser. Wenn die Komponenten kombiniert werden, entsteht Perameisensäure – ein starkes Antiseptikum, das die Bildung eines dünnen Films auf der Hautoberfläche bewirkt, der die Poren verschließt und eine Bräunung überflüssig macht. Verwenden Sie eine vorbereitete 2,4%ige Lösung ex temporo.

Methodik: Das Händewaschen erfolgt 1 Minute lang in Becken, anschließend werden die Hände mit einer sterilen Serviette getrocknet. Der Vorteil der Methode ist ihre Geschwindigkeit. Nachteil: Mögliche Entwicklung einer Dermatitis an den Händen des Chirurgen.

Handbehandlung mit Chlorhexidin

Es wird eine 0,5 %ige alkoholische Chlorhexidinlösung verwendet, wodurch eine zusätzliche Einwirkung von Alkohol zum Zwecke der Bräunung sowie das Trocknen aufgrund der schnellen Verdunstung der Alkohollösung entfällt.

Methodik: Die Hände werden zweimal 2-3 Minuten lang mit einem mit einem Antiseptikum angefeuchteten Tupfer behandelt. Der relative Nachteil der Methode ist ihre Dauer.

Behandlung mit Degmin und Degmizid

Diese Antiseptika gehören zur Gruppe der Tenside (Reinigungsmittel).

Methodik: Die Behandlung erfolgt in Becken für 5-7 Minuten, danach werden die Hände mit einer sterilen Serviette getrocknet. Der Nachteil der Methode ist ihre Dauer.

Behandlung mit AHD, AHD-spezial, Eurosept

Die Wirkstoffe dieser kombinierten Antiseptika sind Ethanol, Polyolfettsäureester und Chlorhexidin.

Methodik: Die Medikamente befinden sich in speziellen Flaschen, aus denen durch Drücken eines speziellen Hebels eine bestimmte Dosis Medikamente auf die Hände des Chirurgen gegossen wird und er die Lösung 2-3 Minuten lang in die Haut seiner Hände einreibt. Der Vorgang wird zweimal wiederholt. Eine zusätzliche Bräunung oder Trocknung ist nicht erforderlich. Die Methode ist praktisch frei von Nachteilen und gilt derzeit als die fortschrittlichste und am weitesten verbreitete.

Trotz bestehender Handbehandlungsmethoden derzeit Chirurgen dürfen alle Operationen und Manipulationen im Kontakt mit dem Blut des Patienten nur mit sterilen Handschuhen durchführen!

Bei kleineren Eingriffen oder in kritischen Situationen können sterile Handschuhe ohne vorherige Handbehandlung getragen werden. Bei routinemäßigen chirurgischen Eingriffen sollte darauf verzichtet werden, da eine Beschädigung des Handschuhs zu einer Infektion der Operationswunde führen kann.

Behandlung des Operationsfeldes

Zunächst erfolgt eine sanitäre und hygienische Behandlung (Waschen in der Badewanne oder Dusche, Wechseln von Bett und Unterwäsche). Am Tag der Operation werden die Haare im Bereich des Operationsfeldes rasiert (Trockenrasur). Auf dem Operationstisch wird das Operationsfeld mit chemischen Antiseptika (organische jodhaltige Präparate, Chlorhexidin, Pervomur, AHD, sterile Klebefilme) behandelt. In diesem Fall werden folgende Regeln beachtet:

Breite Verarbeitung;

Die Reihenfolge ist „von der Mitte zur Peripherie“;

Kontaminierte Bereiche werden zuletzt behandelt;

Wiederholte Behandlung während der Operation (Filonchikov-Grossikh-Regel): Die Hautbehandlung wird vor der Abgrenzung durchgeführt

sterile Unterwäsche, unmittelbar vor dem Schnitt sowie vor und nach dem Anlegen von Hautnähten.

Regeln zur Vorbereitung auf die Operation

Neben der Kenntnis der Grundlagen der Reinigung der Hände des Chirurgen, des Operationsfeldes, der Sterilisation von Instrumenten usw. ist es notwendig, vor Beginn eines chirurgischen Eingriffs eine bestimmte Abfolge von Maßnahmen einzuhalten. Typischerweise läuft die Vorbereitung auf eine Operation wie folgt ab.

Die OP-Schwester bereitet sich als Erste auf die Operation vor. Sie zieht einen speziellen OP-Anzug an, setzt Überschuhe, eine Mütze und eine Maske auf. Dann reinigt sie im präoperativen Raum ihre Hände nach einer der oben genannten Methoden, betritt dann den Operationssaal, öffnet den Beutel mit steriler Wäsche (mit einem speziellen Fußpedal öffnet er den Deckel der Box) und zieht ihn an Tragen Sie einen sterilen Kittel, indem Sie gleichzeitig beide Hände in die Ärmel stecken, ohne mit dem Kittel oder mit den Händen Fremdkörper zu berühren, was zu einer Verletzung der Sterilität führen kann. Danach bindet die Schwester die Schnüre an den Ärmeln des Gewandes fest, und die Krankenschwester bindet das Gewand hinten fest; seine Hände sind unsteril, sodass er nur die Innenseite des Gewandes und den Teil davon, der darauf endet, berühren kann auf dem Rücken der Schwester und gilt anschließend als unsteril.

Im Allgemeinen gilt der Kittel der Krankenschwester und des Chirurgen während der gesamten Operation von vorne bis zur Taille als steril. Sterile Hände sollten nicht über die Schultern gehoben und unter die Taille abgesenkt werden, da dies mit der Möglichkeit einer Verletzung der Sterilität durch unvorsichtige Bewegungen verbunden ist.

Nach dem Anziehen der sterilen Kleidung zieht die Krankenschwester sterile Handschuhe an und deckt einen sterilen Tisch für die Durchführung des Eingriffs: Ein kleiner (oder großer) Operationstisch wird mit vier Lagen steriler Wäsche bedeckt, dann werden die für die Operation notwendigen sterilen Instrumente und Verbände bereitgelegt in einer bestimmten Reihenfolge darauf ausgelegt.

Chirurg und Assistent wechseln die Kleidung und behandeln ihre Hände auf die gleiche Weise. Danach erhält einer von ihnen aus den Händen der Schwester ein langes Instrument (normalerweise eine Pinzette) mit einer mit einem Antiseptikum befeuchteten Serviette und behandelt das Operationsfeld, indem er die Serviette mehrmals mit einem Antiseptikum wechselt. Anschließend kleidet die Krankenschwester den Chirurgen und den Assistenten in sterile Kittel, drapiert sie über die ausgestreckten sterilen Arme und bindet die Bänder an den Handgelenken. Der Pfleger bindet die Kittel hinten zu.

Nach dem Anziehen steriler Kittel grenzen Chirurgen das Operationsfeld mit steriler OP-Wäsche (Laken, Bettwäsche oder Handtüchern) ein und sichern es mit speziellen Wäscheklammern oder Klammern. Die Krankenschwester streift den Chirurgen sterile Handschuhe über die Hände. Erneut wird die Haut behandelt und ein Schnitt vorgenommen, d. h. der chirurgische Eingriff beginnt.

Methoden zur Sterilitätskontrolle

Alle Maßnahmen im Zusammenhang mit der Aufbereitung und Sterilisation von Instrumenten, Wäsche und anderen Dingen unterliegen einer obligatorischen Kontrolle. Sie kontrollieren sowohl die Wirksamkeit der Sterilisation als auch die Qualität der Vorbereitung vor der Sterilisation.

Sterilitätskontrolle

Methoden zur Sterilitätskontrolle werden in direkte und indirekte Methoden unterteilt.

Direkte Methode

Eine direkte Methode zur Sterilitätskontrolle ist die bakteriologische Untersuchung: Ein spezieller steriler Stich wird an sterilen Instrumenten (Haut der Hände des Chirurgen oder des Operationsfeldes, Operationswäsche usw.) durchgeführt, anschließend in ein steriles Reagenzglas gegeben und an ein bakteriologisches Labor geschickt, wo auf verschiedenen Nährmedien geimpft und so die bakterielle Kontamination festgestellt wird.

Die bakteriologische Methode zur Sterilitätskontrolle ist die genaueste. Ein negativer Punkt ist die Dauer der Studie: Das Kulturergebnis liegt erst nach 3-5 Tagen vor und die Instrumente müssen unmittelbar nach der Sterilisation verwendet werden. Daher wird die bakteriologische Forschung wie geplant durchgeführt und anhand ihrer Ergebnisse werden methodische Fehler in der Arbeit beurteilt medizinisches Personal oder Mängel an der verwendeten Ausrüstung. Gemäß den bestehenden Standards, die sich je nach Instrumententyp geringfügig unterscheiden, muss alle 7–10 Tage eine bakteriologische Untersuchung durchgeführt werden. Darüber hinaus werden zweimal im Jahr ähnliche Studien in allen Abteilungen des Krankenhauses durch die sanitären und epidemiologischen Dienste der Bezirke und Städte durchgeführt.

Indirekte Methoden

Indirekte Kontrollmethoden werden hauptsächlich verwendet, wenn thermische Methoden Sterilisation. Mit ihrer Hilfe können Sie die Temperatur bestimmen, bei der die Behandlung durchgeführt wurde, ohne eine genaue Antwort auf die Frage nach dem Vorhandensein oder Fehlen von Mikroflora zu geben. Der Vorteil indirekter Methoden liegt in der schnellen Erzielung von Ergebnissen und der Möglichkeit, diese bei jeder Sterilisation anzuwenden.

Beim Autoklavieren wird üblicherweise eine Ampulle (Reagenzglas) mit einer pulverförmigen Substanz mit einem Schmelzpunkt im Bereich von 110-120 °C in ein Bis gegeben. Nach der Sterilisation achtet die Krankenschwester beim Öffnen des Bix zunächst auf diese Ampulle: Wenn die Substanz geschmolzen ist, kann das Material (die Instrumente) als steril angesehen werden, wenn nicht, war die Erhitzung nicht ausreichend und das Material kann nicht verwendet werden , da es unsteril ist. Für diese Methode werden am häufigsten Benzoesäure (Schmelzpunkt 120 °C), Resorcin (Schmelzpunkt 119 °C) und Antipyrin (Schmelzpunkt 110 °C) verwendet. Anstelle einer Ampulle können Sie einen Temperaturindikator oder ein Maximumthermometer in den Bix einlegen, mit dem sich auch feststellen lässt, wie hoch die Temperatur während der Verarbeitung war.

Ähnliche indirekte Methoden werden für die Sterilisation im Trockenhitzeofen verwendet. Allerdings werden hier Substanzen mit einem höheren Schmelzpunkt (Ascorbinsäure – 190 °C, Bernsteinsäure – 190 °C, Thioharnstoff – 180 °C) und andere Temperaturindikatoren oder Thermometer verwendet.

Qualitätskontrolle der Vorsterilisationsbehandlung

Um die Qualität der Vorsterilisationsbehandlung zu kontrollieren, werden Chemikalien eingesetzt, um Spuren von ungewaschenem Blut oder Reinigungsmittelrückstände auf Instrumenten zu erkennen. Reagenzien verändern in der Regel ihre Farbe in Gegenwart geeigneter Substanzen (Blut, alkalische Reinigungsmittel). Die Methoden werden nach der Behandlung vor der Sterilisation eingesetzt.

Zum Nachweis von sogenanntem okkultem Blut wird am häufigsten der Benzidintest eingesetzt.

Zum Nachweis von Waschmittelspuren werden Säure-Base-Indikatoren verwendet, am gebräuchlichsten ist der Phenolphthalein-Test.

Vorbeugung einer Implantationsinfektion

Bei der Implantation handelt es sich um die Einführung künstlicher, fremder Materialien und Geräte in den Körper des Patienten zu einem bestimmten therapeutischen Zweck.

Merkmale zur Verhinderung einer Implantationsinfektion

Vorbeugung von Implantationsinfektionen – Gewährleistung der strengsten Sterilität aller in den Körper des Patienten eingeführten Gegenstände. Im Gegensatz zum Kontaktweg der Infektion wird bei der Implantation eine Ansteckungsgefahr von nahezu 100 % festgestellt. Im Körper des Patienten verbleibend, wo günstige Bedingungen (Temperatur, Luftfeuchtigkeit, Nährstoffe) herrschen, sterben Mikroorganismen lange Zeit nicht ab und beginnen sich oft zu vermehren, was zu Eiterung führt. In diesem Fall hält ein in den Körper eingebrachter Fremdkörper den Entzündungsprozess anschließend für lange Zeit aufrecht. In einigen Fällen kommt es zur Einkapselung von Kolonien von Mikroorganismen, die nicht absterben und nach Monaten oder Jahren zur Quelle eines Ausbruchs eines eitrigen Prozesses werden können. Somit ist jeder implantierte Körper eine mögliche Quelle der sogenannten ruhenden Infektion.

Quellen einer Implantationsinfektion

Was „hinterlassen“ Chirurgen im Körper des Patienten? Zunächst einmal das Nahtmaterial. Fast kein Eingriff kommt ohne dies aus. Im Durchschnitt setzt der Chirurg bei einer Bauchoperation etwa 50–100 Stiche.

Eine wahrscheinliche Quelle einer Implantationsinfektion sind Drainagen – spezielle Schläuche, die für den Abfluss von Flüssigkeiten, seltener Luft (Pleuradrainage) oder für die Verabreichung von Medikamenten (Katheter) bestimmt sind. Angesichts dieses Infektionswegs gibt es sogar den Begriff der „Kathetersepsis“ (Sepsis ist eine schwere allgemeine Infektionskrankheit, siehe Kapitel 12).

Neben Nahtmaterial und Drainagen enthält der Körper des Patienten künstliche Herzklappen, Blutgefäße, Gelenke usw., verschiedene Metallstrukturen (Klammern, Klammern aus Nahtgeräten, Schrauben, Stricknadeln, Schrauben und Platten für die Osteosynthese), spezielle Geräte ( Cava-Filter, Spiralen, Stents usw.), synthetische Netze, Homofaszien und manchmal transplantierte Organe.

Selbstverständlich müssen alle Implantate steril sein. Die Sterilisationsmethode hängt davon ab, aus welchem ​​Material sie bestehen. Viele Prothesen haben ein komplexes Design und strenge spezielle Sterilisationsregeln. Wenn Gummidrainagen und Katheter in einem Autoklaven oder gekocht sterilisiert werden können, sollten einige Kunststoffprodukte sowie unterschiedliche Materialien mit chemischen Methoden (in antiseptischen Lösungen oder einem Gassterilisator) sterilisiert werden.

Gleichzeitig gilt die Fabriksterilisation mit γ-Strahlen heute als die wichtigste, praktisch zuverlässigste und bequemste Methode.

Die wichtigste wahrscheinliche Quelle einer Implantationsinfektion bleibt das von Chirurgen ständig verwendete Nahtmaterial.

Sterilisation von Nahtmaterial

Arten von Nahtmaterial

Das Nahtmaterial ist heterogen, was mit seinen unterschiedlichen Funktionen verbunden ist. In einem Fall ist die Festigkeit der Fäden am wichtigsten, in einem anderen Fall ihre Resorption im Laufe der Zeit, im dritten Fall die Trägheit gegenüber dem umgebenden Gewebe usw. Während der Operation wählt der Chirurg für jede einzelne Naht den am besten geeigneten Fadentyp aus. Es gibt eine ausreichende Vielfalt an Nahtmaterialarten.

Nahtmaterial natürlichen und künstlichen Ursprungs

Zu den Nahtmaterialien natürlichen Ursprungs gehören Seide, Baumwollfaden und Katgut. Der Ursprung der ersten beiden Arten ist gut bekannt. Catgut wird aus der submukösen Schicht des Darms von Rindern hergestellt. Nahtmaterial künstlichen Ursprungs wird derzeit durch eine große Anzahl von Fäden aus synthetischen Chemikalien repräsentiert: Nylon, Lavsan, Fluorolon, Polyester, Dacron usw.

Resorbierbares und nicht resorbierbares Nahtmaterial

Resorbierbares Nahtmaterial wird zum Nähen von schnell heilendem Gewebe in Fällen verwendet, in denen keine hohe mechanische Festigkeit erforderlich ist. Dieses Material wird zum Zusammennähen von Muskeln, Fasern und Schleimhäuten des Magen-Darm-Trakts, der Gallen- und Harnwege verwendet. Im letzteren Fall vermeidet die Anwendung von resorbierbarem Nahtmaterial die Bildung von Steinen aufgrund der Ablagerung von Salzen auf den Ligaturen. Ein klassisches Beispiel für ein resorbierbares Nahtmaterial ist Catgut. Catgut-Fäden werden nach 2-3 Wochen vollständig vom Körper aufgenommen. Eine Verlängerung der Resorptionszeit sowie eine Erhöhung der Festigkeit des Katguts wird durch Imprägnierung der Fäden mit Metallen (verchromter Katgut, seltener - Silberkatgut) erreicht, in diesem Fall erhöht sich die Resorptionszeit auf 1-2 Monate .

Zu den synthetischen resorbierbaren Materialien gehören Dexon, Vicryl und Oxylon. Ihre Resorptionszeit entspricht in etwa der von verchromtem Katgut, sie weisen jedoch eine höhere Festigkeit auf, was die Verwendung dünnerer Fäden ermöglicht.

Alle anderen Fäden (Seide, Nylon, Lavsan, Polyester, Fluor usw.) werden als nicht resorbierbar bezeichnet – sie verbleiben lebenslang im Körper des Patienten (mit Ausnahme entfernbarer Hautnähte).

Nahtmaterial mit unterschiedlicher Fadenstruktur

Es gibt geflochtene und gedrehte Nahtmaterialien. Korbgeflecht ist schwieriger herzustellen, aber haltbarer. Fortschritte in der Chemie haben in jüngster Zeit die Möglichkeit eröffnet, Fäden in Form eines Monofilaments zu verwenden, das eine hohe mechanische Festigkeit bei kleinem Durchmesser aufweist. Monofilamente werden in der Mikrochirurgie, der Schönheitschirurgie sowie bei Operationen an Herz und Blutgefäßen eingesetzt.

Traumatisches und atraumatisches Nahtmaterial

Viele Jahre lang fädelte die OP-Schwester während eines chirurgischen Eingriffs unmittelbar vor dem Anbringen einer Naht den entsprechenden Faden in das abnehmbare Öhr einer chirurgischen Nadel ein. Ein solches Nahtmaterial wird derzeit als traumatisch bezeichnet.

In den letzten Jahrzehnten hat sich atraumatisches Nahtmaterial durchgesetzt. Der Faden ist werkseitig fest mit der Nadel verbunden und für das Anbringen einer Naht vorgesehen. Der Hauptvorteil von atraumatischem Nahtmaterial ist die ungefähre Übereinstimmung des Fadendurchmessers mit dem Durchmesser der Nadel (bei Verwendung von traumatischem Material ist die Dicke des Fadens deutlich geringer als der Durchmesser des Nadelöhrs), also Der Faden deckt den Defekt im Gewebe nach dem Passieren der Nadel nahezu vollständig ab. In diesem Zusammenhang muss für vaskuläre und kosmetische Nähte atraumatisches Nahtmaterial verwendet werden. Berücksichtigt man auch die Schärfe von Einwegnadeln und die einfache Handhabung, ist davon auszugehen, dass atraumatisches Nahtmaterial traumatisches Nahtmaterial in naher Zukunft nach und nach vollständig ersetzen wird.

Fadenstärke

Zur Vereinfachung der Handhabung sind allen Fäden je nach Stärke Nummern zugeordnet. Der dünnste Faden ist Nr. 0, der dickste ist Nr. 10. Bei allgemeinchirurgischen Eingriffen werden üblicherweise Fäden Nr. 1 bis Nr. 5 verwendet. Der Faden Nr. 1 kann beispielsweise zum Nähen oder Abbinden kleiner Gefäße verwendet werden, wobei grau-seröse Nähte an der Darmwand angebracht werden. Fäden Nr. 2 und 3 – zum Abbinden mittelgroßer Gefäße, zum Anbringen serös-muskulärer Nähte am Darm, zum Nähen des Peritoneums usw. Faden Nr. 5 wird normalerweise zum Nähen der Aponeurose verwendet.

Bei Gefäßoperationen, insbesondere mikrochirurgischen Eingriffen, werden noch dünnere Fäden als Faden Nr. 0 benötigt. Solchen Threads wurden die Nummern 1/0, 2/0, 3/0 usw. zugewiesen. Der dünnste Faden, der derzeit in der Augenheilkunde und bei Operationen an Lymphgefäßen verwendet wird, ist Nr. 10/0. Zu beachten ist, dass sich Fäden auch in anderen Eigenschaften unterscheiden: Einige gleiten besser und neigen zum Auflösen, andere federn bei Spannung zurück, sind gegenüber Stoffen mehr oder weniger träge, mehr oder weniger haltbar usw.

In letzter Zeit haben sich Fäden mit antimikrobieller Wirkung durch die Einführung von Antiseptika und Antibiotika (Letilan-Lavsan, Fluorlon usw.) in ihre Zusammensetzung verbreitet.

Etwas abseits stehen Metallklammern, Klemmen und Klammern aus Edelstahl, Titan, Tantal und anderen Legierungen.

Diese Art von Nahtmaterial wird in speziellen Nähmaschinen verwendet.

Methoden zum Sterilisieren von Nahtmaterial

Derzeit ist die Strahlensterilisation in der Fabrik die wichtigste Methode zur Sterilisation von Nahtmaterial. Dies gilt in vollem Umfang für atraumatisches Nahtmaterial: Nadel und Faden werden in einer separaten versiegelten Verpackung untergebracht, auf der Größe, Krümmung und Art (Stechen oder Schneiden) der Nadel, Material, Länge und Fadennummer angegeben sind. Das Nahtmaterial wird sterilisiert und anschließend verpackt an medizinische Einrichtungen geliefert.

Sie können auch nur Fäden sterilisieren. Darüber hinaus können Fadenstücke in versiegelte Glasampullen mit einer speziellen antiseptischen Lösung und Fadenspulen in spezielle versiegelte Behälter mit derselben Lösung gegeben werden.

Klassische Methoden zur Sterilisation von Seide (Kocher-Methode) und Catgut (Sitkovsky-Methode in Joddampf, Gubarev- und Claudius-Methoden in Alkohol und wässrigen Lugol-Lösungen) sind aufgrund ihrer Dauer, Komplexität und nicht immer ausreichenden Wirksamkeit derzeit verboten.

Sterilisation von Strukturen, Prothesen, Transplantaten

Die Methode zur Sterilisation von Implantaten hängt ganz vom Material ab, aus dem sie hergestellt sind.

Metallstrukturen für die Osteosynthese (Platten, Schrauben, Schrauben, Stricknadeln) werden zusammen mit metallfreien Instrumenten im Autoklaven oder Trockenhitzeofen sterilisiert.

Komplexere Prothesen (Herzklappenprothesen, Gelenke), die nicht nur aus Metall-, sondern auch aus Kunststoffteilen bestehen, lassen sich am besten mit chemischen Methoden sterilisieren – in einem Gassterilisator oder durch Einweichen in antiseptische Lösungen.

In letzter Zeit produzieren führende Hersteller von Prothesen diese in versiegelten, durch Strahlung sterilisierten Verpackungen.

Neben verschiedenen Strukturen und Prothesen können auch allogene Organe, die einem anderen Organismus während einer Transplantation entnommen wurden, eine Quelle einer Implantationsinfektion sein. Eine Sterilisation von Transplantaten ist nicht möglich, daher muss bei der Organentnahme strengste Sterilität eingehalten werden: Die Entnahmevorgänge werden unter Einhaltung der gleichen aseptischen Regeln wie bei herkömmlichen chirurgischen Eingriffen durchgeführt. Nachdem das Organ aus dem Körper des Spenders entnommen und mit sterilen Lösungen gewaschen wurde, wird es in einen speziellen versiegelten Behälter gegeben, wo es bis zur Transplantation unter sterilen Bedingungen verbleibt.

Die Sterilisation medizinischer Geräte ist ein langwieriger und arbeitsintensiver Vorgang, auf den keine Klinik verzichten kann. Diese Manipulation erfolgt in drei Schritten, die jeweils besondere Sorgfalt und Gewissenhaftigkeit erfordern. Um die Arbeit von Ärzten zu erleichtern und schädliche Mikroorganismen effizient zu vernichten, werden sterilisierende Medizinprodukte heute aktiv eingesetzt. Ihre Hauptvorteile sind Komfort und Zuverlässigkeit.

Was muss in medizinischen Einrichtungen sterilisiert werden?

Diese Art der Behandlung wird bei allen medizinischen Instrumenten angewendet, die mit der Wundoberfläche, den Schleimhäuten und dem Blut des Opfers in Kontakt kommen.

Das angegebene Toolkit besteht aus folgenden Komponenten:

1. Verbandmaterial.
2. Laborglaswaren: Bechergläser, dünne Glasröhrchen, Kegel.
3. Betriebswäsche.
4. Nadeln.
5. Gummiprodukte für medizinische Zwecke: Katheter, Handschuhe, Sonden, Drainageschläuche.
6. Geräte, die beschädigte Körperoberflächen berühren.
7. Kleine zahnärztliche Instrumente: Bohrer, Kanalfüller, Bohrer.
8. Geräte und Ausrüstung für diagnostische Tätigkeiten.

Video: Reinigung und Desinfektion schulmedizinischer Instrumente

Hauptstadien der Sterilisation

Das betrachtete Verfahren erfolgt in drei Schritten, deren Reihenfolge unbedingt einzuhalten ist:

1. Desinfektion

Sorgt für die Beseitigung schädlicher Mikroorganismen im Raum, auf Instrumenten und Verbrauchsmaterialien, die in Kliniken verwendet werden. Gleichzeitig werden nicht nur Böden, Wände und Hartmöbel desinfiziert, sondern auch die Luft, Patientenpflegeprodukte, Sanitäranlagen etc.

• Der Aufenthalt einer Person mit einer Infektionskrankheit im Krankenhaus ist ein Grund für die Durchführung fokale Desinfektion.
• In Operationssälen und Manipulationsräumen wird in der Regel wöchentlich eine Grundreinigung durchgeführt. Die Nassreinigung der Räumlichkeiten erfolgt täglich. Eine solche Reihe von Aktivitäten wird aufgerufen vorbeugende Desinfektion.

Abhängig vom Zweck der Geräte, die mit der Haut in Kontakt kommen, gibt es drei Arten der Desinfektion:

1. Niedriges Niveau. Geeignet für die Desinfektion von Geräten, die mit intakter Haut in Kontakt kommen. Die Hauptmittel dieser Art der Desinfektion sind Präparate, die Chlor, Phenol, Ethyl- oder Isopropylalkohol sowie Jodophore enthalten. Diese Medikamente sind nicht in der Lage, die Vermehrungsprodukte von Pilzen und Bakterien sowie kleine Viren nicht-lipider Natur zu zerstören. Sie kommen mit dem Rest der Gruppe pathogener Mikropartikel gut zurecht.
2. Hohes Level. Es wird zur Behandlung von Medizinprodukten eingesetzt, die mit Blut, Injektionslösungen, Blutgefäßen und sauberem Körpergewebe in Kontakt kommen. Die Hauptbestandteile dieser Art der Desinfektion sind eine 6%ige Lösung aus Wasserstoffperoxid, Aldehyd- und Chlorverbindungen sowie Präparate einschließlich Peressigsäure. Solche Produkte beseitigen alle pathogenen Mikropartikel mit Ausnahme von Pilzwachstumsprodukten.
3. Mittelstufe. Ermöglicht den Umgang mit großen Lipidviren und vegetativen Bakterienformen. Nicht-Lipid-Mikroviren, bakterielle Wachstumsprodukte, sind gegen eine solche Reinigung resistent. Bei Instrumenten, die mit Schleimhäuten oder aufgerissener Haut in Berührung kommen, kommt eine Mitteldesinfektion zum Einsatz.

Die Desinfektion erfolgt auf verschiedene Arten:

• Mechanisch. Beinhaltet das Abwischen von Oberflächen mit einem feuchten Tuch, das Waschen von OP- und Bettwäsche sowie das Staubsaugen von Möbeln und Böden. Darüber hinaus ist eine regelmäßige Belüftung aller Räume in der Klinik verpflichtend.
• Biologisch. Um bestimmte schädliche Mikroorganismen zu eliminieren, greifen sie auf Bakteriophagen zurück. Diese Antagonisten haben ein enges Wirkungsspektrum und werden daher hauptsächlich zur Desinfektion von Räumen und harten Oberflächen eingesetzt.
• Körperlich. Zu desinfizierende Gegenstände sind hohen Temperaturen ausgesetzt. Dies kann Kochen in einer Lösung aus destilliertem Wasser mit Soda, Dampfbehandlung oder trockene Luft sein. Diese Methode ist für Klinikmitarbeiter ungefährlich und zeichnet sich durch ihre Zuverlässigkeit aus.
• Chemisch. Die beliebteste Desinfektionsmethode in medizinischen Einrichtungen. Für diejenigen, die mit chemischen Reagenzien arbeiten, kann es sehr aggressiv sein. Daher wird empfohlen, die zu desinfizierenden Produkte auf Gitter in den Kammern zu legen. Der Kern der betrachteten Technik besteht darin, medizinische Geräte in desinfizierende chemische Lösungen einzutauchen. Der Behälter, in den diese Medikamente gegossen werden, muss aus Kunststoff oder Glas bestehen oder mit einer Emailleschicht bedeckt sein. Die Desinfektionsmittel selbst müssen in dicht verschlossenen Behältern aufbewahrt werden, in denen die genaue Bezeichnung des Arzneimittels, das Herstellungsdatum und die Verwendungsbedingungen angegeben sind. Bei der Arbeit mit solchen Stoffen müssen Pflegekräfte Atemschutzmaske, Schutzbrille und Handschuhe tragen. Der Raum muss zu diesem Zeitpunkt belüftet bzw. belüftet werden. Bestimmte chemische Lösungen dürfen nicht mit warmem/heißem Wasser verdünnt werden, da dies zu einer verstärkten Verdunstung körperschädigender Stoffe führt.

Alle chemischen Desinfektionsmittel werden aufgrund ihrer Zusammensetzung in 7 Gruppen eingeteilt:

1. Sauerstoffhaltige Zubereitungen. Die aktive Komponente ist hier Sauerstoff. Der prominenteste Vertreter dieser Gruppe ist Wasserstoffperoxid.
2. Guanidhaltige Produkte. Sie leisten gute Arbeit bei der Beseitigung einer Vielzahl pathogener Bakterien. Sie werden durch folgende Produkte repräsentiert: Gibitan, Lisetol AF, Fogucid usw.
3. Halogenhaltige Stoffe, die auf Jod, Chlor und Brom basieren.
4. Tenside (Tenside), die im Laufe der Zeit nicht zur Rostbildung auf Metallen führen. Dank ihrer Eigenschaften ist es möglich, den Vorgang der Desinfektion und der Reinigung vor der Sterilisation zu kombinieren.
5. Alkohole. Geeignet für die Behandlung von Arbeitsflächen, medizinischen Geräten und auch für die Haut.
6. Zubereitungen, die Bernsteinsäure oder Glutaraldehyd enthalten. Bekämpfen Sie effektiv Bakterien, Viren, Sporen und Makroorganismen.
7. Produkte auf Phenolbasis. Sie werden häufig zur Reinigung von Räumen eingesetzt, in denen sich Tuberkulosepatienten aufhalten.

Unmittelbar nach dem Gebrauch werden kontaminierte Arbeitsmittel in einen speziellen Behälter getaucht, der mit einer chemischen Desinfektionslösung gefüllt ist. Die Höhe der Flüssigkeit über dem Gerätespiegel muss mindestens 1 cm betragen. Bei starker Verschmutzung erfolgt die Reinigung zweimal. Die Desinfektion endet mit dem Waschen medizinischer Geräte unter fließendem Wasser. Sollten zu diesem Zeitpunkt noch Verunreinigungen vorhanden sein, werden diese mechanisch mit einer Bürste, Serviette oder Bürste entfernt.

2. Reinigung vor der Sterilisation (PSC)

Es ist für eine qualitativ hochwertige Aufbereitung von Instrumenten erforderlich, die mit Wundoberflächen und Schleimhäuten in Kontakt kommen.

Diese Geräte werden zunächst zerlegt und in einen Behälter mit einer vorbereiteten Lösung getaucht. Für diese Technik werden spezielle Lösungen hergestellt oder fertige Desinfektionsmittel verwendet. Im ersten Fall werden Wasser, Wasserstoffperoxid und Reinigungsmittel verwendet.

Die Qualität der Reinigung medizinischer Instrumente wird durch spezielle Tests an drei Produkteinheiten beurteilt.

3. Direkte Sterilisation

Es handelt sich um eine obligatorische Technik zur Bearbeitung von Instrumenten, die mit sauberem Körpergewebe, Blutgefäßen und Blut in Kontakt kommen.

Die vollständige Sterilisation erfolgt mit Sterilisatoren – Spezialgeräten.

Es gibt drei Hauptsterilisationsmethoden:

1) Thermisch

Eingeteilt in:

• Dampf unter Verwendung eines Autoklaven. Die Desinfektion erfolgt durch Einwirkung von Dampf unter Überdruck. Hier beginnen die Krankheitserreger bereits bei einer Temperatur von 120 °C abzusterben. Dieser Vorgang kann zwischen 15 Minuten und 1 Stunde dauern. Die Reinigungszeit hängt vom Material ab, aus dem das Produkt besteht, und vom Grad der Verschmutzung.
• Luft, im Trockenofen. Es dient zur Desinfektion von Gegenständen, die aufgrund ihrer spezifischen Struktur keinen Gasen und Dämpfen ausgesetzt werden können. Schädliche Mikroorganismen in solchen Geräten werden unter dem Einfluss hoher Temperaturen (180 °C) abgetötet.
• Mikrowelle. Geeignet für die Reinigung kleiner Mengen chirurgischer oder Laborgeräte. Das Prinzip der Sterilisation besteht darin, Gegenstände in ein Teilvakuum zu bringen und sie Mikrowellen auszusetzen. Diese Manipulation dauert nur 30 Sekunden.

2) Chemisch

Es gibt verschiedene Arten:

1. Plasma. Beinhaltet die Verwendung von 20-prozentigem Wasserstoffperoxid.
2. Ozonsterilisation. Dauert etwa 60 Minuten.
3. Reinigung mit Dämpfen chemischer Verbindungen. Für ähnliche Zwecke können verwendet werden:

• Ethylenoxid mit Methylbromid: zur Sterilisation von Gummi-, Glas-, Metall- und Polymerprodukten sowie medizinischen Optiken und Herzschrittmachern. Für diese Desinfektionsmethode wird ein Gassterilisator verwendet.
• Dämpfe von Formaldehyd und Wasser. Bei einer Temperatur von 75 °C werden Geräte aus Gummi, Glas, Metall und Polymer 5 Stunden lang in einem stationären Formaldehyd-Sterilisator verarbeitet.

3) Radioaktiv

Basierend auf dem Prinzip der Umwandlung ionischer Energie in chemische und thermische Energie. Dies begünstigt die Zerstörung der DNA von Krankheitserregern, wodurch der Prozess der Vermehrung pathogener Mikropartikel gestoppt und deren Existenz vollständig gestoppt wird.

Diese Methode wird häufig unter Fabrikbedingungen bei der Massenproduktion medizinischer Geräte (z. B. Einwegspritzen) eingesetzt.

Video: Der Prozess der Desinfektion und Sterilisation medizinischer Instrumente

Alle Methoden zur Sterilisation von Instrumenten, Verbänden usw. in der Medizin heute – notwendige Ausrüstung

Heutzutage werden in der medizinischen Praxis am häufigsten Sterilisatoren verwendet, die mit Heißluft oder Dampf reinigen.

Jeder von ihnen hat seine eigenen Nachteile und Vorteile.

1. Trockensterilisationsmethode wirkt sich negativ auf die Festigkeit von Glas und Metall aus. Auch kleine Dentalgeräte leiden darunter: Bei Temperaturen über 160 °C werden sie stumpf und spröde. Ein weiterer negativer Aspekt dieser Art der Desinfektion ist die Unfähigkeit, die Qualität der Reinigung von Gegenständen zu kontrollieren.
2. Heutzutage ist die Desinfektion das effizienteste und hochwertigste Mittel Dampftechnik. Damit können hochtemperaturempfindliche Instrumente bearbeitet werden. Mit diesen Geräten durchlaufen Medizinprodukte alle drei Stufen der Sterilisation. Dampf für die Autoklavensterilisation wird durch Kochen von Wasser in einem Boiler erzeugt. Der spezifizierte Dampf gelangt in die Sterilisationskammer, wo kontaminierte Gegenstände platziert werden. Um den Normaldruck aufrechtzuerhalten, ist ein Sicherheitsventil vorgesehen. Darüber hinaus ist der Autoklav mit einem Manometer und einem Thermometer zur Messung des Dampfdrucks bzw. der Temperatur ausgestattet.

Moderne Autoklaven gibt es in drei Klassen:

• AusstattungsklasseN. Eignet sich gut zum Reinigen von unverpackten Stoffmaterialien sowie von soliden, glatten medizinischen Geräten.
• GeräteklasseS. Kann zur Desinfektion verpackter Gegenstände aus Stoff sowie poröser und glatter Instrumente verwendet werden.
• Autoklaven der Klasse B. Sie sind ein universelles Sterilisationsgerät, da sie für alle medizinischen Geräte geeignet sind. Besonders beliebt sind sie in Zahnkliniken.

Um den Sterilisationsprozess zu erleichtern und zu beschleunigen, bietet der Medizinartikelmarkt folgende Geräte an:

1. Geräte zum schonenden Verpacken von Geräten vor der Sterilisation.
2. Waschmaschinen zur Desinfektion. Hilft, sichtbaren Schmutz zu entfernen. Ihr Hauptzweck ist die Vorsterilisationsbehandlung medizinischer Instrumente.
3. Brennereien. Relevant für medizinische Einrichtungen, die Autoklaven aktiv nutzen – zur Dampfreinigung wird destilliertes Wasser verwendet.