Dom · Alat · Šta je sterilizacija parom pod pritiskom (autoklaviranje)? Fizičke metode sterilizacije Sterilizacija parom pod pritiskom

Šta je sterilizacija parom pod pritiskom (autoklaviranje)? Fizičke metode sterilizacije Sterilizacija parom pod pritiskom

Sterilizacija se obavlja u autoklavu pod pritiskom obično (posuđe, fiziološki rastvor, destilovana voda, hranljivi mediji koji ne sadrže proteine ​​i ugljene hidrate, razni uređaji, proizvodi od gume) 20-30 minuta na temperaturi od 120-121°C ( 1 atm.), iako mogu postojati i drugi odnosi između vremena i temperature u zavisnosti od predmeta koji se steriliše.

Sve otopine koje sadrže proteine ​​i ugljikohidrate steriliziraju se u autoklavu na 0,5 atm. (115 °C) 20-30 minuta.

Svaki materijal zaražen mikroorganizmima (zarazni) sterilizira se pod pritiskom od 1,5 atm. (127 °C) - 1 sat, ili pri pritisku od 2,0 atm. (132 o C) – 30 minuta.

Kada se rastvori koji se sterilišu nalaze u staklenim posudama, na kraju ciklusa sterilizacije potrebno je kontrolisati vreme hlađenja, kao i polako snižavati pritisak, jer se autoklav može otvoriti tek nakon što se u njemu uspostavi pritisak. okruženje.

Sterilizacija zračenjem

Zračenje može biti nejonizujuće (ultraljubičasto, infracrveno, ultrazvučno, radiofrekventno) i ionizirajuće - korpuskularno (elektroni) ili elektromagnetno (rendgenski ili gama zraci).

Efikasnost zračenja zavisi od primljene doze, a izbor doze je određen mikrobnom kontaminacijom, oblikom i sastavom materijala koji se steriliše.

Ultraljubičasto zračenje(254 nm) ima nisku sposobnost prodiranja, stoga zahtijeva prilično dugo izlaganje i koristi se uglavnom za sterilizaciju zraka i otvorenih površina u prostorijama.

Jonizujuće zračenje, prije svega, gama zračenje se uspješno koristi za sterilizaciju u industrijskim uvjetima medicinskih uređaja od termolabilnih materijala, jer omogućavaju brzo zračenje materijala u fazi proizvodnje (na bilo kojoj temperaturi i u zatvorenoj ambalaži). Trenutno se široko koristi za proizvodnju sterilnih plastičnih proizvoda za jednokratnu upotrebu (špricevi, sistemi za transfuziju krvi, Petrijeve zdjelice) i hirurških zavoja i materijala za šavove.

Mehaničke metode

Filteri zadržavaju mikroorganizme zbog porozne strukture matrice, ali je potreban vakuum ili pritisak da bi otopina prošla kroz filter, budući da sila površinske napetosti s tako malom veličinom pora sprječava filtriranje tekućina.

Postoje 2 glavne vrste filtera - dubinski i filterski.

Dubinski filteri se sastoje od vlaknastih ili zrnatih materijala (azbest, porculan, glina), koji su komprimovani, namotani ili povezani u labirint protočnih kanala, tako da nema jasnih parametara veličine pora.

Čestice se zadržavaju u njima kao rezultat adsorpcije i mehaničkog zarobljavanja u matrici filtera, što daje prilično veliki kapacitet filtera, ali može dovesti do zadržavanja dijela otopine.

Filterski filteri imaju kontinuiranu strukturu, a njihova efikasnost hvatanja čestica je određena prvenstveno njihovim usklađivanjem s veličinom pora filtera. Membranski filteri imaju mali kapacitet, ali efikasnost je nezavisna od brzine protoka i pada pritiska, a zadržava se malo ili nimalo filtrata.

Membranska filtracija trenutno se široko koristi za sterilizaciju ulja, masti i rastvora koji su nestabilni na toplotu - rastvor za intravenske injekcije, dijagnostičke lijekove, otopine vitamina i antibiotika, podloge za kulturu tkiva itd. itd.

Hemijske metode

Metode kemijske sterilizacije povezane s upotrebom hemijske supstance, koji imaju izraženu antimikrobnu aktivnost, dijele se u 2 grupe: sterilizacija plinovima i otopinama (češće poznata kao “dezinfekcija”).

Metode hemijske gasne sterilizacije se koriste u terapijski i preventivni ustanove za dezinfekciju medicinski materijali i opremu koja se ne može sterilisati drugim sredstvima (optički instrumenti, pejsmejkeri, aparati za srce-pluća, endoskopi, polimerni proizvodi, staklo).

Mnogi plinovi imaju baktericidna svojstva (formaldehid, propilen oksid, ozon, peroctena kiselina i metil bromid), ali je etilen oksid najčešće korišten jer je dobro kompatibilan sa razni materijali(ne izaziva koroziju metala, oštećenja na obrađenim proizvodima od papira, gume i svih vrsta plastike). Vrijeme ekspozicije prilikom upotrebe gasna metoda sterilizacija varira od 6 do 18 sati u zavisnosti od koncentracije gasna mešavina i zapreminu posebnog aparata (kontejnera) za ovu vrstu sterilizacije. Prema „Metodološkim preporukama za dezinfekciju, predsterilizacijsko čišćenje i sterilizaciju medicinski instrumenti» br. 26-613 od 09.02.88. za sterilizaciju gasovima moguća je upotreba mikroanaerostata kao aparata za gasnu sterilizaciju, a pored etilen oksida ili mešavine etilen oksida sa metil bromidom, pare od 40 % formaldehida u etil alkoholu na temperaturi od 80°C u sterilizacionoj sobnoj kameri 60 minuta.

Kontrola steriliteta proizvodi se u posebno opremljenim kutijama koje isključuju mogućnost sekundarnog kontakta proizvoda s mikroflorom. Za kontrolu se odabire najmanje 1% istovremeno steriliziranih proizvoda. Proizvodi se inokuliraju u hranjivu podlogu radi kontrole. Ako nema rasta bakterija, zaključuje se da je proizvod sterilan.

Sterilizacija rastvorima se koristi kod obrade većine površina (prostora) ili medicinskih uređaja koji se ne mogu dezinfikovati drugim metodama.

Prema zahtjevima industrijskog standarda OST 42-21-2-85 "Smjernice za dezinfekciju, čišćenje prije sterilizacije i sterilizaciju medicinskih proizvoda", većina medicinskih proizvoda od metala, stakla, plastike, gume prolazi kroz tretman prije sterilizacije, koji se sastoji od nekoliko faza:

Potapanje u otopinu za pranje sa proizvodom potpuno uronjenim u otopinu za dezinfekciju 15 minuta;

Pranje svakog rastavljenog proizvoda u otopini za pranje ručno u trajanju od 1 minute;

Ispiranje dobro opranih predmeta pod tekućom vodom 3-10 minuta;

Sušenje toplim zrakom u pećnici.

Kontrola kvaliteta predsterilizacionog čišćenja medicinskih sredstava na prisustvo krvi vrši se izvođenjem amidopirinskog testa. Preostale količine alkalne komponente deterdžent utvrđeno fenolftaleinskim testom.

Prema zahtjevima istog OST-a, obavezan uvjet za sterilizaciju medicinskih proizvoda s otopinama je potpuno uranjanje proizvoda u rastavljenu sterilizacijsko otopinu, uz punjenje kanala i šupljina, na temperaturi otopine od najmanje 18 °C. Koristite samo emajlirane posude (bez oštećenja) sa staklenim ili plastičnim poklopcima. Nakon sterilizacije, proizvodi se brzo vade iz otopine pincetom ili pincetom, otopina se uklanja iz kanala i šupljina, zatim se sterilizirani proizvodi dva puta uzastopno ispiru sterilnom vodom. Sterilizirani proizvodi se odmah koriste za predviđenu svrhu ili se stavljaju u sterilnu posudu obloženu sterilnom posteljinom i čuvaju ne duže od 3 dana. IN poseban časopis voditi obaveznu evidenciju o svim ciklusima hemijska sterilizacija sa naznakom datuma, tačnog vremena sterilizacije (punjenje, vađenje rastvora), naziva upotrebljenog leka i njegove koncentracije.

Preparati koji se koriste za sterilizaciju razvrstavaju se u grupe: kiseline ili baze, peroksidi (6% rastvor vodonik peroksida), alkoholi (etil, izopropil), aldehidi (formaldehid, glutaraldehid), halogeni (hlor, hloramin, jodofori - veskodin), kvaternarne amonijum baze , fenolna jedinjenja (fenol, krezol).

Osim toga, univerzalni preparati se mogu koristiti kao pogodna i ekonomična rješenja za dezinfekciju, tj. omogućava dezinfekciju od svih oblika mikroorganizama (bakterija, uključujući Mycobacterium tuberculosis, virusa, uključujući HIV, patogene gljive) ili kombinovanih preparata (“Deseffect”, “Alaminal”, “Septodor”, “Virkon”), kombinujući dva procesa istovremeno - dezinfekciju i tretman prije sterilizacije.

Skup mjera dezinfekcije usmjerenih na uklanjanje ili uništavanje uzročnika zaraznih bolesti u objektima ili na biotičkim objektima životne sredine, odnosno tokom njihovog prenošenja sa izvora na osjetljive ljude, dijeli se na 2 vrste: fokalnu dezinfekciju i preventivnu dezinfekciju.

Fokalna dezinfekcija provodi se u žarištima epidemije i, zauzvrat, dijeli se na tekuću, ako je prisutan izvor patogena, i konačnu, ako je izvor uklonjen.

Trenutna dezinfekcija ima za cilj stalnu dezinfekciju izmeta, povraćanja, ispljuvka, patološkog sekreta, zavoja i drugih predmeta u okruženju pacijenta koji su ili bi mogli biti kontaminirani patogenima tokom čitavog perioda dok pacijent ili nosilac služi kao izvor infektivnog agensa.

Završna dezinfekcija ima za cilj uništavanje patogenih mikroorganizama koji ostaju u izbijanju u održivom stanju na različitim objektima, iako je izvor uklonjen, odnosno nakon hospitalizacije, oporavka ili smrti pacijenta. Prilikom završne dezinfekcije tretiraju se prostorije, izmet, povraćanje, posteljina, kućni potrepštini i svi drugi predmeti koji bi mogli biti kontaminirani uzročnicima ove bolesti. Ovu vrstu dezinfekcije obično provode specijalizirane službe državnih organa za epidemiološki nadzor.

Preventivna dezinfekcija provodi se ako izvor infekcije nije otkriven, ali se pretpostavlja mogućnost njegovog postojanja. Ova vrsta dezinfekcije najčešće se koristi u medicinske ustanove(prevencija profesionalna infekcija medicinsko osoblje bolničke infekcije), u preduzećima Catering, preduzeća koja se bave proizvodnjom, preradom i prodajom prehrambenih proizvoda, kao i na mjestima gdje se može nalaziti izvor uzročnika infekciona zaraza među zdravom populacijom.

Za crijevne infekcije mjere dezinfekcije za čišćenje i dezinfekciju izvora pijaće vode, Otpadne vode, smeće, prehrambeni proizvodi, materijal od pacijenata, posuđe, posteljina, ugostiteljski objekti, kupatila. Tekuća i završna dezinfekcija se provode u izbijanju.

Za infekcije respiratornog trakta Dezinfekcija se provodi u cilju smanjenja mikrobnog zagađenja zraka u određenim prostorijama, što se može postići ne samo mokrim čišćenjem i dezinfekcijom predmeta u okruženju pacijenta, već i ventilacijom ili UV zračenjem zraka u datoj prostoriji.

U žarištima vektorskih infekcija mjere dezinfekcije se sprovode samo kod kuge, tularemije, Q groznice i u objektima u kojima se radi sa krvlju.

U slučaju infekcija spoljašnjeg integumenta, svi korišćeni predmeti (platneno rublje, češljevi, makaze, sunđeri) u kupatilima, tuševima, bazenima, frizerskim salonima moraju se dezinfikovati, a preporučljivo je, ako je moguće, koristiti univerzalne preparate koji imaju baktericidno dejstvo ( uključujući sporicidna), virucidna, fungicidna svojstva.

Prilikom prevencije bolničkih infekcija, svi medicinski proizvodi moraju se dezinfikovati nakon svakog pacijenta, ruke osoblja, površine rane, hirurška polja itd., itd.

Biološka sterilizacija- baziran na upotrebi antibiotika, koji se koristi ograničeno - u kulturama tkiva za uzgoj virusa.

Kontrola sterilizacije

Zahtjevi za kontrolu opreme za sterilizaciju navedeni su u " Smjernice za praćenje rada parnog i vazdušnog sterilizatora » 15/6 - 5 od 26.02.1991

Planirano praćenje rada sterilizatora provodi se najmanje 2 puta godišnje. Samokontrola rada sterilizatora vrši se svaki put kada se uređaj puni.

Kontrola sterilizacije se vrši fizičkim, hemijskim i biološkim metodama.

Fizičko-hemijske metode kontrole su metode operativne kontrole parametara režima rada parnih i vazdušnih sterilizatora, čiji se rezultati uzimaju u obzir tokom ciklusa sterilizacije ili neposredno nakon njegovog završetka.

Fizička metoda kontrola se vrši pomoću mernih instrumenata za temperaturu (termometri) i pritisak (manometri).

Metoda kemijske kontrole je namijenjena za operativnu kontrolu jednog ili više načina rada parnih i vazdušnih sterilizatora. To se provodi pomoću hemijskih testova i termohemijskih indikatora. Hemijska ispitivanja je staklena cijev zapečaćena na oba kraja, punjena mješavinom kemijskih spojeva s organskim bojama, ili samo kemijskim spojem koji mijenja svoje stanje agregacije i boju kada dostigne određenu tačku topljenja. Upakovani hemijski testovi su numerisani i postavljeni na različite kontrolne tačke u parnim i vazdušnim sterilizatorima. Termohemijski indikatori To su trake papira na čiju se jednu stranu nanosi indikatorski sloj koji mijenja boju u boju standarda kada se promatraju temperaturni parametri sterilizacijskog režima.

Biološka metoda dizajniran za praćenje efikasnosti sterilizatora na osnovu smrti spora test kulture. Izvodi se upotrebom biotestovi. Biotest - dozirana količina test kulture na nosaču, na primjer, na disk od filter papira, ili stavljena u ambalažu (staklene boce za lijekovi ili folijske čaše). Spore se koriste kao test kulture za praćenje rada parnog sterilizatora Bacillus stearothermophilus VKM V-718, a sterilizator zraka - spore Bacillus licheniformis. Nakon sterilizacije, testovi se stavljaju na hranljivi medij. Nedostatak rasta na hranljivoj podlozi ukazuje na smrt spora tokom sterilizacije.

Biološka kontrola

Ova vrsta kontrole se sprovodi 2 puta godišnje. U tu svrhu, biotestovi dizajnirani za specifičan tip sterilizacija parom ili suvim vazduhom.

Numerisana pakovanja sa biotestovima postavljaju se na kontrolne tačke sterilizatora. Nakon sterilizacije, u epruvete sa biotestovima dodaje se 0,5 ml obojene hranljive podloge, počevši od sterilne epruvete za kontrolu hranljivog medijuma i završavajući kontrolnim testom koji nije bio podvrgnut sterilizaciji (kontrola kulture).

Zatim se epruvete inkubiraju. Nakon toga se uzimaju u obzir promjene boje hranljivog medija. U kontroli (sterilni uzorak) boja podloge se ne mijenja. U epruveti za kontrolu kulture, boja podloge treba da se promeni u boju naznačenu u pasošu, što ukazuje na prisustvo živih spora.

Rad se smatra zadovoljavajućim ako se boja hranljive podloge nije promenila u svim biotestovima. Rezultati se evidentiraju i bilježe.

Ukoliko je potrebno pratiti sterilnost medicinskih sredstava koja se podvrgavaju sterilizaciji, laboratorijski asistent u bakteriološkoj laboratoriji ili operativna medicinska sestra, pod vodstvom osoblja bakteriološke laboratorije, uzima uzorke na sterilnost.

Studija se provodi u skladu sa „Metodološkim preporukama za praćenje sterilnosti medicinskih proizvoda“. Uzorci se inokuliraju na hranljive podloge u skladu sa pravilima asepse u kutijama bakteriološke laboratorije. U slučajevima kada su proizvodi podložni kontroli velika veličina, uzorci se uzimaju ispiranjem sterilnom salvetom. Ako nema rasta mikroorganizama u svim kulturama iz uzoraka proizvoda od jednog punjenja u sterilizator, smatraju se sterilnim. Ako postoji rast na najmanje jednoj hranjivoj podlozi, vrši se ponovljena kontrola dvostrukog broja uzoraka iz ovog opterećenja.

Autoklaviranje obavlja posebno obučen stručnjak, jer servisiranje uređaja koji radi pod pritiskom zahtijeva obuku i striktno pridržavanje sigurnosnih propisa.

B. Za sterilizaciju termolabilnih materijala (na primjer, složenih hranljivih podloga). frakciona sterilizacija tekućom parom kada vrata autoklava nisu dobro zatvorena. Uključuje ponavljanje sljedećeg ciklusa 3-4 puta: materijal se tretira 30-60 minuta tekućom parom u autoklavu na temperaturi od 100 0 C ili se drži u vodenom kupatilu na 80 0 C, a zatim se stavlja u termostat na 37 0 C na dan u termostatu, bakterijske spore koje nemaju vremena da odumru klijaju u vegetativne forme, koje umiru tokom sljedećeg ciklusa tretmana.

Tindalizacija- više meka verzija Frakcijska sterilizacija se koristi za sterilizaciju još termolabilnijih predmeta. U tom slučaju sterilizirani predmet se drži na temperaturi od 56–60 0 C 5–6 dana za redom, a između toga se stavlja u termostat radi klijanja spora.

Tindalizacija/frakciona sterilizacija je neefikasna protiv priona.

Nedostaci metode parne sterilizacije je zbog činjenice da para se pretvara u kondenzat, uzrokujući koroziju metala instrumenata, a takođe vlaži materijale uz rizik od ponovne infekcije.

    Vazdušna metoda. Sterilizacija suvim toplim vazduhom se vrši na metalu u pećnicama sa suvom toplotom („suhe toplotne peći“) (Sl. 68). Načini sterilizacije uključuju temperaturu i vrijeme (tabela 25).

Rice. 68. Sukhozhorovy sterilizator

Tabela 25

Načini sterilizacije suhom toplinom

Suhi vrući zrak ne vlaži proizvod, što znači da ne uzrokuje koroziju metala alata.

Nedostaci metode vazdušne sterilizacije povezan sa fizička svojstva suvi topli vazduh:

    uzrokuje sušenje bakterijskih stanica, zbog čega se stopa njihove smrti usporava;

    Efikasnost sterilizacije se smanjuje ako se zbog nepravilnog punjenja instrumenata, vazdušne praznine, u kojoj je temperatura niža (toplotna provodljivost zraka je manja od pare). Stoga su pećnice sa suhim grijanjem opremljene unutrašnjim ventilatorima za prisilna cirkulacija zrak;

    pri dužem izlaganju može izazvati ugljenisanje materijala koji se steriliše, pa se sterilizacija suvom toplotom koristi za proizvode od toplotno stabilnih materijala (staklo, metal), kao i za hidrofobne supstance (ulja).

5. Glasperlene metoda (staklene perle) je namenjen za brzu sterilizaciju potpuno metalnih instrumenata koji nemaju šupljine, kanale ili delove za zaključavanje (Sl. 69).

Glasperlene metoda se koristi u stomatologiji za ekspresnu sterilizaciju malih instrumenata (burs, pulpe ekstraktor, iglice korijena), kao i radnih dijelova većih instrumenata (sonde, glačalice, lopatice). Također možete sterilizirati igle za akupunkturu. Glasperlene sterilizator se može koristiti tokom dana. Sterilizovani instrumenti ne postaju tupi i ne hrđaju.

Glasperlene metoda se koristi za sterilizaciju dentalnih instrumenata u evropskim zemljama i Izraelu od 1997. godine. Međutim, nije odobren u SAD, jer sterilizacijom glasperlenom instrument nije potpuno steriliziran, već samo njegov radna zona. Može se koristiti samo u kombinaciji sa hemijskom sterilizacijom.

Nedostaci metode glasperlena:

    Sterilizacija glasperlenom nije potpuna metoda sterilizacije. Samo mali, potpuno metalni instrumenti koji su potpuno postavljeni u okruženje zagrijanih staklenih perli mogu se potpuno sterilizirati. Prilikom sterilizacije velikih instrumenata samo se radni dio može staviti u prostor za sterilizaciju. Proizvođači stranih glasperlenskih sterilizatora često ukazuju na nerazumno kratko vrijeme držanja: 5-15 sekundi. Istovremeno, eksperimentalni podaci pokazuju da čak i uz vrijeme držanja od 180 sekundi nije osigurana sterilizacija klešta, makaza i drugih instrumenata s masivnim dijelovima za zaključavanje;

    Instrumenti se mogu sterilisati samo ako nisu zapakovani. Instrumenti sterilisani u Glasperlene sterilizatoru ne mogu se čuvati;

    Ne postoje hemijska sredstva za praćenje rada sterilizatora za glasperlen.

6. Ultraljubičasto zračenje sa talasnom dužinom od 260 nm koristi se za sterilizaciju vazduha u zatvorenom prostoru (u operacionim salama, boksovima) i tečnosti (mleko, sokovi, voda). Izvor ultraljubičastog zračenja su baktericidne i kvarcne lampe. Izlaganje UV zracima mora biti direktno, jer imaju slabu prodornu sposobnost i ne prolaze običnog stakla, bijeli papir. Dugotrajan rad lampe smanjuje intenzitet zračenja, pa je preporučljivo vršiti zračenje povremeno. Vrijeme ozračivanja je 30-60 minuta. UV zraci mogu izazvati oticanje sluzokože očiju, tako da ne treba biti u prostoriji sa upaljenim lampama.

7. Metoda zračenja . Sredstvo za sterilizaciju u sterilizaciji zračenjem je - i β-zračenje. Najviše se koristi -zračenje, koje ima visoku prodornu sposobnost (obično izotop kobalta-60, rjeđe izotop cezijuma-137). Izotopi koji emituju β koriste se izuzetno rijetko, jer β-zračenje ima mnogo manju moć prodiranja.

Efikasnost sterilizacije zračenjem zavisi od ukupne doze zračenja i ne zavisi od vremena. Prosječna smrtonosna doza za mikroorganizme je uvijek ista bez obzira da li se zračenje daje malim intenzitetom u dužem vremenskom periodu ili kratkotrajnim visokim intenzitetom zračenja. Doza od 25 kGy (2,5 Mrad) pouzdano garantuje uništavanje vrlo otpornih spornih oblika mikroorganizama. Temperatura sterilisanih proizvoda se ne povećava tokom sterilizacije.

Metoda zračenja se koristi za visokoefikasnu industrijsku sterilizaciju proizvoda koji ne mogu izdržati visoke temperature: proizvodi za jednokratnu upotrebu od polimernih materijala (štrcaljke, kapaljke, kateteri), alati za rezanje, materijal za šavove i zavoje, neki lijekovi. Velike serije upakovanog materijala mogu se sterilisati. Proces sterilizacije je automatizovan.

Radijacijska sterilizacija se ne koristi u zdravstvenim ustanovama zbog visoke cijene instalacija i iz sigurnosnih razloga.

8.Infracrveno zračenje stvara temperaturu od 200±30 0 C u radnoj komori malog sterilizatora Puni ciklus sterilizacije neupakovanih instrumenata traje od 10 do 25 minuta u infracrvenom sterilizatoru (zavisno od instrumenata), uključujući i faze unošenja režim i hlađenje.

Nedostaci infracrvene sterilizacije:

    nemogućnost sterilizacije upakovanih instrumenata;

    Ograničena prihvatljivost zbog štetnog djelovanja na polimernih materijala(plastika, guma, itd.);

    Ne postoje hemijska sredstva za praćenje rada infracrvenih sterilizatora.

9. Izlaganje ultrazvuku visoke frekvencije dovodi do stvaranja pjene iz sićušnih mjehurića plina koji su u otopljenom stanju u ćeliji CP. To dovodi do rupture CS i smrti mikroorganizama. Sokovi se sterilišu ultrazvukom.

Hemijske metode sterilizacije

Hemikalije se koriste za niskotemperaturnu sterilizaciju velikih predmeta, kao i materijala i opreme osjetljivih na toplinu koji postaju neupotrebljivi drugim metodama sterilizacije.

1. Gasni metod koristi se za sterilizaciju velikih proizvoda, kao i termolabilne medicinske opreme i proizvoda od gume i plastike (endoskopi i pribor, dijalizatori, kateteri).Upotrebljavaju se hemijska jedinjenja koja imaju bezuslovno sporicidno dejstvo: etilen oksid, metil bromid, a mješavina etilen oksida i metil bromida. Gasna sterilizacija zahtijeva strogu kontrolu temperature, vlažnosti, koncentracije sterilizirajućeg plina, tlaka i izloženosti. Ovo je moguće samo ako imate opremu sa automatskim ciklusom.

Etilen oksid koristi se za sterilizaciju predmeta osjetljivih na temperature iznad 60 0 C. Etilen oksidu je potrebno više vremena za sterilizaciju nego toplinska obrada. Obično se sterilizacija etilen oksidom provodi tri sata na 30-60 0 C i relativnoj vlažnosti iznad 30%, koncentracija plina je 200-800 mg/l. Etilen oksid je vrlo zapaljiv.

Nedostatak plinske sterilizacije je da gasovi mogu ući hemijska reakcija sa materijalima proizvoda, stvarajući toksična i kancerogena jedinjenja. Stoga je nakon plinske sterilizacije neophodno otplinjavanje – uklanjanje ostataka nanesenog proizvoda sa sterilnih proizvoda u posebnim aeratorima 2 sata.

2. Sterilizacija tečnosti sa rastvorima hemijskih jedinjenja (sterilanti) se koristi za sterilizaciju termolabilnih medicinskih instrumenata, materijala za šavove, rukavica, optički instrumenti, za odlaganje igala i alata.

    na sobnoj temperaturi: koji sadrži kiseonik (6-90% vodonik peroksid) i hlor (Dezoxon-1), 96% etil alkohol;

    na povišenim (do 40–50 0 C) temperaturama: aldehidi (2% glutaraldehid, formaldehid, 0,55% ortoftalni aldehid).

Sterilizacija rastvorima hemijskih jedinjenja vrši se u sterilnim posudama od stakla, metala, plastike otporne na toplotu sa proizvodima koji su potpuno uronjeni u rastvor i slobodno položeni. Da bi se izbjeglo razrjeđivanje radna rješenja koji se koriste za sterilizaciju, proizvodi uronjeni u njih moraju biti suhi.

35 –90% vodikov peroksid Koristi se za sterilizaciju predmeta osjetljivih na toplinu i temperaturu kao što su kruti endoskopi. Najveća prednost vodikovog peroksida kao sterilansa je njegovo kratko vrijeme ciklusa: upotreba visokih koncentracija vodikovog peroksida može smanjiti vrijeme ciklusa sterilizacije u modernim instalacijama na 28 minuta. Vodikov peroksid se može miješati s mravljom kiselinom u uređajima za sterilizaciju endoskopa.

Međutim, ne mogu se svi predmeti sterilizirati vodikovim peroksidom i njegova sposobnost prodiranja je niža od etilen oksida.

Aldehidi. Sterilizacija formaldehidom vrši se na temperaturi od 60-80 0 C u trajanju od 60 minuta. Mnoge vakcine se sterilišu formaldehidom. Formaldehid se ne može koristiti za sterilizaciju optički instrumenti, endoskopska oprema, implantati.

0,2% sirćetne kiseline koristi se za sterilizaciju instrumenata.

0,01% natrijum mertiolat koristi se za konzerviranje seruma i tečnih vakcina.

Aantibiotici dodaje se u podloge za kulturu prilikom provođenja viroloških i imunoloških studija.

Srebrni joni obezbediti toksični efekat na neke bakterije, viruse, alge i gljive zbog oligodinamičkog učinka srebra. Međutim, testiranje i standardizacija ove metode skidanja je teško.

Prioni su veoma otporni na hemijsku sterilizaciju. Hlor I natrijev hidroksid najefikasniji su protiv priona.

Nedostaci sterilizacije rastvorima hemijskih jedinjenja:

    Za sterilizaciju se potrebno pripremiti na isti način kao i za rad u operacionoj sali (sterilni ogrtač, rukavice, navlake za cipele, maska). Prostorija treba da bude opremljena kao bakteriološka kutija;

    na kraju procesa potrebno je neutralizirati otopinu za sterilizaciju sterilnom destilovanom vodom;

    hemikalije često imaju kratkoročno rok trajanja, izazivaju koroziju instrumenata; potrebno je koristiti supstance koje su hemijski kompatibilne sa predmetima koji se obrađuju;

    nemogućnost sterilizacije upakovanih proizvoda;

    poteškoće u praćenju efikasnosti obrade;

    upotreba hemijskih sterilisanih sredstava stvara nove probleme za bezbednost na radu: mnoga hemijska sredstva za sterilizaciju su isparljiva i toksična u kontaktu sa kožom i sluzokožom.

Dakle, rješenja hemikalije Preporučljivo je koristiti ga za sterilizaciju samo u slučajevima kada upotreba drugih odobrenih metoda sterilizacije nije moguća.

Zanimljiva je tehnologija sterilizacija pomoću elektrohemijski aktiviranih rastvora (anolita), proizvedeno u posebnim instalacijama.

Prednosti elektrohemijski aktivirana rješenja su da se, ako postoji električna energija, ta sredstva mogu dobiti direktno iz zdravstvenih ustanova iz pije vodu i kuhinjske soli. “Neutralni anolit” se preporučuje za sterilizaciju endoskopa na sobnoj temperaturi u trajanju od 45 minuta.

Nedostatak Ovi proizvodi imaju štetni učinak na proizvode od metala otpornih na koroziju.

3. Sterilizacija plazmom. Plazma je produkt raspadanja vodikovog peroksida koji nastaje pod uticajem elektromagnetnog zračenja.

Plazma sterilizacija se izvodi na temperaturi od 46-50 0 C u trajanju od 54-72 minuta. Plazma sterilizatori se mogu koristiti u centraliziranim i decentraliziranim sistemima sterilizacije. Najmanji plazma sterilizator zauzima površinu od 1 m2, zapremina njegove radne komore je 50 litara.

Vodikov peroksid se razlaže na netoksične produkte - vodu i kisik, bez štetnog djelovanja na ljude i okoliš.

Nedostaci plazma sterilizacije:

    proizvodi od celuloze, poliamida, gume, praha, tečnosti, hirurškog platna, oblačenje;

    nedostupna metoda za široku upotrebu u zdravstvenim ustanovama zbog visoke cijene opreme. Upotreba plazma metode najprikladnija je za sterilizaciju jedinstvenih termolabilnih proizvoda koji su dostupni u jednom primjerku i koji se koriste više puta tokom radnog dana. Za svakodnevnu rutinsku sterilizaciju vrijedi odabrati pristupačniju i jeftiniju metodu;

    nema opšte prihvaćenih međunarodnim standardima za ovu metodu.

4. Sterilizacija ozonom. Ozon je jako oksidaciono sredstvo. Dugi niz godina se ozon koristi u industrijskih objekata za sterilizaciju vode i vazduha za piće, kao i za dezinfekciju površina. Nedavno je predložen za sterilizaciju u medicini. Sterilizacija se vrši u specijalnih uređaja mješavina ozona i zraka koju proizvodi ozonski generator iz atmosferskog zraka.

Nedostaci sterilizacije ozonom:

    Oksidirajuća moć ozona ograničava njegovu primjenu. Kontakt sa ozonom može oštetiti proizvode od čelika, bakra i gume;

    ozon je toksičan, a uređaji koji su danas dostupni ne dozvoljavaju zaštitu osoblja od kontakta s njim;

    ozon je nestabilan;

    razvoj režima sterilizacije u odnosu na specifične proizvode pokazao se problematičnim zbog ograničenja u mogućnostima kreiranih uređaja za uzorke.

Mehanička sterilizacija

Mehanička sterilizacija (filtracija) uključuje prolazak steriliziranog materijala kroz filtere, mehanički zadržavanje mikrobnih ćelija i njihovo adsorbiranje u pore filtera.

Filteri sa veličinom pora od 0,2 mikrona efikasno zadržavaju bakterije. Virusi se također mogu zadržati ako filter ima veličinu pora od 20 nm. Prioni se ne mogu ukloniti filtracijom. Filteri se izrađuju od fino poroznih materijala (kaolin, azbest, porcelan, nitroceluloza). Stavljaju se u poseban držač filtera, a zatim se sterilizirani rastvor propušta pod pritiskom. Kada postoji visok stepen kontaminacije, uzastopno se koriste filteri sa različitim veličinama pora (od velikih do malih) i tokom filtracije se postupno „iskorenjuju“ mikroorganizmi različitih veličina. Filtracija se koristi za dobijanje malih količina sterilnih rastvora.

Može se sterilisati filtriranjem termolabilne tečnosti (lijekovi; hranljivi mediji koji sadrže proteine ​​i vitamine) I zrak(tokom imunoloških i viroloških studija). Da bi se postigli najbolji rezultati, sterilizacija tečnosti filtracijom se vrši u haubama sa laminarnim protokom, u kojima se takođe filtrira vazduh.

Opća pravila. Sterilizacija parom (vlažnom toplotom) se izvodi u autoklavu sa zasićenom parom pod pritiskom, obično 15-20 minuta na temperaturi od 121°C. Kada se pritisak pare poveća, njena temperatura raste (tabela 6).

Tabela 6

Temperatura zasićene pare pri različitim pritiscima

* Trenutno se pritisak obično izražava u paskalima, 1 atm (fizička atmosfera) = 1,01325 10 5 Pa - 10 2 kPa.

Možete kontrolirati temperaturu u autoklavu korištenjem tvari koje imaju određenu tačku topljenja. Stavljaju se u autoklav u epruvete sa dodatkom boje (benzonaftol, tačka topljenja (t^) 110 °C, benzojeva kiselina, / pl 120 °C).

Posebnu pažnju treba posvetiti sterilizaciji medija za kulturu. Režim autoklaviranja, koji je u ovom slučaju najčešća i najefikasnija metoda, ne bi trebao mijenjati svojstva medija (tabela 7).

Tabela 7

Način sterilizacije za različite medije autoklaviranjem

Po pravilu, opšte je prihvaćeno da pri pritisku, atm; 0,5; 1.0; 1.5; 2.0 je postignut određene temperature, °C; 115, 120, 127, 133. Pritisak se povećava na 2 atm teška blokada materijal sa temperaturno otpornim oblicima mikroorganizama. Trajanje sterilizacije zavisi od sastava predmeta koji se steriliše i stepena njegove bakterijske kontaminacije i kreće se od 30 minuta do 1-1,5 sati.

Efikasnost sterilizacije se proverava setvenim materijalom za koji je poznato da je kontaminiran sporama na hranljive podloge. Materijal se čuva u autoklavu zajedno sa predmetima koji se sterilišu.

Većina autoklava je gravitacijski: para se kreće u njima odozgo prema dolje pod utjecajem razlike u gustoći zraka i pare. Veoma važno pravilnu pripremu uzorke koje treba sterilizirati i u skladu s tim napuniti autoklav.

Najpogodniji su automatski autoklavi opremljeni senzorima vremena i automatskim regulatorima temperature. Laboratorijski autoklavi moraju imati senzore načina rada na skali termometra. Paketi uzoraka trebaju biti postavljeni slobodno jedno u odnosu na drugo kako ne bi ometali prodiranje pare.

U zavisnosti od zapremine tečnosti i broja posuda u punjenju menja se i trajanje sterilizacije (tabela 8). Manji je za male količine. Tako je moguće odabrati trajanje ciklusa sterilizacije prema veličini i broju posuda.

Tabela 8

Uticaj zapremine tečnosti i broja posuda na vreme potrebno da se postigne temperatura od 121 °C u autoklavu

Na kraju ciklusa sterilizacije potrebno je polako smanjiti pritisak, striktno poštujući trajanje hlađenja steriliziranog hranjivog medija. Prije otvaranja autoklava, uvjerite se da je dostigao ambijentalni pritisak prikazan na manometru. Ako prerano otvorite poklopac autoklava (prije nego što tlak padne), može doći do ulaska zraka, kontaminacije otopine, ključanja tekućine u posudama ili tikvicama i guranja čepova iz njih. Prilikom sterilizacije tikvica i boca, čepove treba dobro zatvoriti kako bi se omogućila ventilacija i spriječilo lomljenje stakla.

Hranjive podloge koje sadrže ugljikohidrate steriliziraju se u autoklavu na sniženom tlaku (0,5 atm) i temperaturi od 110-112°C 10-15 - 20 minuta, računajući vrijeme od trenutka kada se postigne željeni tlak.

Medij se sipa ne više od polovine visine posude (tablica 9), čepovi od vate trebaju biti prilično gusti, umotani u gazu, ali ne u celofan. Vrat tikvice prekriva se novinama ili pergamentom preko čepa i učvršćuje koncem.

Tabela 9

Nivo punoće razne vrste tikvice sa tečnostima

Sterilizacija parom. Sterilizacija parom.

Zasićena vodena para pod pritiskom ima visoka biocidna svojstva, ne oštećuje većinu sterilisanih materijala i ne mora se oslobađati od sterilizatora. Za S.p. odlikuje se pouzdanošću, dostupnošću, sigurnošću za osoblje, efikasnošću i visokim stepenom automatizacije. Sterilizacijski učinak pare povezan je sa zagrijavanjem predmeta tokom procesa kondenzacije pare u vodu na površini i unutar objekta. Efekat kondenzacije je optimalan za zasićenu paru kada sadrži samo 3% tečne faze. Pregrijana para koji sadrži manje od 2% tečne faze, može spaliti predmet; mokra para(više od 3% tečne faze) u velikoj meri vlaži predmete. Za postizanje efekta sterilizacije potrebno je i da se zrak potpuno ukloni iz radne komore, inače može ometati kontakt pare s površinom predmeta i ostaviti ga nesterilnim. Dostupne su 2 vrste parnih sterilizatora. Prvi su gravitacijski pokretni sterilizatori; u njih prodire mlaz pare gornji dio komoru i istiskuje vazduh iz nje kroz odvodnu cijev. Pritisak i temperatura pare se povećavaju i dostižu zadatu vrednost. Pokreće se tajmer koji održava konstantnu temperaturu do kraja ekspozicije. Nakon toga, para se uklanja kroz odvod iz komore; Obloga komore ostaje vruća, a njena suha toplota isušuje predmete koji se sterilišu. Poklopac (vrata) se otvara kada temperatura komore padne na 90 °C. U suprotnom, posude s tekućinom mogu eksplodirati. Drugi tip se zove predvakumski parni sterilizator. U njemu, vakuum sistem u 2 ciklusa izvlači većinu vazduha iz komore i predmeta koji se sterilišu kroz drenažu, nakon čega se komora i njen omotač pune parom pod pritiskom. Pritisak i konstantna temperatura se održavaju automatski. Nakon završetka perioda sterilizacije, komora se prazni od pare i predmeti se suše pomoću vakum sistema, a filtrirani vazduh se uvodi u komoru. Sterilizator je ispražnjen. U zavisnosti od predmeta koji se sterilišu, temperatura pare u parnim sterilizatorima je podešena od 110 do 138°C, pritisak pare je od 0,4 do 2,5 atm, vreme izlaganja je od 15 do 60 minuta. Parom steriliziraju se gotovo svi proizvodi od metala, stakla, plastike otporne na toplinu, gume, platna, obloga i šavni materijal, hranljive podloge, uključujući tečnosti, lekove. S.p. - preferirani metod sterilizacije. Izuzetak su termolabilni materijali, veliki predmeti i složeni višekomponentni uređaji kao što su endoskopi.

(Izvor: Rječnik mikrobioloških pojmova)


Pogledajte šta je "sterilizacija parom". u drugim rječnicima:

    autoklaviranje/parna sterilizacija- Vidi i Autoklav. [Englesko-ruski pojmovnik osnovnih pojmova u vakcinologiji i imunizaciji. Svjetska zdravstvena organizacija, 2009] Teme vakcinologija, imunizacija EN parni autoklav... Vodič za tehnički prevodilac

    sterilizacija- i, f. sterilizacija f. 1. Uništavanje mikroorganizama ključanjem, zagrevanjem, izlaganjem hemikalijama itd.; dezinfekcija. Sterilizacija mleka. Sterilizacija zračenjem. Sterilizacija parom. ALS 1. Sterilizacija hirurških ... ... Istorijski rečnik galicizama ruskog jezika

    STERILIZACIJA- STERILIZACIJA. Sterilizacija u hirurgiji. Za dezinfekciju hirurških metalni sterilizatori se koriste za instrumente. 1. Slika 2. petokrake. Najjednostavniji, najpogodniji za upotrebu u terenskim uslovima (hitna hirurgija, u ... ... Velika medicinska enciklopedija

    I Sterilizacija (lat. sterilis sterile) je potpuno uništavanje svih vrsta mikroorganizama i njihovih spora na površini i unutar različitih predmeta, kao iu tečnostima i vazduhu. Koristi se u medicini, mikrobiologiji, gnotobiologiji, hrani...... Medicinska enciklopedija

    AND; i. [od lat. sterilis sterile] 1. Uništavanje mikroorganizama raznih supstanci i predmeta djelovanjem visokih temperatura, hemikalija, filtracije u prehrambenim proizvodima, na hirurški instrumenti, zavojni materijal. SA… … enciklopedijski rječnik

    STERILIZACIJA- (od lat. sterilis sterile), sterilnost, uništavanje raznih mikroorganizama i njihovih spora u raznim predmetima uz pomoć fizičkih i hemijski faktori. S. je važan za kliničku veterinarsku medicinu u svim hirurškim zahvatima, ... ... Veterinarski enciklopedijski rječnik- događaj za borbu protiv štetočina i zamora tla. S. p.ch. provodi se tretiranjem tla raznim antisepticima (hloroform, toluen, hloropikrin i druga jedinjenja koja uništavaju štetočine i fitopatogene mikroorganizme) i... ... Rječnik u nauci o zemljištu

    sterilizacija- I; i. (od lat. sterilis sterile) vidi takođe. sterilizacija 1) Uništavanje mikroorganizama raznih supstanci i predmeta visokim temperaturama, hemikalijama, filtracijom u prehrambenim proizvodima, na hirurškim instrumentima,... ... Rečnik mnogih izraza

(autoklaviranje)~ najefikasniji metod sterilizacije (temperatura iznad 100 X). Izvodi se u posebnom autoklavnom aparatu. Princip sterilizacije zasniva se na činjenici da čista zasićena vodena para sa visok krvni pritisak, kondenzacijom, povećava temperaturu unutar kotla (autoklava). Smanjenje zapremine pare nakon kondenzacije olakšava njeno prodiranje u unutrašnjost predmeta koji se steriliše."

Vertikalni autoklav (sl. 29, A) To je cilindrični metalni kotao sa dvostrukim stijenkama, zatvoren odozgo poklopcem. Voda se ulijeva kroz posebnu slavinu s lijevkom između zidova do određenog nivoa. Unutrašnji zid kotla ima rupe u gornjem delu, a u donjem delu kotla slavinu, kroz koju pri zagrevanju vode para istiskuje vazduh iz kotla za autoklav. Na autoklav se postavlja metalni zaštitni okvir, a između njega i samog autoklava mora biti slobodan prostor. Autoklav se grije na struju. Nakon punjenja autoklava zatvaraju se poklopac i slavina kroz koju se sipa voda, donja slavina ostaje privremeno otvorena. Zagrijana voda između zidova autoklava ključa, a nastala para se diže prema gore

Rice. 28. Električno vodeno kupatilo:

I- okvir; 2 - termometar-regulator; 3 - poklopac; 4- kontrolna tabla

i kroz gornje rupe unutrašnjeg zida prolazi u unutrašnjost kotla, istiskujući vazduh kroz donju otvorenu slavinu. Kada se sav zrak istisne i para počne izlaziti ravnomjerno, zatvorite donju slavinu. Kao rezultat, povećava se pritisak pare unutar autoklava. Početkom sterilizacije smatra se trenutak kada manometar dostigne zadatu vrijednost. Grijanje se reguliše tokom sterilizacije, održavajući pritisak na istom nivou. Ako je pritisak u autoklavu prevelik, predviđen je sigurnosni ventil kroz koji izlazi višak pare. Moderni autoklavi isporučeno automatski uređaj regulisanje režima rada. Kako pritisak pare raste, temperatura u autoklavu se povećava u skladu s tim; Dakle, pri pritisku od 50,6 kPa temperatura će biti 110...I2X, na 101,3 kPa - 120...I21, na 151,9 kPa - 124...126, na 202,6 kPa - 132...133 X .

Manometri bilježe pritisak pare bez uzimanja u obzir okoline atmosferski pritisak(760 mmHg). Nakon isteka vremena sterilizacije, autoklav se isključuje. Nakon hlađenja, kada je očitavanje manometra nula, otvorite kućište da ispustite paru. Pažljivo stavite poklopac autoklava na sebe, ne gledajući u kotao, štiteći lice od mogućeg izlaganja zaostaloj pari. Nemoguće je otvoriti poklopac autoklava dok se para potpuno ne oslobodi, jer brzim padom tlaka unutar autoklava sterilizirani tekući medij ključa, a čepovi iz epruveta se istiskuju zajedno s tekućinom.

Rice. 29. (dole) Dijagram vertikalnog i horizontalnog autoklava:

/(- vertikalni autoklav: /-stalka; 2 - cijev za mjerenje vode; 3- vrana; 4-sigurnosni ventil; 5- manometar; th - poklopac; 7-vijčani terminali; S- bojler; 9- kućište;

10- komora za sterilizaciju; // - vodena komora; /2 - ventil za ispuštanje pare. I - horizontalni autoklav: U - postolje; 2 - grijaći element; 3 - poklopac kotla; 4-sigurnosni ventil; J-ventil; 6- kućište; 7-parna komora; 8- komora za sterilizaciju; 9 - manometar u parnoj komori; 10 - trosmjerni ventil; // - sifonska cijev parne komore; 12 - potporni prsten; 13 - poklopac parne komore; 14- volan; /5-ulazni ventil; /6-manometar kotla; 17- trosmjerni kotlovski ventil; 18- sifonska cijev kotla; 19- grana cijevi; 20- lijevak; 21 - indikator vode; 22- bowler


Kako pritisak pare raste, temperatura u autoklavu se povećava u skladu s tim; Dakle, pri pritisku od 50,6 kPa temperatura će biti 110...I2X, na 101,3 kPa - 120...I21, na 151,9 kPa - 124...126, na 202,6 kPa - 132...133 X .

Manometri bilježe pritisak pare bez uzimanja u obzir okolnog atmosferskog tlaka (760 mm Hg). Nakon isteka vremena sterilizacije, autoklav se isključuje. Nakon hlađenja, kada je očitavanje manometra nula, otvorite ventil da ispustite paru. Pažljivo stavite poklopac autoklava na sebe, ne gledajući u kotao, štiteći lice od mogućeg izlaganja zaostaloj pari. Nemoguće je otvoriti poklopac autoklava dok se para potpuno ne oslobodi, jer brzim padom tlaka unutar autoklava sterilizirani tekući medij ključa, a čepovi iz epruveta se istiskuju zajedno s tekućinom.

U autoklavu se steriliziraju hranljivi mediji koji mogu izdržati zagrijavanje iznad 100 °C, stakleno posuđe umotano u papir, obloge i haljine smještene u metalne posude. Osim toga, korištene bakterijske kulture i posuđe se dezinficiraju. U ovim slučajevima pritisak pare i izlaganje sterilizaciji su duži (151,9 kPa - 1 sat) nego kod sterilizacije čistog materijala (50,6..L01, ZkPa - 30...40 min).

Za provjeru kvalitete autoklava, podudarnosti očitavanja manometra i temperature pare, koriste se različite tvari (benzonaftol, antipirin, sumpor) koje imaju određenu tačku. Mala količina ove supstance pomiješana sa istom količinom boje (magenta, metilen plavo), stavljena u epruvetu, zapečaćena i postavljena u okomitom položaju između materijala koji se steriliše. Na odgovarajućoj temperaturi, indikatorska supstanca se topi i pretvara boju upotrijebljene boje.

Dizajn horizontalnih autoklava strukturno se razlikuje od vertikalnih, ali princip rada ostaje isti.

Sterilizacija filtracijom. Izvodi se propuštanjem materijala kroz bakteriološke filtere. Filtracija je povezana ne samo s prolaskom ili zadržavanjem najsitnijih čestica (bakterija) kroz filter, ovisno o veličini pora filterske ploče, već i sa kapacitetom adsorpcije materijala od kojeg je filter napravljen. Obično se filtriraju tekućine koje ne podnose zagrijavanje (serum, rastvori antibiotika itd.). Prilikom filtriranja

Rice. 30. Seitz filter:

/ - Bunaen staklena boca; 2 - kanila za usis zraka; 3 - metalni držač; 4 - filter

ploče napravljene od mješavine azbesta i celuloze. Domaći azbestni filteri su marki F2 i SF. Filteri marke SF se sterilišu.

Membrane(ultra-) filteri(kolodijumske membrane) izgledaju kao tanki listovi bijelog papira. Pripremaju se od hemiceluloze, tretirane odgovarajućim reagensima, temperaturom i presovanjem. Ovi filteri se razlikuju po promjeru i veličini pora. Koriste se za filtraciju, koncentraciju čestica sadržanih u filtriranoj tekućini, kao i za određivanje veličine virusa.

Sterilnost nastalih filtrata se provjerava inokulacijom na hranjive podloge, nakon čega slijedi inkubacija u termostatu nekoliko dana.

Sterilizacija ultraljubičastim zračenjem (UVR). U laboratoriji su izvor UV zračenja najčešće specijalne baktericidne lampe. UV zračenje se koristi za dezinfekciju vazduha u prostorijama (boksove, operacione sale). Germicidne lampe su takođe našle primenu u trgovini i Prehrambena industrija pri skladištenju raznih proizvoda na temperaturama iznad 0 °C.

Ultrazvuk. Određena frekvencija se koristi kao fizički faktor sterilizacije, na primjer, za dezinfekciju sode, sterilizaciju mlijeka, nekih konzerviranih proizvoda i sirove kože.

Hemijske metode. Nije pogodno za sterilizaciju medija za kulturu i laboratorijskog staklenog posuđa. Češće se koriste za konzerviranje određenih supstrata, jer u baktericidnim koncentracijama paraliziraju enzimsku sposobnost bakterija.

U nekim slučajevima se za sterilizaciju koriste biološke METODE.